| 摘要 | 第12-14页 |
| Abstract | 第14-16页 |
| 缩略语表 | 第17-19页 |
| 第一章 文献综述 | 第19-41页 |
| 1 三种功能活性脂质的来源 | 第19-22页 |
| 1.1 角鲨烯的来源 | 第19-21页 |
| 1.1.1 动物源角鲨烯 | 第19-20页 |
| 1.1.2 植物源角鲨烯 | 第20-21页 |
| 1.1.3 微生物源角鲨烯 | 第21页 |
| 1.2 生育酚的来源 | 第21-22页 |
| 1.3 多不饱和脂肪酸的来源 | 第22页 |
| 2 三种功能活性脂质的结构 | 第22-26页 |
| 2.1 角鲨烯的结构 | 第22-23页 |
| 2.2 生育酚的结构 | 第23-24页 |
| 2.3 活性脂肪酸的结构 | 第24-26页 |
| 3 三种功能活性脂质的生物合成机制 | 第26-30页 |
| 3.1 角鲨烯的生物合成机制 | 第26-27页 |
| 3.2 生育酚的生物合成机制 | 第27-29页 |
| 3.3 n-3/n-6 PUFA的生物合成机制 | 第29-30页 |
| 4 三种功能活性脂质的生物活性 | 第30-34页 |
| 4.1 角鲨烯的生物活性 | 第30-32页 |
| 4.1.1 预防癌症 | 第30-31页 |
| 4.1.2 提高缺氧耐受力 | 第31页 |
| 4.1.3 调控动物体中胆固醇代谢 | 第31-32页 |
| 4.2 生育酚的生物活性 | 第32-33页 |
| 4.2.1 抗氧化功能 | 第32页 |
| 4.2.2 预防癌症疾病 | 第32页 |
| 4.2.3 调控基因表达 | 第32-33页 |
| 4.3 活性脂肪酸的生物活性 | 第33-34页 |
| 4.3.1 减少心血管疾病发生 | 第33页 |
| 4.3.2 调控炎症作用 | 第33页 |
| 4.3.3 调节细胞膜功能 | 第33-34页 |
| 5 三种功能活性脂质的分析方法 | 第34-38页 |
| 5.1 角鲨烯的分析方法 | 第34-35页 |
| 5.1.1 气相色谱法 | 第34页 |
| 5.1.2 液相色谱法 | 第34-35页 |
| 5.1.3 气相色谱-质谱联用法 | 第35页 |
| 5.2 生育酚的分析方法 | 第35-36页 |
| 5.2.1 高效液相色谱法 | 第35-36页 |
| 5.2.2 液相色谱-质谱联用法 | 第36页 |
| 5.3 脂肪酸的分析方法 | 第36-38页 |
| 5.3.1 气相色谱/质谱法 | 第36-37页 |
| 5.3.2 高效液相色谱/质谱法 | 第37页 |
| 5.3.3 核磁共振波谱法 | 第37-38页 |
| 6 不同牛种组织中功能活性脂质分析研究进展 | 第38-39页 |
| 6.1 不同牛种组织中角鲨烯研究进展 | 第38页 |
| 6.2 不同牛种组织中生育酚研究进展 | 第38页 |
| 6.3 不同牛种组织中脂肪酸研究进展 | 第38-39页 |
| 7 本课题的研究意义及主要研究内容 | 第39-41页 |
| 7.1 本课题研究意义 | 第39页 |
| 7.2 本课题主要研究内容 | 第39-41页 |
| 第二章 牦牛肉中角鲨烯顶空-固相微萃取-气相色谱-质谱联用定性分析 | 第41-51页 |
| 1 材料与方法 | 第42-44页 |
| 1.1 材料 | 第42页 |
| 1.1.1 原料 | 第42页 |
| 1.1.2 主要试剂与药品 | 第42页 |
| 1.1.3 主要仪器与设备 | 第42页 |
| 1.2 方法 | 第42-44页 |
| 1.2.1 固相微萃取头的活化 | 第42-43页 |
| 1.2.2 样品的前处理方法 | 第43页 |
| 1.2.3 样品的气相色谱-质谱联用检测方法 | 第43-44页 |
| 2 结果与分析 | 第44-48页 |
| 2.1 固相微萃取模式的选取 | 第44页 |
| 2.2 毛细管色谱柱的选取 | 第44-46页 |
| 2.3 固相微萃取头的选取 | 第46页 |
| 2.4 牦牛肉中角鲨烯的结构解析 | 第46-48页 |
| 3 讨论 | 第48-50页 |
| 4 结论 | 第50-51页 |
| 第三章 牦牛肉中角鲨烯的高效液相色谱-光二极管阵列定量分析 | 第51-67页 |
| 1 材料与方法 | 第52-55页 |
| 1.1 材料 | 第52-53页 |
| 1.1.1 原料 | 第52页 |
| 1.1.2 主要试剂与药品 | 第52页 |
| 1.1.3 主要仪器与设备 | 第52-53页 |
| 1.2 方法 | 第53-55页 |
| 1.2.1 角鲨烯标准溶液的配制 | 第53页 |
| 1.2.2 样品的前处理方法 | 第53-54页 |
| 1.2.3 高效液相色谱条件优化 | 第54-55页 |
| 1.2.4 方法学验证 | 第55页 |
| 2 结果与分析 | 第55-63页 |
| 2.1 样品皂化反应条件的优化 | 第55-58页 |
| 2.1.1 氢氧化钾浓度对萃取角鲨烯含量的影响 | 第55-56页 |
| 2.1.2 反应温度对萃取角鲨烯含量的影响 | 第56-57页 |
| 2.1.3 反应时间对萃取角鲨烯含量的影响 | 第57页 |
| 2.1.4 萃取溶剂对萃取角鲨烯含量的影响 | 第57-58页 |
| 2.2 高效液相色谱条件的优化 | 第58-61页 |
| 2.2.1 液相色谱柱的选择 | 第58-59页 |
| 2.2.2 流动相体系的选择 | 第59-60页 |
| 2.2.3 流动相体系的优化 | 第60-61页 |
| 2.2.4 检测器及检测波长的选择 | 第61页 |
| 2.3 方法学论证 | 第61-63页 |
| 2.3.1 精密度实验 | 第61-62页 |
| 2.3.2 加标回收率实验 | 第62页 |
| 2.3.3 标准曲线的线性范围 | 第62页 |
| 2.3.4 检测限和定量限的测定 | 第62-63页 |
| 3 讨论 | 第63-66页 |
| 3.1 样品皂化反应条件的优化 | 第63-64页 |
| 3.2 液相色谱条件的优化 | 第64-66页 |
| 3.2.1 液相色谱柱的选择 | 第64页 |
| 3.2.2 流动相体系的选择及优化 | 第64-65页 |
| 3.2.3 检测器的选择及波长确定 | 第65-66页 |
| 3.3 方法学论证 | 第66页 |
| 4 结论 | 第66-67页 |
| 第四章 牦牛五种组织中功能性脂质成分分析 | 第67-85页 |
| 1 材料与方法 | 第68-72页 |
| 1.1 材料 | 第68-69页 |
| 1.1.1 原料 | 第68页 |
| 1.1.2 主要试剂与药品 | 第68-69页 |
| 1.1.3 主要仪器与设备 | 第69页 |
| 1.2 方法 | 第69-72页 |
| 1.2.1 牦牛五种组织中理化指标分析 | 第69-70页 |
| 1.2.2 角鲨烯含量的分析 | 第70-71页 |
| 1.2.3 脂肪酸的分析 | 第71页 |
| 1.2.4 生育酚组成及含量分析 | 第71-72页 |
| 1.2.5 统计分析 | 第72页 |
| 2 结果与分析 | 第72-81页 |
| 2.1 牦牛五种组织中理化指标分析 | 第72-73页 |
| 2.2 牦牛五种组织中角鲨烯分析 | 第73-74页 |
| 2.3 牦牛五种组织中生育酚分析 | 第74-76页 |
| 2.3.1 牦牛五种组织中总生育酚分析 | 第74-75页 |
| 2.3.2 牦牛五种组织中 α-生育酚分析 | 第75页 |
| 2.3.3 牦牛五种组织中 β+γ-生育酚分析 | 第75页 |
| 2.3.4 牦牛五种组织中 δ-生育酚分析 | 第75-76页 |
| 2.4 牦牛五种组织中脂肪酸组成分析 | 第76-81页 |
| 2.4.1 牦牛五种组织中脂肪酸种类及营养脂肪酸比值分析 | 第76-78页 |
| 2.4.2 牦牛五种组织中饱和脂肪酸分析 | 第78-79页 |
| 2.4.3 牦牛五种组织中单不饱和脂肪酸分析 | 第79-80页 |
| 2.4.4 牦牛五种组织中多不饱和脂肪酸分析 | 第80-81页 |
| 3 讨论 | 第81-84页 |
| 3.1 牦牛五种组织中理化指标分析 | 第81页 |
| 3.2 牦牛五种组织中角鲨烯分析 | 第81-82页 |
| 3.3 牦牛五种组织中生育酚分析 | 第82-83页 |
| 3.4 牦牛五种组织中脂肪酸组成分析 | 第83-84页 |
| 4 结论 | 第84-85页 |
| 第五章 水牛五种组织中功能性脂质成分分析 | 第85-100页 |
| 1 材料与方法 | 第86-89页 |
| 1.1 材料 | 第86-87页 |
| 1.1.1 原料 | 第86页 |
| 1.1.2 主要试剂与药品 | 第86页 |
| 1.1.3 主要仪器与设备 | 第86-87页 |
| 1.2 方法 | 第87-89页 |
| 1.2.1 五种组织的理化指标分析 | 第87-88页 |
| 1.2.2 五种组织的角鲨烯含量分析 | 第88页 |
| 1.2.3 五种组织的脂肪酸组成分析 | 第88页 |
| 1.2.4 五种组织的生育酚组成及含量分析 | 第88页 |
| 1.2.5 统计分析 | 第88-89页 |
| 2 结果与分析 | 第89-97页 |
| 2.1 水牛五种组织中理化指标分析 | 第89-90页 |
| 2.2 水牛五种组织中角鲨烯分析 | 第90页 |
| 2.3 水牛五种组织中生育酚分析 | 第90-91页 |
| 2.4 水牛五种组织中脂肪酸分析 | 第91-97页 |
| 2.4.1 水牛五种组织中脂肪酸种类及营养脂肪酸比值分析 | 第91-94页 |
| 2.4.2 水牛五种组织中饱和脂肪酸分析 | 第94-95页 |
| 2.4.3 水牛五种组织中单不饱和脂肪酸分析 | 第95-96页 |
| 2.4.4 水牛五种组织中多不饱和脂肪酸分析 | 第96-97页 |
| 3 讨论 | 第97-99页 |
| 3.1 水牛五种组织中角鲨烯含量分析 | 第97页 |
| 3.2 水牛五种组织中生育酚含量分析 | 第97-98页 |
| 3.3 水牛五种组织中脂肪酸分析 | 第98-99页 |
| 4 结论 | 第99-100页 |
| 第六章 黄牛五种组织中功能性脂质成分分析 | 第100-118页 |
| 1 材料与方法 | 第101-104页 |
| 1.1 材料 | 第101-102页 |
| 1.1.1 原料 | 第101页 |
| 1.1.2 主要试剂与药品 | 第101-102页 |
| 1.1.3 主要仪器与设备 | 第102页 |
| 1.2 方法 | 第102-104页 |
| 1.2.1 脂质提取及总脂质含量测定 | 第102页 |
| 1.2.2 水分含量测定 | 第102-103页 |
| 1.2.3 总灰分含量测定 | 第103页 |
| 1.2.4 pH测定 | 第103页 |
| 1.2.5 角鲨烯含量的分析 | 第103页 |
| 1.2.6 脂肪酸组成分析 | 第103页 |
| 1.2.7 生育酚组成及含量分析 | 第103-104页 |
| 1.2.8 统计分析 | 第104页 |
| 2 结果与分析 | 第104-113页 |
| 2.1 黄牛五种组织的理化指标分析 | 第104-105页 |
| 2.2 黄牛五种组织中角鲨烯含量分析 | 第105-106页 |
| 2.3 黄牛五种组织的脂肪酸分析 | 第106-111页 |
| 2.3.1 黄牛五种组织的脂肪酸种类及营养脂肪酸比值分析 | 第106-108页 |
| 2.3.2 黄牛五种组织中饱和脂肪酸分析 | 第108-109页 |
| 2.3.3 黄牛五种组织中单不饱和脂肪酸分析 | 第109-110页 |
| 2.3.4 黄牛五种组织中多不饱和脂肪酸分析 | 第110-111页 |
| 2.4 黄牛五种组织的生育酚分析 | 第111-113页 |
| 2.4.1 五种黄牛组织中总生育酚分析 | 第111-112页 |
| 2.4.2 五种黄牛组织中 α-生育酚分析 | 第112页 |
| 2.4.3 五种黄牛组织中 β+γ-生育酚分析 | 第112页 |
| 2.4.4 五种黄牛组织中 δ-生育酚分析 | 第112-113页 |
| 3 讨论 | 第113-117页 |
| 3.1 五种黄牛组织的理化指标分析 | 第113页 |
| 3.2 五种黄牛组织中角鲨烯分析 | 第113-114页 |
| 3.3 五种黄牛组织中脂肪酸分析 | 第114-116页 |
| 3.4 五种黄牛组织中生育酚分析 | 第116-117页 |
| 4 结论 | 第117-118页 |
| 第七章 不同热处理方式对牦牛肉脂质氧化、脂肪酸及风味物质影响研究 | 第118-143页 |
| 1 材料与方法 | 第119-122页 |
| 1.1 材料 | 第119-120页 |
| 1.1.1 原料 | 第119页 |
| 1.1.2 主要试剂与药品 | 第119页 |
| 1.1.3 主要仪器与设备 | 第119-120页 |
| 1.2 方法 | 第120-122页 |
| 1.2.1 实验设计 | 第120页 |
| 1.2.2 基本理化指标测定 | 第120页 |
| 1.2.3 加热损失率测定 | 第120-121页 |
| 1.2.4 TBARS测定 | 第121页 |
| 1.2.5 脂肪酸的分析 | 第121页 |
| 1.2.6 挥发性风味化合物的测定 | 第121-122页 |
| 1.2.7 统计分析 | 第122页 |
| 2 结果与分析 | 第122-139页 |
| 2.1 热处理方式对牦牛肉基本理化指标的影响 | 第122-123页 |
| 2.2 热处理方式对牦牛肉加热损失率的影响 | 第123-124页 |
| 2.3 热处理方式对牦牛肉脂质氧化的影响 | 第124-125页 |
| 2.4 热处理方式对牦牛肉脂肪酸组成的影响 | 第125-130页 |
| 2.4.1 热处理方式对脂肪酸种类和营养脂肪酸比值的影响 | 第125-128页 |
| 2.4.2 热处理方式对牦牛肉中饱和脂肪酸的影响 | 第128-129页 |
| 2.4.3 热处理方式对牦牛肉中单不饱和脂肪酸的影响 | 第129-130页 |
| 2.4.4 热处理方式对牦牛肉中多不饱和脂肪酸的影响 | 第130页 |
| 2.5 热处理方式对牦牛肉风味物质形成的影响 | 第130-139页 |
| 2.5.1 热处理方式对牦牛肉总风味物质的影响 | 第130-131页 |
| 2.5.2 热处理方式对牦牛肉醛类化合物的影响 | 第131-133页 |
| 2.5.3 热处理方式对牦牛肉烃类化合物的影响 | 第133-135页 |
| 2.5.4 热处理方式对牦牛肉醇类和酸类化合物的影响 | 第135-136页 |
| 2.5.5 热处理方式对牦牛肉酯类化合物的影响 | 第136-137页 |
| 2.5.6 热处理方式对牦牛肉酮类化合物的影响 | 第137-138页 |
| 2.5.7 热处理方式对牦牛肉含氮/含硫化合物的影响 | 第138-139页 |
| 3 讨论 | 第139-142页 |
| 3.1 热处理方式对牦牛肉加工损失率的影响 | 第139页 |
| 3.2 热处理方式对牦牛肉脂质氧化的影响 | 第139-140页 |
| 3.3 热处理方式对牦牛肉脂肪酸变化的影响 | 第140-141页 |
| 3.4 热处理方式对牦牛肉风味物质形成的影响 | 第141-142页 |
| 4 结论 | 第142-143页 |
| 第八章 结论、创新点与展望 | 第143-146页 |
| 1 结论 | 第143-145页 |
| 2 创新点 | 第145页 |
| 3 展望 | 第145-146页 |
| 参考文献 | 第146-166页 |
| 作者简介 | 第166-167页 |
| 攻读博士学位期间研究成果 | 第167-168页 |
| 致谢 | 第168-170页 |
