| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略语表 | 第7-10页 |
| 第1章 文献综述 | 第10-22页 |
| 1.1 前言 | 第10页 |
| 1.2 伏马毒素 B_1(Fumonisin B_1,FB_1)及其检测方法研究进展 | 第10-17页 |
| 1.2.1 FB_1的理化性质 | 第10-12页 |
| 1.2.2 FB_1的主要毒性 | 第12-13页 |
| 1.2.3 FB_1的污染现状 | 第13页 |
| 1.2.4 FB_1的限量标准 | 第13-14页 |
| 1.2.5 FB_1检测方法的研究进展 | 第14-17页 |
| 1.3 金纳米粒子的概述 | 第17-18页 |
| 1.3.1 金纳米粒子 | 第17页 |
| 1.3.2 金纳米粒子的局域等离子共振效应 | 第17-18页 |
| 1.4 表面等离子共振酶联免疫吸附法 | 第18-20页 |
| 1.5 本论文的研究意义及主要内容 | 第20-22页 |
| 第2章 建立葡萄糖氧化酶介导的金纳米粒子成核生长的 pELISA 检测玉米中的FB_1 | 第22-34页 |
| 2.1 前言 | 第22-23页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第23-24页 |
| 2.2.1 主要试剂及材料 | 第23页 |
| 2.2.2 主要仪器及设备 | 第23-24页 |
| 2.2.3 主要试剂的配制 | 第24页 |
| 2.3 实验方法 | 第24-27页 |
| 2.3.1 5 nm AuNPs 的合成 | 第24页 |
| 2.3.2 FB_1 标记 GOx(GOx@ FB_1) | 第24-25页 |
| 2.3.3 优化抗体和GOx@FB_1用量 | 第25页 |
| 2.3.4 优化竞争反应pH、盐离子浓度、甲醇浓度和免疫学反应时间 | 第25-26页 |
| 2.3.5 优化底物浓度和酶催化时间 | 第26页 |
| 2.3.6 建立 pELISA 定量检测 FB_1 | 第26-27页 |
| 2.3.7 检测玉米中的FB_1 | 第27页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第27-33页 |
| 2.4.1 GOx 介导 AuNPs 可控生长 | 第27-29页 |
| 2.4.2 相关核心参数对 pELISA 的影响 | 第29-31页 |
| 2.4.3 pELISA 定量检测 FB_1标准曲线的建立 | 第31页 |
| 2.4.4 FB_1特异性评价 | 第31-32页 |
| 2.4.5 pELISA 在实际样本中的应用及方法学对比 | 第32-33页 |
| 2.5 小结 | 第33-34页 |
| 第3章 结论与展望 | 第34-35页 |
| 3.1 结论 | 第34页 |
| 3.2 展望 | 第34-35页 |
| 致谢 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-43页 |
| 附录 A 试剂材料 | 第43-45页 |
| 附录 B 仪器设备 | 第45-46页 |
| 个人介绍 | 第46页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第46页 |
