| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 0 前言 | 第13-27页 |
| 0.1 氟喹诺酮类药物概论 | 第13-14页 |
| 0.1.1 氟喹诺酮类药物简介 | 第13页 |
| 0.1.2 氟喹诺酮类药物的理化性质 | 第13-14页 |
| 0.2 氟喹诺酮类药物残留危害及限量标准 | 第14-18页 |
| 0.3 氟喹诺酮类药物残留检测方法研究进展 | 第18-20页 |
| 0.3.1 微生物法 | 第18页 |
| 0.3.2 色谱法 | 第18-19页 |
| 0.3.3 毛细管电泳 | 第19页 |
| 0.3.4 免疫检测法 | 第19-20页 |
| 0.4 氟喹诺酮类药物免疫检测前处理方法及基质效应研究概述 | 第20-25页 |
| 0.4.1 氟喹诺酮类药物样品处理方法应用进展 | 第20-22页 |
| 0.4.2 免疫检测基质效应 | 第22页 |
| 0.4.3 免疫检测基质效应的评价 | 第22-23页 |
| 0.4.4 免疫检测基质效应的消除研究 | 第23-25页 |
| 0.5 研究目的和意义 | 第25-26页 |
| 0.6 本论文的技术路线 | 第26-27页 |
| 1 免疫检测样品前处理方法及基质消除研究 | 第27-42页 |
| 1.1 引言 | 第27页 |
| 1.2 实验材料 | 第27-30页 |
| 1.2.1 主要药品和试剂 | 第27-28页 |
| 1.2.2 主要仪器设备 | 第28-29页 |
| 1.2.3 溶液配制 | 第29页 |
| 1.2.4 实验样本材料 | 第29-30页 |
| 1.3 主要方法 | 第30-32页 |
| 1.3.1 蛋白质溶液的聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第30页 |
| 1.3.2 免疫印迹方法检测鱼肉蛋白与氟喹诺酮免疫检测试剂盒中抗体反应 | 第30页 |
| 1.3.3 ELISA操作过程 | 第30-31页 |
| 1.3.4 常用前处理方法中蛋白基质消除及对ELISA影响 | 第31-32页 |
| 1.3.5 有机溶剂甲醇和乙腈对ELISA影响 | 第32页 |
| 1.3.6 热处理对鱼肉蛋白质基质的消除研究 | 第32页 |
| 1.3.7 不同种类及浓度的酸对蛋白基质消除效果及对免疫检测的影响 | 第32页 |
| 1.4 实验结果与分析 | 第32-41页 |
| 1.4.1 热处理对鱼肉蛋白质基质的消除效果 | 第32-34页 |
| 1.4.2 常用前处理方法中蛋白质基质消除及对ELISA影响 | 第34-38页 |
| 1.4.3 有机溶剂甲醇和乙腈对反应的影响 | 第38-39页 |
| 1.4.4 不同种类及浓度的酸对蛋白的去除效果及基质效应消除研究 | 第39-41页 |
| 1.5 本章小结 | 第41-42页 |
| 2 基于磺基水杨酸的氟喹诺酮酶联免疫检测样品前处理方法研究 | 第42-56页 |
| 2.1 引言 | 第42页 |
| 2.2 实验材料 | 第42-44页 |
| 2.2.1 主要药品和试剂 | 第42-43页 |
| 2.2.2 主要仪器设备 | 第43页 |
| 2.2.3 溶液配制 | 第43-44页 |
| 2.2.4 实验样本材料 | 第44页 |
| 2.3 实验方法 | 第44-47页 |
| 2.3.1 氟喹诺酮类标准溶液的制备及标准曲线的绘制 | 第44页 |
| 2.3.2 ELISA操作步骤 | 第44-45页 |
| 2.3.3 样品处理方法 | 第45-46页 |
| 2.3.4 三种鲆鲽鱼类基质效应消除影响的确认 | 第46页 |
| 2.3.5 ELISA检测方法性能指标的评价 | 第46-47页 |
| 2.4 实验结果与分析 | 第47-55页 |
| 2.4.1 蛋白质基质的消除及最佳提取溶剂的确定 | 第47-49页 |
| 2.4.2 样品前处理方法的优化 | 第49-50页 |
| 2.4.3 基质效应影响的确认 | 第50-52页 |
| 2.4.4 加标回收率试验结果 | 第52-53页 |
| 2.4.5 新建样品前处理方法与传统处理方法比较结果 | 第53-55页 |
| 2.5 本章小结 | 第55-56页 |
| 3 水产品的适用性研究及仪器分析法确证 | 第56-70页 |
| 3.1 引言 | 第56页 |
| 3.2 实验材料 | 第56-58页 |
| 3.2.1 主要药品和试剂 | 第56页 |
| 3.2.2 主要仪器设备 | 第56-57页 |
| 3.2.3 溶液配制 | 第57-58页 |
| 3.2.4 实验样本材料 | 第58页 |
| 3.3 实验方法 | 第58-59页 |
| 3.3.1 SDS-PAGE和Western blotting验证磺基水杨酸对不同来源鱼虾基质组分的消除作用 | 第58页 |
| 3.3.2 五种不同来源鱼虾基质效应消除影响的确认 | 第58页 |
| 3.3.3 仪器分析法确证 | 第58-59页 |
| 3.4 实验结果与分析 | 第59-69页 |
| 3.4.1 SDS-PAGE和Western blotting验证五种不同来源鱼虾蛋白基质消除结果 | 第59-61页 |
| 3.4.2 五种鱼虾基质效应的确认 | 第61-63页 |
| 3.4.3 方法准确度 | 第63-64页 |
| 3.4.4 高效液相色谱法检测氟喹诺酮类药物残留 | 第64-69页 |
| 3.5 本章小结 | 第69-70页 |
| 4 论文总结 | 第70-71页 |
| 5 论文的创新性 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 个人简历 | 第78-79页 |
| 在学期间发表学术论文 | 第79页 |
