| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-14页 |
| 0 前言 | 第14-34页 |
| ·我国水产品行业现状 | 第14页 |
| ·水产品致病菌污染情况及检测方法 | 第14-20页 |
| ·水产品中主要致病菌 | 第15-17页 |
| ·国内外水产品中致病菌检测方法的研究现状 | 第17-20页 |
| ·免疫磁珠技术 | 第20-24页 |
| ·免疫磁珠的性质 | 第20-21页 |
| ·免疫磁珠技术的基本原理 | 第21-22页 |
| ·免疫磁珠技术的应用 | 第22-24页 |
| ·细菌荧光素酶-NADH:FMN氧化还原酶的生物发光体系 | 第24-28页 |
| ·细菌荧光素酶-NADH:FMN氧化还原酶的性质和结构 | 第25-26页 |
| ·细菌荧光素酶-NADH:FMN氧化还原酶反应原理 | 第26页 |
| ·细菌荧光素酶-NADH:FMN氧化还原酶生物发光体系的应用 | 第26-28页 |
| ·本论文的研究目的和意义 | 第28-29页 |
| 参考文献 | 第29-34页 |
| 1 细菌荧光素酶-NADH:FMN 氧化还原酶体系的建立 | 第34-46页 |
| ·引言 | 第34-35页 |
| ·实验仪器与材料 | 第35-36页 |
| ·主要仪器 | 第35页 |
| ·主要试剂 | 第35页 |
| ·菌种 | 第35-36页 |
| ·培养基 | 第36页 |
| ·主要试剂配置 | 第36页 |
| ·实验方法 | 第36-38页 |
| ·双酶提取 | 第36-37页 |
| ·生物发光强度测定 | 第37页 |
| ·双酶酶活测定 | 第37页 |
| ·生物发光反应的动力学曲线 | 第37页 |
| ·NADH 标准曲线的测定 | 第37-38页 |
| ·结果与讨论 | 第38-43页 |
| ·生物发光反应的动力学曲线 | 第38-39页 |
| ·细菌荧光素酶-NADH:FMN 氧化还原酶体系优化 | 第39页 |
| ·双酶提取过程中粗酶发光强度的监测 | 第39-40页 |
| ·NADH 标准曲线的测定 | 第40-43页 |
| ·小结 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-46页 |
| 2 免疫磁珠法分选水产品中致病菌的研究 | 第46-75页 |
| ·引言 | 第46-47页 |
| ·实验仪器与材料 | 第47-50页 |
| ·实验仪器 | 第47-48页 |
| ·主要试剂与材料 | 第48-49页 |
| ·菌种 | 第49页 |
| ·培养基 | 第49-50页 |
| ·实验方法 | 第50-56页 |
| ·免疫磁珠分选法的分选步骤 | 第50页 |
| ·免疫磁珠分选菌前后的形态观察 | 第50页 |
| ·纯菌培养及菌悬液制备 | 第50-51页 |
| ·Dynabeads anti-Listeria 的灵敏性实验 | 第51页 |
| ·Dynabeads anti-Salmonella 灵敏性实验 | 第51-52页 |
| ·Dynabeads anti-Listeria 的特异性实验 | 第52页 |
| ·Dynabeads anti-Salmonella 特异性实验 | 第52页 |
| ·高菌液浓度的单增李斯特菌、鼠伤寒沙门氏菌的免疫磁珠分选 | 第52-53页 |
| ·免疫磁珠分选水产品中单增李斯特菌、鼠伤寒沙门氏菌 | 第53页 |
| ·霍乱弧菌免疫磁珠的制备 | 第53-55页 |
| ·霍乱弧菌免疫磁珠分选菌体的条件优化 | 第55-56页 |
| ·免疫磁珠分选霍乱弧菌的应用 | 第56页 |
| ·结果与讨论 | 第56-72页 |
| ·免疫磁珠分选菌前后的形态观察结果 | 第56-58页 |
| ·Dynabeads anti-Listeria 的灵敏性结果 | 第58-59页 |
| ·Dynabeads anti-Salmonella 灵敏性实验结果 | 第59-60页 |
| ·Dynabeads anti-Listeria 的特异性实验结果 | 第60-61页 |
| ·Dynabeads anti-Salmonella 特异性实验结果 | 第61-63页 |
| ·高菌液浓度的单增李斯特菌、鼠伤寒沙门氏菌的免疫磁珠分选结果 | 第63-65页 |
| ·免疫磁珠分选水产品中单增李斯特菌、鼠伤寒沙门氏菌的应用结果 | 第65-67页 |
| ·霍乱弧菌免疫磁珠的制备 | 第67-68页 |
| ·霍乱弧菌免疫磁珠分选菌体的条件优化结果 | 第68-70页 |
| ·免疫磁珠分选霍乱弧菌的应用 | 第70-72页 |
| ·小结 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-75页 |
| 3 细菌荧光素酶-NADH:FMN 氧化还原酶双酶体系的应用 | 第75-93页 |
| ·引言 | 第75-76页 |
| ·实验仪器与材料 | 第76-78页 |
| ·实验仪器 | 第76页 |
| ·主要试剂与材料 | 第76-77页 |
| ·菌种 | 第77-78页 |
| ·实验方法 | 第78-80页 |
| ·胞内NADH提取方法的选择和优化 | 第78-79页 |
| ·双酶体系测定单位菌体胞内NADH 含量 | 第79页 |
| ·双酶体系与与IMS联用进行纯菌检测 | 第79-80页 |
| ·双酶体系与IMS 联用进行水产品中致病菌检测 | 第80页 |
| ·结果与讨论 | 第80-91页 |
| ·胞内 NADH 提取方法的确定 | 第80-83页 |
| ·不同培养时间菌体胞内NADH 含量以及单位菌体内NADH 含量的确定 | 第83-85页 |
| ·双酶体系与IMS 联用纯菌检测结果 | 第85-88页 |
| ·双酶体系与IMS 联用进行水产品致病菌检测结果 | 第88-91页 |
| ·小结 | 第91页 |
| 参考文献 | 第91-93页 |
| 4 水产品样品前增菌研究 | 第93-104页 |
| ·引言 | 第93-94页 |
| ·实验仪器与材料 | 第94-95页 |
| ·实验仪器 | 第94-95页 |
| ·主要试剂与材料 | 第95页 |
| ·菌种 | 第95页 |
| ·实验方法 | 第95-96页 |
| ·菌悬液制备 | 第95页 |
| ·鱼肉样品的制备 | 第95-96页 |
| ·增菌液对单增李斯特菌、鼠伤寒沙门氏菌生长的影响 | 第96页 |
| ·单增李斯特菌、鼠伤寒沙门氏菌不同初始菌数的增菌 | 第96页 |
| ·其他各竞争菌在EB 增菌液中的生长 | 第96页 |
| ·其他各竞争菌在SC 增菌液中的生长 | 第96页 |
| ·结果与讨论 | 第96-102页 |
| ·增菌培养液对单增李斯特菌、鼠伤寒沙门氏菌生长的影响 | 第96-98页 |
| ·添加不同初始菌数的单增李斯特菌、鼠伤寒沙门氏菌的生长 | 第98-99页 |
| ·其他各竞争菌在EB 培养基中的生长 | 第99-101页 |
| ·其他各竞争菌在SC 培养基中的生长 | 第101-102页 |
| ·小结 | 第102页 |
| 参考文献 | 第102-104页 |
| 5 论文总结 | 第104-106页 |
| 6 论文的创新性 | 第106-107页 |
| 7 后期工作展望 | 第107-108页 |
| 致谢 | 第108-109页 |
| 个人简历 | 第109页 |
| 论文发表 | 第109页 |
