| 摘要 | 第9-12页 |
| ABSTRACT | 第12-16页 |
| 英文缩写词表 | 第17-19页 |
| 第一章 综述 油菜籽及植物多糖的研究进展 | 第19-34页 |
| 1 油菜籽研究进展 | 第19-26页 |
| 1.1 油菜籽概述 | 第19-21页 |
| 1.1.1 油菜籽植物资源 | 第19-21页 |
| 1.1.2 双低油菜 | 第21页 |
| 1.2 油菜籽的综合利用 | 第21-26页 |
| 1.2.1 菜籽油 | 第22-23页 |
| 1.2.2 菜籽蛋白与多肽 | 第23-24页 |
| 1.2.3 菜籽饼粕中的抗营养因子 | 第24-26页 |
| 2 多糖的概述 | 第26-32页 |
| 2.1 多糖简介 | 第26-27页 |
| 2.1.1 多糖的理化特性 | 第27页 |
| 2.1.2 多糖的结构 | 第27页 |
| 2.2 多糖的提取、分离和纯化 | 第27-29页 |
| 2.2.1 多糖的提取和分离 | 第27-28页 |
| 2.2.2 多糖的纯化 | 第28-29页 |
| 2.3 多糖的结构分析 | 第29-30页 |
| 2.4 植物多糖的生物活性 | 第30-32页 |
| 2.4.1 增强机体免疫功能 | 第30页 |
| 2.4.2 抗突变、抗肿瘤作用 | 第30-31页 |
| 2.4.3 延缓衰老 | 第31页 |
| 2.4.4 降血糖、降血脂、抗血栓作用 | 第31页 |
| 2.4.5 抗病毒活性 | 第31页 |
| 2.4.6 其它作用 | 第31-32页 |
| 2.5 构效关系 | 第32页 |
| 2.6 结语 | 第32页 |
| 3 课题构想 | 第32-34页 |
| 3.1 研究目的意义 | 第32-33页 |
| 3.2 研究的主要内容 | 第33-34页 |
| 第二章 菜籽(饼粕)中铅、镉的测定方法研究与饼粕成分分析 | 第34-44页 |
| 1 引言 | 第34页 |
| 2 材料与方法 | 第34-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第34-36页 |
| 2.1.1 原料 | 第34页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第34-35页 |
| 2.1.3 主要仪器及分析条件 | 第35-36页 |
| 2.2 实验方法 | 第36-39页 |
| 2.2.1 有害重金属Pb、Cd含量测定 | 第36页 |
| 2.2.2 水分测定 | 第36-37页 |
| 2.2.3 灰分测定 | 第37页 |
| 2.2.4 蛋白质含量测定 | 第37-38页 |
| 2.2.5 脂肪含量测定 | 第38页 |
| 2.2.6 粗纤维的测定 | 第38-39页 |
| 3 结果与讨论 | 第39-43页 |
| 3.1 有害重金属Pb、Cd含量测定 | 第39-43页 |
| 3.1.1 微波消化条件的选择 | 第39-40页 |
| 3.1.2 石墨炉程序升温条件的优化 | 第40-41页 |
| 3.1.3 共存离子干扰 | 第41-42页 |
| 3.1.4 检出限、精密度及线性范围 | 第42页 |
| 3.1.5 样品测定及回收实验 | 第42-43页 |
| 3.2 其他成分分析 | 第43页 |
| 4 结论 | 第43-44页 |
| 第三章 菜籽饼粕多糖的提取方法比较研究 | 第44-64页 |
| 1 引言 | 第44-45页 |
| 2 材料与方法 | 第45-47页 |
| 2.1 实验材料 | 第45页 |
| 2.1.1 原料 | 第45页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第45页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第45页 |
| 2.2 实验方法 | 第45-47页 |
| 2.2.1 菜籽饼粕中多糖的提取工艺流程 | 第45页 |
| 2.2.2 菜籽饼粕的前处理 | 第45-46页 |
| 2.2.3 葡萄糖标准曲线的制作 | 第46页 |
| 2.2.4 菜籽饼粕中多糖的酸式盐提取 | 第46页 |
| 2.2.5 菜籽饼粕中多糖的超声辅助水提取 | 第46页 |
| 2.2.6 菜籽饼粕中多糖的超声辅助酸提取 | 第46-47页 |
| 2.2.7 菜籽饼粕中多糖的超声辅助碱提取 | 第47页 |
| 2.2.8 最佳提取方法下提取条件的优化 | 第47页 |
| 2.2.9 多糖含量的计算 | 第47页 |
| 3 结果与讨论 | 第47-63页 |
| 3.1 葡萄糖标准曲线 | 第47-48页 |
| 3.2 菜籽饼粕中多糖的酸式盐提取 | 第48-51页 |
| 3.3 菜籽饼粕中多糖的超声辅助水提取 | 第51-52页 |
| 3.4 菜籽饼粕中多糖的超声辅助HCl提取 | 第52-55页 |
| 3.5 菜籽饼粕中多糖的超声辅助NaOH提取 | 第55-58页 |
| 3.6 提取方法选择 | 第58-59页 |
| 3.7 超声辅助碱提提取条件优化 | 第59-63页 |
| 4 结论 | 第63-64页 |
| 第四章 超声辅助碱提菜籽多糖的分离纯化及理化性质分析 | 第64-75页 |
| 1 引言 | 第64页 |
| 2 材料与方法 | 第64-68页 |
| 2.1 实验材料 | 第64-65页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第64页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第64-65页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第65页 |
| 2.2 实验方法 | 第65-68页 |
| 2.2.1 碱提菜籽多糖的分离纯化路线 | 第65-66页 |
| 2.2.2 碱提菜籽多糖Sevag法脱蛋白方法 | 第66页 |
| 2.2.3 碱提菜籽多糖的DEAE-纤维素柱层析 | 第66-67页 |
| 2.2.4 碱提菜籽多糖的DEAE-Sephadex A-25柱层析 | 第67页 |
| 2.2.5 碱提菜籽多糖的Sephadex G-100柱层析 | 第67页 |
| 2.2.6 级分多糖的纯度鉴定 | 第67-68页 |
| 2.2.7 碱提菜籽多糖的组成成分分析 | 第68页 |
| 2.2.8 级分多糖的理化性质分析 | 第68页 |
| 3 结果与讨论 | 第68-74页 |
| 3.1 碱提菜籽多糖Sevag法脱蛋白 | 第68-69页 |
| 3.2 碱提菜籽多糖的DEAE-纤维素柱层析 | 第69-70页 |
| 3.3 碱提菜籽多糖的DEAE-Sephadex A-25柱层析 | 第70页 |
| 3.4 碱提菜籽级分多糖的Sephadex G-100柱层析 | 第70-71页 |
| 3.5 级分多糖的纯度鉴定 | 第71-73页 |
| 3.5.1 常压凝胶柱层析 | 第71-72页 |
| 3.5.2 滤纸电泳 | 第72-73页 |
| 3.6 碱提菜籽多糖的组成成分分析 | 第73-74页 |
| 3.7 碱提菜籽多糖的理化性质分析 | 第74页 |
| 4 结论 | 第74-75页 |
| 第五章 碱提菜籽级分多糖的结构表征 | 第75-95页 |
| 1 引言 | 第75页 |
| 2 材料与方法 | 第75-79页 |
| 2.1 实验材料 | 第75-77页 |
| 2.1.1 原料 | 第75页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第75-76页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第76-77页 |
| 2.2 实验方法 | 第77-79页 |
| 2.2.1 级分多糖摩尔质量的测定 | 第77页 |
| 2.2.2 级分多糖的单糖组成分析 | 第77页 |
| 2.2.3 级分多糖的氨基酸组成分析 | 第77页 |
| 2.2.4 糖肽键连接方式分析——β-消除反应 | 第77-78页 |
| 2.2.5 光谱分析 | 第78页 |
| 2.2.6 相邻单糖糖基连接方式——高碘酸氧化反应 | 第78页 |
| 2.2.7 刚果红试验 | 第78页 |
| 2.2.8 X-射线衍射 | 第78-79页 |
| 3 结果与讨论 | 第79-93页 |
| 3.1 级分多糖摩尔质量的测定 | 第79页 |
| 3.2 级分多糖单糖组成分析 | 第79-84页 |
| 3.3 糖肽键链接分析 | 第84-85页 |
| 3.4 级分多糖光谱分析 | 第85-90页 |
| 3.4.1 紫外-可见光谱分析 | 第85-87页 |
| 3.4.2 红外光谱分析 | 第87-88页 |
| 3.4.3 核磁共振谱分析 | 第88-90页 |
| 3.5 相邻单糖糖基连接方式 | 第90页 |
| 3.6 刚果红试验 | 第90-92页 |
| 3.7 X-射线衍射 | 第92-93页 |
| 4 结论 | 第93-95页 |
| 第六章 碱提菜籽多糖的抗氧化活性 | 第95-109页 |
| 1 引言 | 第95页 |
| 2 材料与方法 | 第95-99页 |
| 2.1 实验材料 | 第95-96页 |
| 2.1.1 实验样品 | 第95页 |
| 2.1.2 实验动物 | 第95页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第95-96页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第96页 |
| 2.2 实验方法 | 第96-99页 |
| 2.2.1 还原能力测定 | 第96页 |
| 2.2.2 清除·OH的效果测定 | 第96-97页 |
| 2.2.3 对小鼠肝匀浆体外生成MDA的影响 | 第97页 |
| 2.2.4 对小鼠肝线粒体脂质过氧化的影响 | 第97-98页 |
| 2.2.5 对小鼠红细胞自氧化溶血的影响 | 第98页 |
| 2.2.6 对H_2O_2诱导小鼠红细胞氧化溶血的影响 | 第98页 |
| 2.2.7 体内抗氧化 | 第98-99页 |
| 2.2.8 统计学分析 | 第99页 |
| 3 结果与讨论 | 第99-107页 |
| 3.1 还原能力测定 | 第99页 |
| 3.2 清除羟基自由基效果 | 第99-100页 |
| 3.3 对小鼠肝匀浆体外生成MDA的影响 | 第100-101页 |
| 3.4 对诱导体系小鼠肝匀浆体外生成MDA的影响 | 第101-102页 |
| 3.5 对小鼠肝线粒体肿胀度的影响 | 第102-103页 |
| 3.6 对小鼠肝线粒体脂质过氧化生成MDA的影响 | 第103-104页 |
| 3.7 对小鼠红细胞自氧化溶血的影响 | 第104-105页 |
| 3.8 对H_2O_2诱导小鼠红细胞氧化溶血的影响 | 第105页 |
| 3.9 菜籽多糖的体内抗氧化效果 | 第105-107页 |
| 3.9.1 对小鼠体内肝组织MDA生成的影响 | 第105-106页 |
| 3.9.2 对小鼠血清SOD活力的影响 | 第106-107页 |
| 3.9.3 对小鼠血清GSH-Px活力的影响 | 第107页 |
| 4 结论 | 第107-109页 |
| 第七章 碱提菜籽多糖的抗肿瘤活性 | 第109-130页 |
| 1 引言 | 第109页 |
| 2 材料与方法 | 第109-114页 |
| 2.1 实验材料 | 第109-111页 |
| 2.1.1 实验样品 | 第109-110页 |
| 2.1.2 实验动物 | 第110页 |
| 2.1.3 肿瘤细胞株 | 第110页 |
| 2.1.4 其他材料 | 第110页 |
| 2.1.5 主要试剂 | 第110页 |
| 2.1.6 主要仪器 | 第110-111页 |
| 2.2 实验方法 | 第111-114页 |
| 2.2.1 体外抑瘤 | 第111页 |
| 2.2.2 体内抗肿瘤 | 第111-113页 |
| 2.2.3 统计学分析 | 第113-114页 |
| 3 结果与讨论 | 第114-129页 |
| 3.1 菜籽多糖体外抑瘤作用 | 第114页 |
| 3.2 菜籽多糖体内抗肿瘤作用 | 第114-129页 |
| 3.2.1 抑瘤率及免疫器官指数 | 第114-116页 |
| 3.2.2 组织切片病理学观察 | 第116-120页 |
| 3.2.3 对荷瘤鼠NK细胞活性的影响 | 第120-121页 |
| 3.2.4 对荷瘤鼠T淋巴细胞转化的影响 | 第121-122页 |
| 3.2.5 对荷瘤鼠巨噬细胞吞噬能力的影响 | 第122-123页 |
| 3.2.6 对荷瘤鼠血清溶血素形成的影响 | 第123-124页 |
| 3.2.7 对荷瘤鼠迟发型超敏反应(DTH)的影响 | 第124-125页 |
| 3.2.8 对荷瘤鼠抗氧化能力的影响 | 第125-128页 |
| 3.2.9 外周血象分析 | 第128-129页 |
| 4 结论 | 第129-130页 |
| 第八章 结论 | 第130-133页 |
| 1 菜籽饼粕成分分析 | 第130页 |
| 2 菜籽饼粕中多糖的提取方法比较 | 第130页 |
| 3 碱提菜籽多糖的分离、纯化及理化性质分析 | 第130-131页 |
| 4 碱提菜籽多糖的结构表征 | 第131页 |
| 5 碱提菜籽多糖的抗氧化活性 | 第131-132页 |
| 6 碱提菜籽多糖的抗肿瘤活性 | 第132-133页 |
| 参考文献 | 第133-141页 |
| 致谢 | 第141-142页 |
| 附录 | 第142页 |
