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以玉米淀粉为原料酶法合成海藻糖的研究

中文摘要第1-7页
英文摘要第7-9页
1 前言第9-21页
 1.1 海藻糖简介第9-13页
  1.1.1 海藻糖的结构第9-10页
  1.1.2 海藻糖的理化性质第10页
  1.1.3 海藻糖独特的生物学特性第10-11页
  1.1.4 海藻糖的生物机制第11页
  1.1.5 海藻糖的应用第11-13页
 1.2 海藻糖的合成方法第13-14页
 1.3 合成海藻糖的酶类第14-16页
  1.3.1 海藻糖-6-磷酸合成酶和海藻糖-6-磷酸磷酸酯酶第14页
  1.3.2 麦芽糖磷酸化酶和海藻糖磷酸化酶第14页
  1.3.3 蔗糖磷酸化酶和海藻糖磷酸化酶第14-15页
  1.3.4 海藻糖酶第15页
  1.3.5 海藻糖合酶第15页
  1.3.6 麦芽寡糖基海藻糖合酶和麦芽寡糖基海藻糖水解酶第15-16页
 1.4 淀粉基础理论第16-17页
  1.4.1 淀粉的糊化第16-17页
  1.4.2 淀粉的液化第17页
  1.4.3 糖化第17页
 1.5 诱变育种机理第17-20页
  1.5.1 紫外线诱变机理第18-19页
  1.5.2 紫外线诱变方法第19-20页
 1.6 立题意义和研究内容第20-21页
2 材料和方法第21-30页
 2.1 实验材料第21-22页
  2.1.1 菌种第21页
  2.1.2 主要试剂第21页
  2.1.3 标准样品第21页
  2.1.4 培养基第21-22页
  2.1.5 主要仪器设备第22页
 2.2 实验方法第22-30页
  2.2.1 菌体培养和收集第22页
  2.2.2 高效液相色谱法测定海藻糖条件和方法第22页
  2.2.3 菌株产酶活力的测定第22-23页
  2.2.4 菌株的筛选第23页
  2.2.5 产MTSase和MTHase活力菌株的诱变第23-24页
  2.2.6 诱变菌株的鉴定第24-25页
  2.2.7 菌体破壁方法的选择第25-26页
  2.2.8 诱变菌株培养特性的研究第26-27页
  2.2.9 MTSase和MTHase酶学特性的研究第27页
  2.2.10 MTSase和MTHase的浓缩第27-28页
  2.2.11 酶法合成海藻糖工艺的优化第28-30页
3 结果和讨论第30-51页
 3.1 菌株的筛选第30页
 3.2 菌株的诱变选育第30-32页
  3.2.1 诱变方法的选择第30页
  3.2.2 诱变剂量的选择第30-31页
  3.2.3 诱变筛选结果第31-32页
 3.3 诱变菌株的鉴定第32-34页
  3.3.1 诱变菌株形态特征第32-33页
  3.3.2 诱变菌株化学分类第33页
  3.3.3 诱变菌株生理生化特征第33页
  3.3.4 诱变菌株鉴定结果第33-34页
 3.4 ST412最佳破壁方法的选择第34-36页
 3.5 ST412培养特性的研究第36-43页
  3.5.1 ST412生长曲线的测定第36-37页
  3.5.2 最佳诱导培养基的设计第37-41页
  3.5.3 ST412培养条件的优化第41-43页
 3.6 MTSase和MTHase酶学特性的研究第43-47页
  3.6.1 酶的最适反应温度和酶对温度的稳定性第43-44页
  3.6.2 酶的最适反应pH值和酶对pH值的稳定性第44页
  3.6.3 各种金属离子对酶活力的影响第44-45页
  3.6.4 MTSase和MTHase的底物特异性第45-46页
  3.6.5 MTSase和MTHase保存稳定性的测定第46-47页
 3.7 MTSase and MTHase的浓缩第47页
 3.8 酶法合成海藻糖工艺的优化第47-51页
  3.8.1 底物对酶法合成海藻糖的影响第47-48页
  3.8.2 海藻糖合成工艺的优化第48-51页
4 结论第51-52页
 4.1 产MTSase和MTHase菌株的诱变筛选第51页
 4.2 菌株ST412的培养特性第51页
 4.3 MTSase和MTHase的酶学特性第51页
 4.4 MTSase和MTHase的浓缩第51页
 4.5 海藻糖合成工艺的优化第51-52页
致谢第52-53页
参考文献第53-59页

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