| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 第一章 前言 | 第13-25页 |
| 1.1 草鱼的生物学特征 | 第13页 |
| 1.2 草鱼的营养成分 | 第13-14页 |
| 1.3 草鱼开发现状 | 第14-15页 |
| 1.4 抗氧化肽 | 第15-19页 |
| 1.4.1 活性肽研究进展 | 第15-17页 |
| 1.4.2 自由基理论 | 第17-19页 |
| 1.5 多肽提取方法 | 第19-21页 |
| 1.5.1 酶水解 | 第20-21页 |
| 1.5.2 微生物发酵 | 第21页 |
| 1.6 多肽的分离纯化 | 第21-22页 |
| 1.7 体内代谢实验 | 第22-23页 |
| 1.8 立题的目的和意义 | 第23-24页 |
| 1.9 本课题主要研究内容 | 第24-25页 |
| 第二章 复合酶制备草鱼抗氧化肽 | 第25-37页 |
| 2.1 前言 | 第25页 |
| 2.2 材料与方法 | 第25-31页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第25页 |
| 2.2.2 主要仪器设备 | 第25-26页 |
| 2.2.3 试验方法 | 第26-31页 |
| 2.3 结果与分析 | 第31-37页 |
| 2.3.1 木瓜蛋白酶最佳酶解工艺确定 | 第31-32页 |
| 2.3.2 复合蛋白酶最佳酶解工艺确定 | 第32-33页 |
| 2.3.3 中性蛋白酶最佳酶解工艺确定 | 第33-34页 |
| 2.3.4 碱性蛋白酶最佳酶解工艺确定 | 第34-35页 |
| 2.3.5 酶的选择 | 第35页 |
| 2.3.6 不同方式水解草鱼蛋白结果比较 | 第35-36页 |
| 2.3.7 验证试验 | 第36-37页 |
| 第三章 草鱼抗氧化肽的分离纯化及荧光标记肽的制备 | 第37-46页 |
| 3.1 引言 | 第37-38页 |
| 3.2 材料与方法 | 第38-40页 |
| 3.2.1 试验材料与设备 | 第38页 |
| 3.2.2 试验设计与方法 | 第38-40页 |
| 3.3 结果与分析 | 第40-46页 |
| 3.3.1 超滤法分离草鱼肽 | 第40-41页 |
| 3.3.2 HPLC分离纯化结果 | 第41-42页 |
| 3.3.3 多肽纯化结果 | 第42-43页 |
| 3.3.4 N端测序结果 | 第43-44页 |
| 3.3.5 四级杆质谱测定分子质量 | 第44页 |
| 3.3.6 p4氨基酸序列 | 第44页 |
| 3.3.7 荧光标记肽FITC-WEPH的鉴定 | 第44-45页 |
| 3.3.8 小结 | 第45-46页 |
| 第四章 草鱼抗氧化肽在体内的代谢分布研究 | 第46-55页 |
| 4.1 引言 | 第46页 |
| 4.2 材料与方法 | 第46-47页 |
| 4.3 试验方法 | 第47-48页 |
| 4.3.1 FITC-WEPH在小鼠体内的药代动力学实验 | 第47页 |
| 4.3.2 荧光标记肽在小鼠组织分布实验 | 第47-48页 |
| 4.3.3 血液酶活性及MDA测定 | 第48页 |
| 4.4 结果与分析 | 第48-55页 |
| 4.4.1 小鼠单次口服荧光标记肽对小鼠血药浓度的影响 | 第48-49页 |
| 4.4.2 荧光标记肽在小鼠体内的分布研究 | 第49-52页 |
| 4.4.3 KM小鼠血清酶活力及MDA含量测定 | 第52-55页 |
| 第五章 结论与展望 | 第55-57页 |
| 5.1 结论 | 第55-56页 |
| 5.2 展望 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-64页 |
| 致谢 | 第64页 |