| 摘要 | 第10-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 第一章 引言 | 第17-37页 |
| 1 莲子的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.1 莲子的生理功效研究 | 第17-18页 |
| 1.2 课题组在莲子科学与工程研究进展 | 第18页 |
| 2 糖尿病的研究进展 | 第18-23页 |
| 2.1 糖尿病现状 | 第18-20页 |
| 2.2 糖尿病的类型 | 第20页 |
| 2.3 Ⅱ型糖尿病的形成原因 | 第20-22页 |
| 2.4 Ⅱ型糖尿病与降血糖食品 | 第22-23页 |
| 3 抗性淀粉的研究进展 | 第23-29页 |
| 3.1 抗性淀粉的分类 | 第23-25页 |
| 3.2 抗性淀粉的生理功能 | 第25-27页 |
| 3.3 课题组在莲子抗性淀粉研究进展 | 第27-29页 |
| 4 抗性淀粉降血糖机理的研究进展 | 第29-35页 |
| 4.1 抗性淀粉可降低餐后血糖反应 | 第29-30页 |
| 4.2 抗性淀粉持续改善餐后血糖反应 | 第30页 |
| 4.3 抗性淀粉提高肌肉与肝脏糖代谢水平 | 第30-31页 |
| 4.4 抗性淀粉通过调节脂代谢改善胰岛素敏感性 | 第31-32页 |
| 4.5 抗性淀粉可调节肠道菌群紊乱 | 第32-33页 |
| 4.6 抗性淀粉刺激肠道激素的释放 | 第33-35页 |
| 5 本论文研究的目的和意义 | 第35页 |
| 6 本论文研究内容 | 第35-37页 |
| 第二章 莲子抗性淀粉的制备与分析 | 第37-53页 |
| 1 材料与仪器 | 第38-39页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第38页 |
| 1.2 主要仪器与设备 | 第38-39页 |
| 2 试验方法 | 第39-41页 |
| 2.1 莲子淀粉的制备 | 第39页 |
| 2.2 莲子抗性淀粉样品的制备 | 第39页 |
| 2.3 抗性淀粉得率的测定 | 第39-40页 |
| 2.4 颗粒形貌观察 | 第40页 |
| 2.5 晶型分析 | 第40页 |
| 2.6 核磁共振分析 | 第40页 |
| 2.7 热力学特性分析 | 第40页 |
| 2.8 持水力和持油力测定 | 第40-41页 |
| 2.9 溶解度和膨胀度测定 | 第41页 |
| 2.10 数据处理与分析 | 第41页 |
| 3 结果与分析 | 第41-51页 |
| 3.1 不同制备方法对抗性淀粉得率的影响 | 第41-42页 |
| 3.2 不同制备方法对淀粉颗粒形貌的影响 | 第42-45页 |
| 3.3 不同制备方法对淀粉晶型的影响 | 第45-46页 |
| 3.4 不同制备方法对淀粉热力学特性的影响 | 第46-47页 |
| 3.5 不同制备方法对淀粉核磁共振图谱的影响 | 第47-48页 |
| 3.6 不同制备方法对淀粉持水力和持油力的影响 | 第48-49页 |
| 3.7 不同制备方法对淀粉膨胀度和溶解度的影响 | 第49-51页 |
| 4 小结与讨论 | 第51-53页 |
| 第三章 莲子抗性淀粉降血糖功效的研究 | 第53-68页 |
| 1 材料与仪器 | 第53-55页 |
| 1.1 实验材料 | 第53-54页 |
| 1.2 实验试剂 | 第54页 |
| 1.3 主要仪器 | 第54页 |
| 1.4 试验动物 | 第54-55页 |
| 2 试验方法 | 第55-57页 |
| 2.1 Ⅱ型糖尿病模型小鼠的建立 | 第55页 |
| 2.2 试验分组 | 第55-56页 |
| 2.3 小鼠行为指数观察 | 第56页 |
| 2.4 体重变化及摄食情况 | 第56页 |
| 2.5 空腹血糖测定 | 第56页 |
| 2.6 口服葡萄糖耐受实验 | 第56页 |
| 2.7 血清胰岛素的测定 | 第56-57页 |
| 2.8 血脂的检测 | 第57页 |
| 2.9 胰腺组织切片 | 第57页 |
| 2.10 数据处理与分析 | 第57页 |
| 3 结果与分析 | 第57-66页 |
| 3.1 莲子抗性淀粉对小鼠形态的影响 | 第57-58页 |
| 3.2 莲子抗性淀粉对小鼠采食量的影响 | 第58页 |
| 3.3 莲子抗性淀粉对糖尿病小鼠体重的影响 | 第58-60页 |
| 3.4 莲子抗性淀粉对糖尿病小鼠空腹血糖的影响 | 第60-61页 |
| 3.5 莲子抗性淀粉对糖尿病小鼠糖耐量的影响 | 第61-62页 |
| 3.6 莲子抗性淀粉对糖尿病小鼠血清胰岛素水平的影响 | 第62-64页 |
| 3.7 莲子抗性淀粉对糖尿病小鼠血脂的影响 | 第64-65页 |
| 3.8 莲子抗性淀粉对糖尿病小鼠胰腺组织形态的影响 | 第65-66页 |
| 4 小结与讨论 | 第66-68页 |
| 第四章 莲子抗性淀粉降血糖功效分子机理的研究 | 第68-92页 |
| 1 材料与仪器 | 第68-69页 |
| 1.1 实验材料 | 第68页 |
| 1.2 实验试剂 | 第68-69页 |
| 1.3 主要仪器 | 第69页 |
| 1.4 试验动物 | 第69页 |
| 2 试验方法 | 第69-73页 |
| 2.1 测序样本的采集与编号 | 第69-70页 |
| 2.2 RNA提取与转录 | 第70页 |
| 2.3 测序文库的构建 | 第70-71页 |
| 2.4 原始数据处理和分析 | 第71页 |
| 2.5 差异表达基因(DEG)的鉴定 | 第71-72页 |
| 2.6 差异表达基因的GO和KEGG通路分析 | 第72页 |
| 2.7 实时定量荧光PCR(qRT-PCR)验证 | 第72-73页 |
| 2.8 数据处理与分析 | 第73页 |
| 3 结果与分析 | 第73-89页 |
| 3.1 RNA样品质量检测 | 第73-75页 |
| 3.2 RNA测序结果分析 | 第75-77页 |
| 3.3 差异表达基因的鉴定 | 第77-78页 |
| 3.4 差异表达基因的GO分析 | 第78-80页 |
| 3.5 差异表达基因的KEGG pathway分析 | 第80-87页 |
| 3.6 与降血糖功效相关的关键基因分析 | 第87-88页 |
| 3.7 qRT-PCR验证 | 第88-89页 |
| 4 小结与讨论 | 第89-92页 |
| 第五章 莲子抗性淀粉调节糖尿病小鼠肠道菌群的研究 | 第92-118页 |
| 1 材料与仪器 | 第93-94页 |
| 1.1 实验材料 | 第93页 |
| 1.2 实验试剂 | 第93-94页 |
| 1.3 主要仪器 | 第94页 |
| 1.4 试验动物 | 第94页 |
| 2 试验方法 | 第94-100页 |
| 2.1 Ⅱ型糖尿病模型小鼠的建立和试验设计 | 第94-95页 |
| 2.2 空腹血糖测定 | 第95页 |
| 2.3 样品收集 | 第95-96页 |
| 2.4 血清胰岛素测定 | 第96页 |
| 2.5 血清生化指标分析 | 第96页 |
| 2.6 血浆中肠促胰素GIP和GLP-1的测定 | 第96页 |
| 2.7 粪便样品pH值和SCFAs测定 | 第96-97页 |
| 2.8 样品DNA提取和质量检测 | 第97页 |
| 2.9 样品16S rDNA测序 | 第97页 |
| 2.10 生物信息学分析 | 第97-98页 |
| 2.11 数据处理与Tags过滤 | 第98页 |
| 2.12 OTU聚类分析 | 第98-99页 |
| 2.13 Alpha多样性分析 | 第99页 |
| 2.14 Beta多样性分析 | 第99-100页 |
| 2.15 物种分类注释与分析 | 第100页 |
| 2.16 数据处理与分析 | 第100页 |
| 3 结果与分析 | 第100-116页 |
| 3.1 莲子抗性淀粉对空腹血糖的影响 | 第100-102页 |
| 3.2 莲子抗性淀粉对血脂的影响 | 第102-103页 |
| 3.3 莲子抗性淀粉对血清胰岛素的影响 | 第103-104页 |
| 3.4 莲子抗性淀粉对肠促胰素GLP-1和GIP分泌的影响 | 第104-105页 |
| 3.5 莲子抗性淀粉对粪便样品pH值和SCFAs的影响 | 第105-109页 |
| 3.6 测序样品质量检测 | 第109页 |
| 3.7 数据处理与质控 | 第109-110页 |
| 3.8 Alpha多样性分析 | 第110-112页 |
| 3.9 Beta多样性分析 | 第112-113页 |
| 3.10 物种分类注释与分析 | 第113-116页 |
| 4 小结与讨论 | 第116-118页 |
| 结论与展望 | 第118-121页 |
| 1 主要结论 | 第118-119页 |
| 2 创新点 | 第119-120页 |
| 3 研究展望 | 第120-121页 |
| 参考文献 | 第121-133页 |
| 作者在攻读博士学位期间的成果清单 | 第133-134页 |
| 致谢 | 第134-135页 |
