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解纤维梭菌D-阿洛酮糖3-差向异构酶在枯草芽孢杆菌中的重组表达、应用及固定化研究

摘要第3-5页
Abstract第5-6页
第一章 绪论第9-16页
    1.1 D-阿洛酮糖概述第9-10页
        1.1.1 D-阿洛酮糖的结构与功能第9页
        1.1.2 D-阿洛酮糖的制备工艺第9-10页
    1.2 D-阿洛酮糖3-差向异构酶(DPEase)的概述第10-12页
        1.2.1 DPEase的来源与性质第10-11页
        1.2.2 DPEase的制备第11-12页
    1.3 枯草芽孢杆菌生产重组蛋白的研究进展第12-13页
        1.3.1 枯草芽孢杆菌表达系统的简介第12页
        1.3.2 枯草芽孢杆菌的高密度发酵第12-13页
    1.4 固定化技术及应用第13-14页
        1.4.1 固定化概述第13-14页
        1.4.2 固定化细胞的方法第14页
    1.5 立题依据及意义第14-15页
    1.6 本论文的研究内容第15-16页
第二章 材料与方法第16-23页
    2.1 材料第16-17页
        2.1.1 菌株与质粒第16页
        2.1.2 主要试剂第16页
        2.1.3 主要仪器第16-17页
    2.2 分子生物学操作方法第17-19页
        2.2.1 DPEase目的基因和表达载体的克隆与连接第17-18页
        2.2.2 突变体的构建第18页
        2.2.3 E.coliJM109感受态的热激转化第18页
        2.2.4 质粒的提取与限制性酶切第18页
        2.2.5 B.subtilis感受态细胞的制备和电转化方法第18-19页
    2.3 发酵方法第19-20页
        2.3.1 培养基第19页
        2.3.2 重组B.subtilis的摇瓶发酵第19页
        2.3.3 重组B.subtilis的3-L罐发酵第19-20页
    2.4 分析方法第20-21页
        2.4.1 菌体生物量的测定第20页
        2.4.2 细胞干重的测定第20页
        2.4.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)分析第20页
        2.4.4 DPEase酶活测定第20页
        2.4.5 重组DPEase的酶学性质研究第20-21页
    2.5 D-阿洛酮糖的酶转化工艺第21页
        2.5.1 D-阿洛酮糖的制备第21页
        2.5.2 D-阿洛酮糖的检测方法第21页
    2.6 固定化细胞的方法第21页
    2.7 固定化细胞的性质分析第21-23页
        2.7.1 固定化细胞的酶活回收率分析第21页
        2.7.2 固定化细胞的酶学性质分析第21-23页
第三章 结果与讨论第23-46页
    3.1 DPEase在B.subtilis中的重组表达及酶学性质研究第23-28页
        3.1.1 重组DPEase基因工程菌的构建第23-24页
        3.1.2 重组DPEase在B.subtilis中的表达第24-25页
        3.1.3 重组DPEase的酶学性质研究第25-28页
    3.2 产DPEase的重组菌发酵条件优化第28-37页
        3.2.1 重组菌B.subtilis/pHY300PLK-PamyQ-dpe的摇瓶发酵优化第28-32页
        3.2.2 重组菌B.subtilis/pHY300PLK-PamyQ-dpe的3-L罐发酵优化第32-35页
        3.2.3 补料C/N影响重组菌发酵产酶原因的初步研究第35-37页
    3.3 重组DPEase及全细胞在制备D-阿洛酮糖中的应用第37-41页
        3.3.1 重组DPEase制备D-阿洛酮糖条件优化第37-39页
        3.3.2 重组B.subtilis细胞制备D-阿洛酮糖条件优化第39-41页
    3.4 重组菌的细胞固定化及固定化细胞性质的研究第41-46页
        3.4.1 固定化细胞条件的优化第41-43页
        3.4.2 固定化细胞的酶学性质研究第43-44页
        3.4.3 固定化细胞的操作稳定性第44-46页
主要结论与展望第46-48页
    主要结论第46页
    展望第46-48页
致谢第48-49页
参考文献第49-54页
附录:作者在攻读硕士学位期间发表的论文第54页

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