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钙离子对牛乳α-乳白蛋白结构与致敏性的影响

摘要第3-5页
ABSTRACT第5-6页
缩略语表第7-12页
第1章 引言第12-21页
    1.1 牛乳过敏第12-15页
        1.1.1 牛乳过敏原机理第12页
        1.1.2 牛乳过敏原及危害第12-13页
        1.1.3 牛乳α-乳白蛋白第13-15页
    1.2 矿物质对食物过敏原结构和稳定性的影响第15-18页
        1.2.1 矿物质对食物过敏原结构的影响第15-16页
        1.2.2 金属离子对食物过敏原稳定性的影响第16-17页
        1.2.3 不同条件下金属离子对食品过敏原的影响第17-18页
    1.3 食物过敏原致敏性的评价第18-19页
        1.3.1 血清学检测抗体的方法第18页
        1.3.2 体外细胞学检测方法第18-19页
    1.4 立题背景与研究内容第19-21页
        1.4.1 立题背景第19-20页
        1.4.2 研究内容第20-21页
第2章 钙离子结合牛乳α-乳白蛋白条件优化第21-32页
    2.1 引言第21页
    2.2 实验材料与方法第21-24页
        2.2.1 实验材料第21-22页
        2.2.2 主要仪器设备第22页
        2.2.3 实验方法第22-24页
            2.2.3.1 溶液配制第22-23页
            2.2.3.2 牛乳α-乳白蛋白的制备第23页
            2.2.3.3 样品测定方法第23-24页
    2.3 结果分析第24-30页
        2.3.1 牛乳α-乳白蛋白的纯化第24-26页
        2.3.2 纯化后的牛乳α-乳白蛋白去除钙离子第26页
        2.3.3 钙离子结合牛乳α-乳白蛋白条件优化第26-30页
            2.3.3.1 单因素分析第26-27页
            2.3.3.2 多因素分析第27-30页
    2.4 讨论第30-31页
        2.4.1 钙离子的测定方法第30-31页
        2.4.2 影响钙离子结合蛋白的参数第31页
    2.5 小结第31-32页
第3章 钙离子对牛乳α-乳白蛋白结构与免疫特性的影响第32-49页
    3.1 引言第32页
    3.2 实验材料与方法第32-39页
        3.2.1 实验材料第32-33页
        3.2.2 设备第33页
        3.2.3 实验方法第33-39页
            3.2.3.1 溶液配制第33-34页
            3.2.3.2 圆二色光谱分析第34-35页
            3.2.3.3 紫外可见光谱分析第35页
            3.2.3.4 内源性荧光光谱分析第35页
            3.2.3.5 外源性荧光光谱分析第35页
            3.2.3.6 体外模拟胃肠道消化第35页
            3.2.3.7 Tricine-SDS-PAGE电泳第35-36页
            3.2.3.8 IgG结合能力检测第36-37页
            3.2.3.9 IgE结合能力检测第37-39页
            3.2.3.10 数据统计分析第39页
    3.3 结果分析第39-46页
        3.3.1 钙离子结合牛乳α-乳白蛋白的圆二色光谱第39-40页
        3.3.2 钙离子结合牛乳α-乳白蛋白的紫外光谱分析第40页
        3.3.3 钙离子结合牛乳α-乳白蛋白的内源性荧光光谱分析第40-41页
        3.3.4 钙离子结合牛乳α-乳白蛋白的外源性荧光光谱分析第41-42页
        3.3.5 钙离子结合牛乳α-乳白蛋白胃肠消化的电泳图谱第42-43页
        3.3.6 钙离子结合牛乳α-乳白蛋白的IgG结合能力第43-45页
        3.3.7 钙离子结合牛乳α-乳白蛋白的IgE结合能力第45-46页
    3.4 讨论第46-47页
        3.4.1 钙离子对牛乳α-乳白蛋白构象和抗体结合能力的影响第46-47页
        3.4.2 钙离子对牛乳α-乳白蛋白消化稳定性的影响第47页
    3.5 小结第47-49页
第4章 基于KU812细胞株脱颗粒模型评价钙结合牛乳α-乳白蛋的致敏性第49-59页
    4.1 引言第49页
    4.2 实验材料与方法第49-53页
        4.2.1 实验材料第49-50页
        4.2.2 设备第50页
        4.2.3 实验方法第50-53页
            4.2.3.1 溶液配制第50页
            4.2.3.2 牛乳过敏患者血清池的构建第50-51页
            4.2.3.3 KU812细胞的传代培养第51页
            4.2.3.4 KU812细胞的冻存与复苏第51页
            4.2.3.5 IgE介导的KU812细胞体外活化实验第51页
            4.2.3.6 β-HEX含量的检测第51-52页
            4.2.3.7 组胺含量的检测第52页
            4.2.3.8 IL-6(TNF-γ)含量的检测第52页
            4.2.3.9 胞内钙离子定性检测第52-53页
            4.2.3.10 数据统计分析第53页
    4.3 结果分析第53-57页
        4.3.1 过敏原诱导KU812的β-HEX含量变化第53-54页
        4.3.2 过敏原诱导的KU812组胺释放第54-55页
        4.3.3 过敏原诱导KU812细胞TNF-γ释放第55-56页
        4.3.4 过敏原诱导KU812细胞IL-6释放第56-57页
        4.3.5 细胞内钙离子表达量的变化第57页
    4.4 讨论第57-58页
    4.5 小结第58-59页
第5章 结论和展望第59-61页
    5.1 结论第59页
    5.2 创新点第59页
    5.3 展望第59-61页
致谢第61-62页
参考文献第62-68页
攻读硕士期间的研究成果第68页

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