| 缩略词中英文对照表 | 第11-13页 |
| 摘要 | 第13-15页 |
| Abstract | 第15-17页 |
| 第一章 绪论 | 第18-35页 |
| 1. 水产品保活技术研究概述 | 第18-25页 |
| 1.1 鱼虾类水产品保活运输的主要影响因素 | 第18-20页 |
| 1.1.1 种类及健康状况 | 第18-19页 |
| 1.1.2 水质 | 第19页 |
| 1.1.3 温度 | 第19-20页 |
| 1.1.4 运输密度 | 第20页 |
| 1.1.5 应激胁迫 | 第20页 |
| 1.2 水产品保活技术 | 第20-23页 |
| 1.2.1 水养保活运输 | 第20-21页 |
| 1.2.2 水保活运输 | 第21-23页 |
| 1.3 运输过程的应激响应 | 第23-25页 |
| 1.3.1 运输过程中的发病与死亡 | 第23页 |
| 1.3.2 血液生化反应 | 第23-24页 |
| 1.3.3 吞噬能力改变 | 第24页 |
| 1.3.4 酚氧化酶(PO)活性变化 | 第24-25页 |
| 2. 水产品的低温保鲜技术概述 | 第25-27页 |
| 2.1 冷藏保鲜 | 第25页 |
| 2.2 冰温保鲜 | 第25-26页 |
| 2.3 微冻保鲜 | 第26-27页 |
| 2.4 冷冻保鲜 | 第27页 |
| 3. 蛋白质组学及其在水产品研究中的应用 | 第27-33页 |
| 3.1 蛋白质组学的形成与发展 | 第27-28页 |
| 3.2 蛋白质组学主要研究技术 | 第28-32页 |
| 3.2.1 样品制备 | 第28-29页 |
| 3.2.2 双向电泳技术 | 第29-30页 |
| 3.2.3 凝胶染色 | 第30页 |
| 3.2.4 图像采集 | 第30页 |
| 3.2.5 质谱分析 | 第30-31页 |
| 3.2.6 生物信息学 | 第31-32页 |
| 3.3 蛋白质组学在水产品上的应用 | 第32-33页 |
| 4. 本研究的意义与内容 | 第33-35页 |
| 4.1 研究意义 | 第33页 |
| 4.2 研究内容 | 第33-35页 |
| 第二章 鲫鱼在丁香酚麻醉保活过程中的生理生化响应 | 第35-47页 |
| 1 引言 | 第35页 |
| 2 材料与方法 | 第35-39页 |
| 2.1 试剂与仪器 | 第35-36页 |
| 2.2 实验材料 | 第36页 |
| 2.3 实验方法 | 第36-39页 |
| 2.3.1 丁香酚最优浓度的确定 | 第36页 |
| 2.3.2 保活温度的确定 | 第36页 |
| 2.3.3 取样方法 | 第36-37页 |
| 2.3.4 持水性的测定 | 第37页 |
| 2.3.5 蒸煮损失率的测定 | 第37页 |
| 2.3.6 TVB-N含量的测定 | 第37页 |
| 2.3.7 TBARS的测定 | 第37-38页 |
| 2.3.8 血清葡萄糖和皮质醇的测定 | 第38页 |
| 2.3.9 ACP和AKP活性的测定 | 第38页 |
| 2.3.10 GOT和GPT活性测定 | 第38-39页 |
| 2.4 数据分析 | 第39页 |
| 3 结果与讨论 | 第39-46页 |
| 3.1 丁香酚有效浓度的确定 | 第39-40页 |
| 3.2 鲫鱼保活温度及时间的确定 | 第40-41页 |
| 3.3 持水性和蒸煮损失率变化 | 第41-42页 |
| 3.4 TVB-N和TBA变化 | 第42页 |
| 3.5 皮质醇和葡萄糖变化 | 第42-44页 |
| 3.6 ACP和AKP活性变化 | 第44-45页 |
| 3.7 GPT和GOT活性变化 | 第45-46页 |
| 4 小结 | 第46-47页 |
| 第三章 鲫鱼低温无水保活过程中的胁迫响应 | 第47-55页 |
| 1 引言 | 第47页 |
| 2 材料与方法 | 第47-49页 |
| 2.1 试剂与仪器 | 第47-48页 |
| 2.2 材料与处理 | 第48页 |
| 2.3 实验方法 | 第48-49页 |
| 2.3.1 呼吸频率的测定 | 第48页 |
| 2.3.2 血清皮质醇浓度和溶菌酶活力的测定 | 第48页 |
| 2.3.3 ACP和AKP活性的测定 | 第48页 |
| 2.3.4 GOT和GPT活性测定 | 第48-49页 |
| 2.4 数据分析 | 第49页 |
| 3 结果与讨论 | 第49-53页 |
| 3.1 呼吸频率变化 | 第49-50页 |
| 3.2 皮质醇浓度和溶菌酶活力变化 | 第50-51页 |
| 3.3 GOT和GPT活性变化 | 第51-52页 |
| 3.4 AKP和ACP活性变化 | 第52-53页 |
| 4 小结 | 第53-55页 |
| 第四章 鲫鱼低温无水保活过程中抗氧化系统响应机制 | 第55-66页 |
| 1 引言 | 第55页 |
| 2 材料与方法 | 第55-60页 |
| 2.1 试剂与仪器 | 第55-56页 |
| 2.2 材料与处理 | 第56页 |
| 2.3 实验方法 | 第56-59页 |
| 2.3.1 抗氧化酶活性测定 | 第56页 |
| 2.3.2 过氧化氢和超氧阴离子含量测定 | 第56-57页 |
| 2.3.3 基因表达量测定 | 第57-59页 |
| 2.4 数据分析 | 第59-60页 |
| 3 结果与讨论 | 第60-65页 |
| 3.1 过氧化氢含量和超氧阴离子产生速率的变化 | 第60-61页 |
| 3.2 CAT和SOD活性变化 | 第61-62页 |
| 3.3 GSH-Px和POD活性变化 | 第62-63页 |
| 3.4 抗氧化酶基因的表达 | 第63-65页 |
| 4 小结 | 第65-66页 |
| 第五章 鲫鱼低温无水保活过程中能量代谢变化研究 | 第66-74页 |
| 1. 引言 | 第66页 |
| 2 材料与方法 | 第66-68页 |
| 2.1 试剂与仪器 | 第66页 |
| 2.2 材料与处理 | 第66-67页 |
| 2.3 实验方法 | 第67-68页 |
| 2.3.1 血清葡萄糖浓度的测定 | 第67页 |
| 2.3.2 血清中乳酸含量的测定 | 第67页 |
| 2.3.3 糖代谢相关酶活性的测定 | 第67-68页 |
| 2.4 数据分析 | 第68页 |
| 3 结果与讨论 | 第68-73页 |
| 3.1 血糖浓度及乳酸含量变化 | 第68-70页 |
| 3.2 LDH和PK活性变化 | 第70-72页 |
| 3.3 HK和PFK活性变化 | 第72-73页 |
| 4. 小结 | 第73-74页 |
| 第六章 中国对虾低温无水保活过程中蛋白质组学研究 | 第74-91页 |
| 1 引言 | 第74页 |
| 2 材料与方法 | 第74-82页 |
| 2.1 试剂与仪器 | 第74-75页 |
| 2.2 材料与处理 | 第75页 |
| 2.3 实验方法 | 第75-81页 |
| 2.3.1 休眠温度的确定 | 第75页 |
| 2.3.2 保活温度的确定 | 第75页 |
| 2.3.3 取样方法 | 第75-76页 |
| 2.3.4 主要试剂配制 | 第76-77页 |
| 2.3.5 蛋白样品制备 | 第77页 |
| 2.3.6 双向电泳 | 第77-80页 |
| 2.3.7 凝胶扫描及图像分析 | 第80页 |
| 2.3.8 胶内取点与酶切 | 第80-81页 |
| 2.3.9 质谱操作 | 第81页 |
| 2.4 数据分析 | 第81-82页 |
| 3 结果与讨论 | 第82-90页 |
| 3.1 温度的确定 | 第82-83页 |
| 3.2 中国对虾血淋巴蛋白表达变化 | 第83-85页 |
| 3.3 血蓝蛋白 | 第85-86页 |
| 3.4 血淋巴凝固蛋白 | 第86-87页 |
| 3.5 肌球蛋白轻链 | 第87-88页 |
| 3.6 肌质钙结合蛋白 | 第88-89页 |
| 3.7 蛋白与蛋白间交互作用 | 第89-90页 |
| 4 小结 | 第90-91页 |
| 第七章 冰点降低技术及在中国对虾冰温保鲜中的应用 | 第91-108页 |
| 1 引言 | 第91页 |
| 2 材料与方法 | 第91-95页 |
| 2.1 试剂与仪器 | 第91-92页 |
| 2.2 材料与处理 | 第92页 |
| 2.3 实验方法 | 第92-95页 |
| 2.3.1 冰点的测定 | 第92页 |
| 2.3.2 冰点调节剂的配制 | 第92-93页 |
| 2.3.3 微观结构观察 | 第93页 |
| 2.3.4 细菌总数测定 | 第93页 |
| 2.3.5 pH值测定 | 第93-94页 |
| 2.3.6 持水性测定 | 第94页 |
| 2.3.7 TVB-N的测定 | 第94页 |
| 2.3.8 TMA-N的测定 | 第94页 |
| 2.3.9 SSP的测定 | 第94页 |
| 2.3.10 Ca~(2+)-ATPase活性测定 | 第94页 |
| 2.3.11 感官评定 | 第94-95页 |
| 2.4 数据分析 | 第95页 |
| 3 结果与讨论 | 第95-106页 |
| 3.1 冰点调节剂对中国对虾冰点的影响 | 第95-96页 |
| 3.2 正交试验确定冰点调节剂最佳配方 | 第96-98页 |
| 3.3 中国对虾的冰点及冻结曲线 | 第98页 |
| 3.4 微观结构变化 | 第98-99页 |
| 3.5 细菌总数变化 | 第99-100页 |
| 3.6 pH值和持水性变化 | 第100-102页 |
| 3.7 TVB-N和TMA-N变化 | 第102-103页 |
| 3.8 Ca~(2+)-ATPase和SSP变化 | 第103-105页 |
| 3.9 感官评定 | 第105-106页 |
| 4 小结 | 第106-108页 |
| 第八章 结论与展望 | 第108-110页 |
| 1. 结论 | 第108-109页 |
| 2. 主要创新点 | 第109页 |
| 3. 展望 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-133页 |
| 图表索引 | 第133-135页 |
| 作者简历 | 第135-137页 |
| 致谢 | 第137页 |