| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-22页 |
| 1.1 甜味剂和低聚果糖 | 第13-14页 |
| 1.1.1 甜味剂的概述 | 第13页 |
| 1.1.2 功能性甜味剂-低聚果糖 | 第13-14页 |
| 1.2 低聚果糖的生产 | 第14-17页 |
| 1.2.1 微生物酶法生产低聚果糖 | 第14-15页 |
| 1.2.2 游离细胞全细胞法生产低聚果糖 | 第15-16页 |
| 1.2.3 固定化细胞全细胞法生产低聚果糖 | 第16-17页 |
| 1.3 新科思糖的研究现状 | 第17-18页 |
| 1.3.1 新科思糖的结构 | 第17页 |
| 1.3.2 新科思糖的生产 | 第17-18页 |
| 1.4 连续转化 | 第18-19页 |
| 1.4.1 连续转化工艺简介 | 第18页 |
| 1.4.2 生物反应器 | 第18-19页 |
| 1.5 高纯度低聚果糖的制备方法 | 第19-20页 |
| 1.5.1 生物分离技术 | 第19-20页 |
| 1.5.2 凝胶过滤层析技术 | 第20页 |
| 1.5.3 吸附层析技术 | 第20页 |
| 1.5.4 膜分离技术 | 第20页 |
| 1.6 本研究的主要内容和意义 | 第20-22页 |
| 1.6.1 研究的主要内容 | 第20-21页 |
| 1.6.2 研究的主要意义 | 第21-22页 |
| 第二章 培养条件对红发夫酵母生长和 β-呋喃果糖苷酶活性的影响 | 第22-33页 |
| 2.1 引言 | 第22页 |
| 2.2 实验材料 | 第22-24页 |
| 2.2.1 实验菌株 | 第22页 |
| 2.2.2 培养基 | 第22-23页 |
| 2.2.3 主要仪器与试剂 | 第23-24页 |
| 2.3 实验方法 | 第24-26页 |
| 2.3.1 种子液培养 | 第24页 |
| 2.3.2 产酶曲线的测定 | 第24页 |
| 2.3.3 培养基的优化 | 第24页 |
| 2.3.4 培养条件的优化 | 第24页 |
| 2.3.5 反应器培养 | 第24-25页 |
| 2.3.6 生物量和含水量的测定 | 第25页 |
| 2.3.7 酶活的测定 | 第25页 |
| 2.3.8 转化液成分的测定 | 第25-26页 |
| 2.3.9 pH的测定 | 第26页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第26-32页 |
| 2.4.1 红发夫酵母生长和酶活曲线 | 第26页 |
| 2.4.2 不同碳源对生物量和酶活的影响 | 第26-28页 |
| 2.4.3 碳源浓度对生物量和酶活的影响 | 第28页 |
| 2.4.4 不同氮源对生物量和酶活的影响 | 第28-29页 |
| 2.4.5 不同碳氮比对生物量和酶活的影响 | 第29-30页 |
| 2.4.6 不同pH对生物量和酶活的影响 | 第30-31页 |
| 2.4.7 阶段pH控制对生物量和酶活的影响 | 第31-32页 |
| 2.5 本章小结 | 第32-33页 |
| 第三章 固定化红发夫酵母催化蔗糖合成新科思糖 | 第33-46页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 实验材料 | 第33-34页 |
| 3.2.1 实验菌株 | 第33-34页 |
| 3.2.2 培养基 | 第34页 |
| 3.2.3 主要仪器与试剂 | 第34页 |
| 3.3 实验方法 | 第34-36页 |
| 3.3.1 菌悬液的制备 | 第34页 |
| 3.3.2 红发夫酵母的固定化 | 第34-35页 |
| 3.3.3 游离细胞浓度对转化的影响 | 第35页 |
| 3.3.4 游离细胞的批次转化 | 第35页 |
| 3.3.5 固定化细胞最适转化条件的优化 | 第35页 |
| 3.3.6 扫描电镜分析 | 第35-36页 |
| 3.3.7 生物量和含水量的测定 | 第36页 |
| 3.3.8 转化液成分的测定 | 第36页 |
| 3.3.9 pH的测定 | 第36页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第36-44页 |
| 3.4.1 游离细胞浓度对催化蔗糖合成新科思糖的影响 | 第36-38页 |
| 3.4.2 游离和固定化细胞催化蔗糖合成新科思糖的比较 | 第38-39页 |
| 3.4.3 蔗糖浓度对固定化细胞催化蔗糖产新科思糖的影响 | 第39-40页 |
| 3.4.4 甘蔗汁浓度对固定化细胞催化蔗糖产新科思糖的影响 | 第40-41页 |
| 3.4.5 温度对固定化细胞催化蔗糖产新科思糖的影响 | 第41-42页 |
| 3.4.6 固定化小球的扫描电镜分析 | 第42-44页 |
| 3.5 本章小结 | 第44-46页 |
| 第四章PBR反应器连续合成新科思糖及其分离纯化研究 | 第46-62页 |
| 4.1 引言 | 第46-47页 |
| 4.2 实验材料 | 第47-48页 |
| 4.2.1 实验菌株 | 第47页 |
| 4.2.2 培养基 | 第47页 |
| 4.2.3 仪器与试剂 | 第47-48页 |
| 4.3 实验方法 | 第48-52页 |
| 4.3.1 巴斯德毕赤酵母菌悬液的制备 | 第48页 |
| 4.3.2 红发夫酵母的固定化 | 第48页 |
| 4.3.3 反应器的连接与填充 | 第48页 |
| 4.3.4 停留时间对新科思糖产量的影响 | 第48页 |
| 4.3.5 填充床反应器连续催化蔗糖产新科思糖 | 第48页 |
| 4.3.6 巴斯德毕赤酵母对转化液的预处理 | 第48-49页 |
| 4.3.7 聚丙烯酰胺凝胶Bio-Gel P-2 的准备 | 第49-50页 |
| 4.3.8 进样量对聚丙烯酰胺凝胶Bio-Gel P-2 分离新科思糖的影响 | 第50页 |
| 4.3.9 流速对聚丙烯酰胺凝胶Bio-Gel P-2 分离新科思糖的影响 | 第50页 |
| 4.3.10 DNS法测定还原糖的含量 | 第50-51页 |
| 4.3.11 糖含量的测定 | 第51页 |
| 4.3.12 乙醇含量的测定 | 第51-52页 |
| 4.3.13 糖分的紫外检测 | 第52页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第52-60页 |
| 4.4.1 反应器的运行 | 第52-55页 |
| 4.4.2 低聚糖的分离纯化 | 第55-60页 |
| 4.5 本章小结 | 第60-62页 |
| 结论和展望 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-70页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第70-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 附件 | 第73页 |
