| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-20页 |
| 1.1 南瓜 | 第10-11页 |
| 1.1.1 南瓜籽 | 第10页 |
| 1.1.2 南瓜籽粕 | 第10-11页 |
| 1.2 自由基的产生、危害及清除机制 | 第11-12页 |
| 1.2.1 自由基的产生 | 第11页 |
| 1.2.2 自由基的危害 | 第11-12页 |
| 1.2.3 自由基的清除 | 第12页 |
| 1.3 植物蛋白 | 第12-14页 |
| 1.3.1 植物蛋白的研究 | 第12-13页 |
| 1.3.2 植物蛋白的提取与制备 | 第13-14页 |
| 1.4 生物活性肽 | 第14-19页 |
| 1.4.1 生物活性肽的研究 | 第14页 |
| 1.4.2 生物活性肽的吸收机制 | 第14-15页 |
| 1.4.3 生物活性肽的种类及其作用 | 第15-17页 |
| 1.4.4 生物活性肽的制备 | 第17-18页 |
| 1.4.5 生物活性肽的分离精制 | 第18-19页 |
| 1.5 立题背景和意义 | 第19-20页 |
| 第二章 材料与方法 | 第20-33页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第20-22页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第20页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第21页 |
| 2.1.4 实验动物 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-33页 |
| 2.2.1 蛋白提取工艺流程及要点 | 第22页 |
| 2.2.2 蛋白质含量的测定 | 第22-23页 |
| 2.2.3 蛋白质得率计算 | 第23页 |
| 2.2.4 南瓜籽粕蛋白酶解工艺 | 第23-24页 |
| 2.2.5 蛋白酶酶活力的测定 | 第24-25页 |
| 2.2.6 蛋白水解度的测定：茚三酮比色法 | 第25-27页 |
| 2.2.7 可溶性多肽得率的测定：TCA法结合双缩脲法 | 第27页 |
| 2.2.8 体外抗氧化活性的测定：DPPH·自由基清除法 | 第27-28页 |
| 2.2.9 体外抗氧化活性的测定：·OH自由基清除法 | 第28页 |
| 2.2.10 体外抗氧化活性的测定：O_2~-·自由基清除法 | 第28-29页 |
| 2.2.11 酶解物的超滤分级 | 第29-30页 |
| 2.2.12 酶解物分子量的测定 | 第30-31页 |
| 2.2.13 体内抗氧化活性的测定 | 第31-33页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第33-68页 |
| 3.1 南瓜籽粕蛋白提取条件优化 | 第33-40页 |
| 3.1.1 碱溶法蛋白提取条件分析 | 第33-37页 |
| 3.1.2 碱溶—超声辅助法蛋白提取条件分析 | 第37-39页 |
| 3.1.3 蛋白质含量的测定 | 第39-40页 |
| 3.1.4 小结 | 第40页 |
| 3.2 南瓜籽粕蛋白酶解工艺研究 | 第40-57页 |
| 3.2.1 蛋白酶酶活力的测定 | 第40-41页 |
| 3.2.2 茚三酮标准曲线 | 第41-42页 |
| 3.2.3 双缩脲标准曲线 | 第42页 |
| 3.2.4 商品蛋白酶的筛选 | 第42-45页 |
| 3.2.5 小结 | 第45-46页 |
| 3.2.6 碱性蛋白酶酶解工艺的确定 | 第46-52页 |
| 3.2.7 碱性蛋白酶酶解物DPPH·清除率 | 第52-53页 |
| 3.2.8 风味蛋白酶继续酶解工艺的确定 | 第53-57页 |
| 3.2.9 小结 | 第57页 |
| 3.3 酶解物的精制及抗氧化活性的研究 | 第57-68页 |
| 3.3.1 酶解物的超滤分级 | 第57-60页 |
| 3.3.2 酶解物分离及分子量的测定 | 第60-62页 |
| 3.3.3 酶解物分子量的确定 | 第62-66页 |
| 3.3.4 动物实验结果与分析 | 第66-68页 |
| 第四章 结论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 附录A | 第74-76页 |
| 附录B | 第76-77页 |
