| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第8-23页 |
| ·人参属植物的分类与分布 | 第8-9页 |
| ·人参皂苷 | 第9-18页 |
| ·人参皂苷的理化性质 | 第9-10页 |
| ·人参皂苷的化学成分 | 第10页 |
| ·人参皂苷的分类 | 第10-14页 |
| ·原人参二醇型皂苷 | 第11-12页 |
| ·原人参三醇型皂苷 | 第12-14页 |
| ·齐墩果酸型皂苷 | 第14页 |
| ·人参皂苷的分离鉴定 | 第14-16页 |
| ·薄层层析 | 第14-15页 |
| ·高效液相色谱 | 第15页 |
| ·核磁共振 | 第15页 |
| ·高效液相色谱-质谱连用 | 第15-16页 |
| ·酶联免疫 | 第16页 |
| ·人参皂苷的生理功能 | 第16-17页 |
| ·酶法改造人参皂苷的进展 | 第17-18页 |
| ·稀有人参皂苷C-K | 第18-20页 |
| ·稀有人参皂苷C-K的结构 | 第18页 |
| ·稀有人参皂苷C-K的药理学活性 | 第18-20页 |
| ·人参皂苷C-K具有抗突变作用 | 第19页 |
| ·人参皂苷C-K具有细胞毒作用 | 第19页 |
| ·人参皂苷C-K具有诱导细胞凋亡作用 | 第19页 |
| ·人参皂苷C-K抑制癌细胞转移 | 第19-20页 |
| ·稀有人参皂苷C-K的分析方法 | 第20页 |
| ·论文的意义 | 第20-21页 |
| ·论文的主要内容 | 第21-23页 |
| 第二章 材料与方法 | 第23-36页 |
| ·实验材料 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-36页 |
| ·缓冲液的制备 | 第23页 |
| ·菌的发酵产酶 | 第23-24页 |
| ·酶液的制备 | 第24页 |
| ·酶反应方法 | 第24页 |
| ·薄层层析(TLC)检测人参皂苷方法 | 第24页 |
| ·DEAE-Cellullose离子交换柱分离提纯皂苷糖酶 | 第24-25页 |
| ·酶液的鉴定 | 第25-26页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第26页 |
| ·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白分子量 | 第26-28页 |
| ·转化生成人参皂苷C-K酶的性质的研究 | 第28-29页 |
| ·粗酶最适反应条件确定 | 第29页 |
| ·酶反应的中止 | 第29-30页 |
| ·酶法转化PPD为人参皂苷C-K | 第30页 |
| ·常压硅胶柱分离人参皂苷C-K | 第30-31页 |
| ·大量制备人参皂苷C-K及酶解产物的分离 | 第31-33页 |
| ·大量制备人参皂苷C-K | 第31-32页 |
| ·D-296脱色柱脱色 | 第32页 |
| ·酶解产物的脱酯 | 第32-33页 |
| ·高压硅胶柱分离人参皂苷C-K | 第33页 |
| ·结晶 | 第33-34页 |
| ·高效液相色谱检测产品纯度 | 第34-36页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第36-58页 |
| ·四种不同菌株产皂苷糖苷酶效果比较 | 第36-37页 |
| ·sp.848最佳发酵天数的确定 | 第37-38页 |
| ·皂苷糖苷酶的分离纯化 | 第38-41页 |
| ·DEAE-Cellullose离子交换柱分离提纯皂苷糖苷酶 | 第38页 |
| ·测峰值管酶活 | 第38-40页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第40页 |
| ·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第40-41页 |
| ·酶的性质的研究 | 第41-49页 |
| ·提纯酶的性质 | 第41-45页 |
| ·粗酶的最适反应条件 | 第45-48页 |
| ·粗酶与纯酶的比较 | 第48-49页 |
| ·酶转化人参皂苷C-K的大量制备与分离纯化 | 第49-58页 |
| ·酶反应大量制备人参皂苷C-K | 第49-50页 |
| ·酶转化人参皂苷C-K的树脂提纯 | 第50页 |
| ·人参皂苷C-K的提纯与精制 | 第50-58页 |
| 第四章 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-62页 |
| 致谢 | 第62页 |