| 摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-31页 |
| ·引言 | 第13-14页 |
| ·开发背景 | 第14页 |
| ·海藻糖的生物学特性及功能 | 第14-16页 |
| ·海藻糖的生物保护机制 | 第16-17页 |
| ·“水替代”假说 | 第16页 |
| ·“玻璃态”假说 | 第16-17页 |
| ·“优先排阻”假说 | 第17页 |
| ·“化学稳态”假说 | 第17页 |
| ·海藻糖的检测方法 | 第17-19页 |
| ·纸层析法 | 第17-18页 |
| ·薄层层析法 | 第18页 |
| ·高效液相色谱法 | 第18页 |
| ·气相色谱法 | 第18-19页 |
| ·海藻糖的生产方法及研究进展 | 第19-23页 |
| ·微生物抽提法 | 第19-20页 |
| ·微生物发酵法 | 第20页 |
| ·基因工程法 | 第20页 |
| ·酶法合成海藻糖 | 第20-23页 |
| ·酶及细胞的固定化研究进展 | 第23-30页 |
| ·通用载体的改善与研究 | 第23-25页 |
| ·不同固定化方法的联用 | 第25-26页 |
| ·新型固定化材料和方法的研究 | 第26-28页 |
| ·磁、光、辐射、声等物理新技术的应用 | 第28-29页 |
| ·多酶联合固定化技术的发展 | 第29页 |
| ·展望 | 第29-30页 |
| ·论文选题的背景、意义及思路 | 第30-31页 |
| ·固定化海藻糖合酶的意义 | 第30页 |
| ·论文的主要研究内容和任务 | 第30-31页 |
| 第2章 海藻糖合酶高产菌株的复合诱变选育 | 第31-40页 |
| ·引言 | 第31页 |
| ·实验材料 | 第31-32页 |
| ·出发菌株 | 第31页 |
| ·主要实验仪器 | 第31-32页 |
| ·培养基 | 第32页 |
| ·试剂的配制 | 第32页 |
| ·实验方法 | 第32-35页 |
| ·菌株诱变处理 | 第32-33页 |
| ·测定方法 | 第33-35页 |
| ·结果与讨论 | 第35-39页 |
| ·P06 细胞形态 | 第35页 |
| ·P06 菌落形态 | 第35-36页 |
| ·P06 的生长曲线测定 | 第36页 |
| ·P06 的产酶实验结果 | 第36-37页 |
| ·紫外线诱变处理结果 | 第37-38页 |
| ·亚硝基胍（NTG）诱变处理结果 | 第38-39页 |
| ·诱变株P06-3-5 传代实验 | 第39页 |
| ·本章小结 | 第39-40页 |
| 第3章 海藻糖合酶的分离纯化及酶学特性的研究 | 第40-52页 |
| ·引言 | 第40-41页 |
| ·盐析法 | 第40页 |
| ·离子交换层析法 | 第40页 |
| ·凝胶层析法 | 第40-41页 |
| ·实验材料与仪器 | 第41页 |
| ·实验材料 | 第41页 |
| ·主要仪器 | 第41页 |
| ·实验方法 | 第41-43页 |
| ·粗酶液的制备 | 第41-42页 |
| ·盐析法纯化粗酶液 | 第42页 |
| ·Sephadex-G75 凝胶自装柱对海藻糖合酶的纯化 | 第42-43页 |
| ·Sephadex-G200 凝胶过滤层析柱对海藻糖合酶的分离纯化 | 第43页 |
| ·蛋白质纯度的鉴定 | 第43页 |
| ·结果与讨论 | 第43-50页 |
| ·盐析法对粗酶的初步纯化 | 第43-44页 |
| ·Sephadex-G75 凝胶过滤层析柱对海藻糖合酶的分离纯化 | 第44-45页 |
| ·Sephadex-G200 凝胶过滤层析柱对海藻糖合酶的分离纯化 | 第45-46页 |
| ·SDS 聚丙烯酰胺电泳所得图谱 | 第46页 |
| ·海藻糖合酶酶学特性的研究 | 第46-50页 |
| ·本章小结 | 第50-52页 |
| 第4章 固定化海藻糖合酶的制备研究 | 第52-60页 |
| ·引言 | 第52页 |
| ·材料与方法 | 第52-53页 |
| ·菌种 | 第52页 |
| ·主要仪器 | 第52页 |
| ·方法 | 第52-53页 |
| ·载体制备方法 | 第52-53页 |
| ·海藻糖合酶的释放 | 第53页 |
| ·交联方法 | 第53页 |
| ·液态酶催化合成海藻糖 | 第53页 |
| ·固定化酶催化合成海藻糖 | 第53页 |
| ·酶活力的测定 | 第53页 |
| ·结果与讨论 | 第53-59页 |
| ·不同载体的固定化效果 | 第53-54页 |
| ·戊二醛浓度对固定化酶活性的影响 | 第54-55页 |
| ·交联pH 值对固定化酶活性的影响 | 第55-56页 |
| ·交联温度对固定化酶活性的影响 | 第56页 |
| ·交联时间对固定化酶活性的影响 | 第56-57页 |
| ·液态酶与壳聚糖凝胶的配比对固定化酶活性的影响 | 第57-58页 |
| ·液态酶与固定化酶转化麦芽糖生产海藻糖的对比研究 | 第58页 |
| ·重复分批酶催化试验 | 第58-59页 |
| ·本章小结 | 第59-60页 |
| 第5章 细菌纤维素固定化海藻糖合酶的研究 | 第60-74页 |
| ·引言 | 第60-61页 |
| ·实验材料与仪器 | 第61页 |
| ·菌株、培养基及试剂 | 第61页 |
| ·主要仪器设备 | 第61页 |
| ·实验方法 | 第61-64页 |
| ·细菌纤维素的提取和处理方法 | 第61-62页 |
| ·游离酶的制备 | 第62页 |
| ·固定化酶的制备 | 第62-63页 |
| ·酶活力的测定 | 第63页 |
| ·活力回收的计算方法 | 第63页 |
| ·海藻糖对麦芽糖转化率的计算 | 第63-64页 |
| ·海藻糖的分析 | 第64页 |
| ·结果与讨论 | 第64-72页 |
| ·海藻糖合酶固定化前后电镜照片 | 第64页 |
| ·固定化条件对固定化效果的影响 | 第64-68页 |
| ·固定化海藻糖合酶的性质 | 第68-72页 |
| ·本章小结 | 第72-74页 |
| 第6章 细菌纤维素固定化海藻糖合酶生产海藻糖工艺条件的研究 | 第74-79页 |
| ·引言 | 第74页 |
| ·实验材料与仪器 | 第74页 |
| ·菌株、培养基及试剂 | 第74页 |
| ·主要仪器 | 第74页 |
| ·实验方法 | 第74-75页 |
| ·固定化酶的制备 | 第74-75页 |
| ·底物初始浓度对海藻糖产率的影响 | 第75页 |
| ·反应时间对麦芽糖转化率的影响 | 第75页 |
| ·温度对麦芽糖转化率的影响 | 第75页 |
| ·海藻糖制取工艺优化设计 | 第75页 |
| ·酶活测定 | 第75页 |
| ·结果与讨论 | 第75-78页 |
| ·底物浓度对海藻糖产率的影响 | 第75-76页 |
| ·反应时间及温度对麦芽糖转化率的影响 | 第76-77页 |
| ·海藻糖制取工艺的优化 | 第77-78页 |
| ·本章小结 | 第78-79页 |
| 第7章 结论与展望 | 第79-82页 |
| ·结论 | 第79-80页 |
| ·海藻糖合酶高产菌株的复合诱变选育 | 第79页 |
| ·P06-3-5 海藻糖合酶的分离纯化及酶学特性 | 第79页 |
| ·几种海藻糖合酶固定化载体的比较研究 | 第79-80页 |
| ·细菌纤维素固定化海藻糖合酶的研究 | 第80页 |
| ·展望 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
| 在学期间主要科研成果 | 第89页 |
