| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第1章 文献综述 | 第13-21页 |
| 1.1 前言 | 第13页 |
| 1.2 硒元素与健康 | 第13-15页 |
| 1.2.1 人体中的硒 | 第13-14页 |
| 1.2.2 硒的概述 | 第14页 |
| 1.2.3 硒的生物活性及其转化 | 第14-15页 |
| 1.3 香菇多糖 | 第15-16页 |
| 1.3.1 香菇多糖的制备 | 第15页 |
| 1.3.2 香菇多糖的生理功能 | 第15-16页 |
| 1.4 硒多糖 | 第16-18页 |
| 1.4.1 硒多糖的来源及结构 | 第16-17页 |
| 1.4.2 硒多糖的生理活性 | 第17页 |
| 1.4.3 硒多糖的制备方法 | 第17-18页 |
| 1.5 研究目的及意义 | 第18-21页 |
| 1.5.1 研究目的及意义 | 第18页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第18-21页 |
| 第2章 香菇硒多糖发酵菌株及液体培养基的筛选 | 第21-33页 |
| 前言 | 第21页 |
| 2.1 材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 供试菌种 | 第21页 |
| 2.1.2 试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.3 仪器 | 第22页 |
| 2.2 方法 | 第22-25页 |
| 2.2.1 培养基 | 第22-23页 |
| 2.2.2 Na_2SeO_3溶液的配制 | 第23页 |
| 2.2.3 菌种活化 | 第23页 |
| 2.2.4 菌落平均直径的测定 | 第23页 |
| 2.2.5 耐硒特性的测定 | 第23-24页 |
| 2.2.6 加硒驯化对香菇菌株的耐硒特性的影响 | 第24页 |
| 2.2.7 硒源灭菌方式对香菇菌株平板生长的影响 | 第24页 |
| 2.2.8 不同加硒浓度对秋栽7 号在固体培养基上生长的影响 | 第24-25页 |
| 2.2.9 液体培养基的选择 | 第25页 |
| 2.2.10 数据统计分析 | 第25页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第25-31页 |
| 2.3.1 菌种活化结果 | 第25-26页 |
| 2.3.2 香菇菌株的耐硒特性研究 | 第26-27页 |
| 2.3.3 加硒驯化对香菇菌株的耐硒特性的影响 | 第27-28页 |
| 2.3.4 硒源灭菌方式对香菇菌株平板生长的影响 | 第28-29页 |
| 2.3.5 不同加硒浓度对秋栽7 号生长的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.6 液体培养基的确定 | 第30-31页 |
| 2.3.7 讨论 | 第31页 |
| 2.4 小结 | 第31-33页 |
| 第3章 香菇硒多糖发酵条件的优化 | 第33-51页 |
| 前言 | 第33页 |
| 3.1 材料 | 第33-34页 |
| 3.1.1 菌种 | 第33页 |
| 3.1.2 试剂 | 第33-34页 |
| 3.1.3 仪器 | 第34页 |
| 3.2 方法 | 第34-38页 |
| 3.2.1 培养基 | 第34-35页 |
| 3.2.2 Na_2SeO_3 溶液的配制 | 第35页 |
| 3.2.3 菌种活化和驯化 | 第35页 |
| 3.2.4 香菇液体种子培养 | 第35页 |
| 3.2.5 香菇发酵及其发酵液的处理 | 第35-36页 |
| 3.2.6香菇硒多糖液体发酵的单因素实验 | 第36-37页 |
| 3.2.7 Box-Behnken试验设计 | 第37页 |
| 3.2.8 香菇多糖得率的测定 | 第37页 |
| 3.2.9 数据统计分析 | 第37-38页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第38-48页 |
| 3.3.1 不同的硒源灭菌方式对香菇硒多糖液体发酵的影响 | 第38-39页 |
| 3.3.2 香菇硒多糖发酵培养基硒浓度的选择 | 第39-40页 |
| 3.3.3 加硒时间对香菇硒多糖液体发酵的影响 | 第40页 |
| 3.3.4 培养基pH对香菇硒多糖发酵的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.5 发酵时间对香菇硒多糖液体发酵的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.6 模型的建立 | 第42-43页 |
| 3.3.7 响应面法优化香菇发酵中生物量的发酵条件 | 第43-45页 |
| 3.3.8 响应面法优化香菇胞内硒多糖的发酵条件 | 第45-46页 |
| 3.3.9 响应面法优化香菇胞外硒多糖的发酵条件 | 第46-48页 |
| 3.3.10 讨论 | 第48页 |
| 3.4 小结 | 第48-51页 |
| 第4章 香菇硒多糖的分离纯化及鉴定 | 第51-67页 |
| 前言 | 第51页 |
| 4.1 材料 | 第51-53页 |
| 4.1.1 菌种 | 第51页 |
| 4.1.2 试剂 | 第51-52页 |
| 4.1.3 仪器 | 第52-53页 |
| 4.2 方法 | 第53-57页 |
| 4.2.1 培养基 | 第53页 |
| 4.2.2 溶液的配置 | 第53页 |
| 4.2.3 菌种活化和驯化 | 第53-54页 |
| 4.2.4 香菇多糖样品的制备 | 第54页 |
| 4.2.5 sevage法除蛋白 | 第54页 |
| 4.2.6 Cellulose DE-52 纤维素柱纯化 | 第54-55页 |
| 4.2.7 紫外光谱测定 | 第55页 |
| 4.2.8 红外光谱检测 | 第55页 |
| 4.2.9 粘度法测定多糖分子量 | 第55-56页 |
| 4.2.10 硒含量的测定 | 第56-57页 |
| 4.2.11 抗氧化活性的测定 | 第57页 |
| 4.2.12 数据统计分析 | 第57页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第57-65页 |
| 4.3.1 香菇多糖样品的制备 | 第57-58页 |
| 4.3.2 香菇硒多糖的Cellulose DE-52 纤维素柱纯化结果 | 第58-59页 |
| 4.3.3 香菇硒多糖的紫外光谱测定 | 第59-60页 |
| 4.3.4 香菇多糖的红外光谱测定 | 第60-61页 |
| 4.3.5 香菇多糖粘度分子量的测定 | 第61页 |
| 4.3.6 硒标准曲线 | 第61-62页 |
| 4.3.7加标回收率实验 | 第62页 |
| 4.3.8 香菇多糖硒含量的测定 | 第62-63页 |
| 4.3.9 香菇多糖DPPH自由基清除能力比较 | 第63-64页 |
| 4.3.10 讨论 | 第64-65页 |
| 4.4 小结 | 第65-67页 |
| 第5章 结论与展望 | 第67-69页 |
| 5.1 结论 | 第67-68页 |
| 5.2 创新点 | 第68页 |
| 5.3 展望 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-77页 |
| 攻读硕士期间已发表的论文 | 第77-79页 |
| 附图 | 第79-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
