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滑菇多糖的制备及其生物学效应

中文摘要第1-7页
英文摘要第7-8页
1 前言第8-24页
 1.1 食药用菌多糖的国内外研究现状第8-13页
  1.1.1 食药用菌多糖的分离和纯化第8-10页
  1.1.2 食药用菌多糖的理化性质研究及结构分析第10-11页
  1.1.3 食药用菌多糖的生物学活性第11-13页
 1.2 肿瘤的免疫治疗第13-17页
  1.2.1 肿瘤免疫治疗的一般原则第13-14页
  1.2.2 肿瘤免疫治疗的方法第14-17页
 1.3 多发性骨髓瘤(MM)的生物学特点第17-19页
  1.3.1 定义及释义第17页
  1.3.2 流行病学第17页
  1.3.3 发病机制第17-18页
  1.3.4 骨髓瘤细胞的起源第18页
  1.3.5 病理生理学第18页
  1.3.6 MM的治疗策略第18-19页
 1.4 白细胞介素-6(IL-6)的生物学特点第19-20页
  1.4.1 IL-6简介第19页
  1.4.2 IL-6的生物学活性第19页
  1.4.3 IL-6在骨髓瘤发病机制中的重要作用第19-20页
 1.5 肿瘤坏死因子-α(TNF-α)的生物学特点第20-22页
  1.5.1 TNF的抗肿瘤作用第20-21页
  1.5.2 TNF的促肿瘤生长和浸润作用第21-22页
  1.5.3 TNF与MM的关系第22页
 1.6 乳酸脱氢酶(LDH)的生物学作用第22页
 1.7 研究的目的和意义第22-24页
2 材料与方法第24-29页
 2.1 实验材料第24-25页
  2.1.1 实验动物、材料与试剂第24页
  2.1.2 实验仪器第24-25页
 2.2 实验设计与方法第25-28页
  2.2.1 实验设计第25页
  2.2.2 材料的预处理第25页
  2.2.3 滑菇多糖提取影响因素的确定第25-26页
  2.2.4 滑菇多糖的纯化第26页
  2.2.5 滑菇多糖理化性质研究第26-27页
  2.2.6 荷瘤小鼠自然死亡率的比较第27页
  2.2.7 脾脏切片和镜检第27-28页
  2.2.8 血清中细胞因子的检测第28页
  2.2.9 肿瘤组织中乳酸脱氢酶(LDH)活力的测定第28页
 2.3 数据处理第28-29页
3 实验结果第29-41页
 3.1 滑菇多糖(PNP)提取影响因素的确定第29-33页
  3.1.1 浸提比对PNP提取率的影响第29-30页
  3.1.2 纤维素酶最适作用时间的选取第30页
  3.1.3 胰蛋白酶最佳作用时间的选取第30-31页
  3.1.4 酶解后水浸提温度对PNP提取率的影响第31-32页
  3.1.5 酶解后水浸提时间对PNP提取率的影响第32页
  3.1.6 联合工艺与单纯酶解、单纯水浸提三种多糖提取方法的比较第32-33页
 3.2 滑菇多糖的纯化第33页
 3.3 滑菇多糖(PNP)理化性质的研究第33-36页
  3.3.1 多糖颜色反应鉴定第33页
  3.3.2 多糖纯度检验第33-34页
  3.3.3 多糖含量测定第34-35页
  3.3.4 单糖组成分析第35页
  3.3.5 PNP溶解性第35-36页
 3.4 荷瘤小鼠自然死亡率的比较第36页
 3.5 实验小鼠口服PNP后T/B和S/B百分比值的变化第36-37页
 3.6 实验小鼠口服PNP后脾小结和脾巨噬细胞数的变化第37页
 3.7 实验小鼠血清中细胞因子含量测定第37-39页
  3.7.1 血清中IL-6含量变化第37-38页
  3.7.2 血清中TNF-α含量变化第38-39页
 3.8 肿瘤组织中乳酸脱氢酶(LDH)活性的比较第39-41页
4 讨论第41-48页
 4.1 滑菇多糖提取影响因素的确定第41-42页
 4.2 滑菇多糖部分理化性质的研究第42-43页
 4.3 滑菇多糖(PNP)对正常小鼠和荷骨髓瘤小鼠免疫功能的影响第43-48页
  4.3.1 PNP对荷瘤小鼠生存率及瘤重与体重百分比值的影响第44页
  4.3.2 PNP对正常和荷瘤小鼠脾脏的影响第44-45页
  4.3.3 PNP对血清中细胞因子的影响第45-47页
  4.3.4 PNP对肿瘤组织中LDH的影响第47-48页
5 结论第48-49页
参考文献第49-56页
致谢第56-57页
附录第57-58页

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