| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 文献综述 | 第11-19页 |
| 1.1 单增李斯特菌生物学特性 | 第11页 |
| 1.2 单增李斯特菌主要危害因子 | 第11-14页 |
| 1.2.1 菌膜的形成与危害 | 第12-13页 |
| 1.2.2 溶血素(LLO)的形成与危害 | 第13-14页 |
| 1.3 食品中单增李斯特菌污染状况 | 第14-15页 |
| 1.4 微生物生长预测模型 | 第15-16页 |
| 1.4.1 预测微生物学的概念及应用 | 第15页 |
| 1.4.2 预测微生物学分类 | 第15-16页 |
| 1.5 单增李斯特菌控制方法 | 第16-17页 |
| 1.6 本课题研究的目的及意义 | 第17-19页 |
| 1.6.1 课题研究目的 | 第17-18页 |
| 1.6.2 课题研究内容 | 第18-19页 |
| 2 低温水产品中单增李斯特菌分离与鉴定 | 第19-44页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第19-21页 |
| 2.1.1 实验标准菌种 | 第19页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.3 试验仪器 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-32页 |
| 2.2.1 样品的采集和预处理 | 第21-26页 |
| 2.2.2 增菌培养 | 第26页 |
| 2.2.3 样品稀释与接种 | 第26页 |
| 2.2.4 分离与纯化 | 第26-27页 |
| 2.2.5 革兰氏染色筛选 | 第27页 |
| 2.2.6 生化水平筛选 | 第27页 |
| 2.2.7 双重PCR筛选 | 第27-29页 |
| 2.2.8 16S rRNA鉴定 | 第29-30页 |
| 2.2.9 分离菌株的生物学特性 | 第30-32页 |
| 2.3 结果与分析 | 第32-42页 |
| 2.3.1 形态鉴定分析 | 第32-33页 |
| 2.3.2 革兰氏筛选结果 | 第33页 |
| 2.3.3 生化实验筛选结果 | 第33-34页 |
| 2.3.4 双重PCR筛选结果 | 第34-36页 |
| 2.3.5 16S rRNA鉴定结果分析 | 第36-37页 |
| 2.3.6 分离菌株生物学特性分析 | 第37-42页 |
| 2.4 小结 | 第42-44页 |
| 3 低温水产品中单增李斯特菌的危害评价 | 第44-53页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第44页 |
| 3.1.1 实验菌株 | 第44页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第44页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第44页 |
| 3.2 实验方法 | 第44-46页 |
| 3.2.1 基质的制备 | 第44-45页 |
| 3.2.2 菌株的活化及菌悬液的制备 | 第45页 |
| 3.2.3 不同基质中LM生物被膜的检测 | 第45页 |
| 3.2.4 不同基质中LM溶血活性的检测 | 第45-46页 |
| 3.3 结果分析 | 第46-51页 |
| 3.3.1 TSB-YE基质中LM菌膜检测结果 | 第46页 |
| 3.3.2 凡纳滨对虾基质中LM菌膜检测结果 | 第46-47页 |
| 3.3.3 罗非鱼基质中LM菌膜检测结果 | 第47页 |
| 3.3.4 花蛤基质中LM菌膜检测结果 | 第47-48页 |
| 3.3.5 TSA-YE基质中LM溶血活性结果分析 | 第48-49页 |
| 3.3.6 凡纳滨对虾基质中LM溶血活性结果分析 | 第49-50页 |
| 3.3.7 罗非鱼基质中LM溶血活性结果分析 | 第50页 |
| 3.3.8 花蛤基质中LM溶血活性结果分析 | 第50-51页 |
| 3.4 小结 | 第51-53页 |
| 4 低温水产品中单增李斯特菌生长预测模型的建立 | 第53-82页 |
| 4.1 实验材料与仪器 | 第53页 |
| 4.1.1 实验菌株 | 第53页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第53页 |
| 4.2 实验方法 | 第53-56页 |
| 4.2.1 基质的制备 | 第53页 |
| 4.2.2 菌株的活化以及菌悬液的制备 | 第53页 |
| 4.2.3 标准曲线的绘制 | 第53页 |
| 4.2.4 单增李斯特菌生长测定 | 第53-54页 |
| 4.2.5 不同基质中单增李斯特菌生长预测模型的建立 | 第54-56页 |
| 4.3 结果分析 | 第56-80页 |
| 4.3.1 标准曲线的制作 | 第56页 |
| 4.3.2 TSA-YE培养基水平LM生长预测模型的建立 | 第56-63页 |
| 4.3.3 凡纳滨对虾基质中LM生长预测模型的建立 | 第63-69页 |
| 4.3.4 罗非鱼基质中LM生长预测模型的建立 | 第69-74页 |
| 4.3.5 花蛤基质中LM生长预测模型的建立 | 第74-80页 |
| 4.4 小结 | 第80-82页 |
| 5 细菌素复合纤维对单增李斯特菌的控制 | 第82-89页 |
| 5.1 实验材料与仪器 | 第82-83页 |
| 5.1.1 实验菌株 | 第82页 |
| 5.1.2 实验试剂 | 第82页 |
| 5.1.3 实验仪器 | 第82-83页 |
| 5.2 实验方法 | 第83-84页 |
| 5.2.1 细菌素的制备 | 第83页 |
| 5.2.2 PVA-细菌素混合剂制备 | 第83页 |
| 5.2.3 静电纺丝制备细菌素复合纤维 | 第83页 |
| 5.2.4 细菌素复合纤维抑菌活性的测定 | 第83-84页 |
| 5.2.5 细菌素复合纤维的释放 | 第84页 |
| 5.2.6 扫描电镜检测细菌素复合纤维的形态 | 第84页 |
| 5.2.7 傅里叶红外光谱检测细菌素复合纤维的结构 | 第84页 |
| 5.2.8 细菌素复合纤维在水产基质中对LM的控制效应 | 第84页 |
| 5.3 结果与分析 | 第84-88页 |
| 5.3.1 抑菌活性结果分析 | 第84-85页 |
| 5.3.2 释放结果分析 | 第85-86页 |
| 5.3.3 扫描电镜结果分析 | 第86-87页 |
| 5.3.4 傅里叶红外的结构分析结果 | 第87页 |
| 5.3.5 水产基质中对LM的控制效果评价 | 第87-88页 |
| 5.4 小结 | 第88-89页 |
| 6 结论与展望 | 第89-91页 |
| 6.1 结论 | 第89-90页 |
| 6.2 展望 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-99页 |
| 致谢 | 第99-100页 |
| 导师简介 | 第100-101页 |
| 作者简介 | 第101页 |
