发酵法提取海参卵中类胡萝卜素的研究
| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-24页 |
| ·类胡萝卜素概述 | 第11-19页 |
| ·类胡萝卜素的分布 | 第11-12页 |
| ·类胡萝卜素在高等绿色植物中的分布 | 第11-12页 |
| ·类胡萝卜素在藻类中的分布 | 第12页 |
| ·类胡萝卜素在微生物中的分布 | 第12页 |
| ·类胡萝卜素在海产动物中的分布 | 第12页 |
| ·类胡萝卜素的分类 | 第12-13页 |
| ·类胡萝卜素的分子结构 | 第13-14页 |
| ·类胡萝卜素的理化性质 | 第14页 |
| ·类胡萝卜素的生物学特性与人类健康 | 第14-15页 |
| ·类胡萝卜素的制备方法 | 第15-16页 |
| ·化学合成法 | 第15页 |
| ·微生物发酵法 | 第15-16页 |
| ·天然提取法 | 第16页 |
| ·类胡萝卜素的分离纯化 | 第16-17页 |
| ·类胡萝卜素的分析测定 | 第17-18页 |
| ·分光光度法 | 第17页 |
| ·薄层层析法 | 第17-18页 |
| ·高效液相色谱法 | 第18页 |
| ·类胡萝卜素的应用 | 第18-19页 |
| ·虾青素 | 第19-21页 |
| ·虾青素概述 | 第19页 |
| ·虾青素的制备方法 | 第19-21页 |
| ·虾壳蟹壳直接提取法 | 第20页 |
| ·雨生红球藻培养法 | 第20页 |
| ·红发夫酵母发酵法 | 第20-21页 |
| ·化学合成法 | 第21页 |
| ·虾青素的应用 | 第21页 |
| ·天然虾青素的生产状况展 | 第21页 |
| ·海参卵 | 第21-22页 |
| ·本论文的研究目的、意义和主要内容 | 第22-24页 |
| ·目的和意义 | 第22页 |
| ·主要内容 | 第22-24页 |
| 第二章 类胡萝卜素的分析 | 第24-32页 |
| ·前言 | 第24页 |
| ·实验材料与仪器 | 第24-25页 |
| ·实验材料与主要试剂 | 第24-25页 |
| ·实验仪器 | 第25页 |
| ·实验方法 | 第25-27页 |
| ·薄层层析 | 第25-26页 |
| ·高效液相色谱法 | 第26-27页 |
| ·类胡萝卜素含量的测定 | 第27页 |
| ·实验结果与讨论 | 第27-31页 |
| ·TLC展开剂的选择 | 第27-29页 |
| ·薄层层析色谱图 | 第29页 |
| ·高效液相色谱图 | 第29-30页 |
| ·类胡萝卜素含量的测定 | 第30-31页 |
| ·本章小结 | 第31-32页 |
| 第三章 类胡萝卜素提取条件的研究 | 第32-43页 |
| ·前言 | 第32页 |
| ·实验材料与仪器 | 第32-33页 |
| ·实验材料与试剂 | 第32-33页 |
| ·实验仪器与设备 | 第33页 |
| ·实验方法 | 第33-35页 |
| ·原料含水量的测定 | 第33页 |
| ·原料状态的选择 | 第33页 |
| ·有机溶剂提取法 | 第33-34页 |
| ·类胡萝卜素含量的测定 | 第34页 |
| ·类胡萝卜素提取条件优化单因素实验 | 第34页 |
| ·超声辅助提取法超声功率的选择 | 第34页 |
| ·超声辅助提取法超声时间的选择 | 第34页 |
| ·皂化处理法提取 | 第34页 |
| ·皂化用碱种类及用碱比例的选择 | 第34-35页 |
| ·皂化时间的选择 | 第35页 |
| ·皂化温度的选择 | 第35页 |
| ·实验结果与讨论 | 第35-42页 |
| ·原料的含水量 | 第35页 |
| ·原料状态的选择 | 第35-36页 |
| ·提取溶剂的选择 | 第36页 |
| ·提取溶剂倍数的选择 | 第36-37页 |
| ·提取时间的优化 | 第37-38页 |
| ·提取温度的优化 | 第38页 |
| ·超声功率对提取效果影响 | 第38-39页 |
| ·超声时间对提取效果影响 | 第39-40页 |
| ·皂化用碱及用碱比例的选择 | 第40页 |
| ·皂化时间的选择 | 第40-41页 |
| ·皂化温度的选择 | 第41-42页 |
| ·本章小结 | 第42-43页 |
| 第四章 发酵法提取工艺的优化 | 第43-53页 |
| ·前言 | 第43页 |
| ·实验材料与仪器 | 第43-45页 |
| ·实验菌种 | 第43-44页 |
| ·实验材料与试剂 | 第44页 |
| ·实验仪器与设备 | 第44-45页 |
| ·实验方法 | 第45-47页 |
| ·培养基 | 第45页 |
| ·斜面培养基 | 第45页 |
| ·固态发酵培养基 | 第45页 |
| ·微生物法菌种的选择 | 第45页 |
| ·微生物法发酵时间的选择 | 第45页 |
| ·黑曲霉848生物量的测定 | 第45-46页 |
| ·接种量的选择 | 第46页 |
| ·酶液的制备 | 第46页 |
| ·酶法提取 | 第46页 |
| ·酶种类及反应温度的选择 | 第46页 |
| ·酶法提取反应时间的选择 | 第46页 |
| ·酶法提取法加酶量的选择 | 第46-47页 |
| ·类胡萝卜素提取率的计算 | 第47页 |
| ·实验结果与讨论 | 第47-52页 |
| ·微生物法提取菌种的选择 | 第47-48页 |
| ·微生物法提取发酵时间的选择 | 第48页 |
| ·微生物法提取接种量的选择 | 第48-49页 |
| ·酶种类与酶反应温度的选择 | 第49-50页 |
| ·酶反应时间的选择 | 第50-51页 |
| ·加酶量的选择 | 第51-52页 |
| ·不同提取方法的对比 | 第52页 |
| ·本章小结 | 第52-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
