摘要 | 第4-5页 |
ABSTRACT | 第5页 |
1 前言 | 第8-18页 |
1.1 淀粉概述 | 第8-11页 |
1.1.1 普通淀粉概述 | 第8页 |
1.1.2 抗性淀粉概述 | 第8-9页 |
1.1.3 改性淀粉概述 | 第9-10页 |
1.1.4 预糊化淀粉概述 | 第10-11页 |
1.1.5 柠檬酸酯化淀粉概述 | 第11页 |
1.2 抗性淀粉与肠道菌群 | 第11-13页 |
1.2.1 肠道菌群的组成 | 第11-12页 |
1.2.2 肠道微生物与饮食 | 第12页 |
1.2.3 肠道菌群与人体健康 | 第12-13页 |
1.2.4 肠道菌群与肥胖 | 第13页 |
1.2.5 肠道菌群分析方法概述 | 第13页 |
1.3 脂质组学概述 | 第13-15页 |
1.3.1 脂质组学概念 | 第13-14页 |
1.3.2 脂质化合物生理功能 | 第14-15页 |
1.3.3 脂质组学研究现状 | 第15页 |
1.4 短链脂肪酸概述 | 第15-16页 |
1.5 本文的研究内容及意义 | 第16-18页 |
1.5.1 主要研究内容 | 第16-17页 |
1.5.2 研究意义 | 第17-18页 |
2 材料与方法 | 第18-24页 |
2.1 材料与仪器 | 第18-19页 |
2.1.1 动物饲料 | 第18页 |
2.1.2 实验动物 | 第18页 |
2.1.3 主要试剂 | 第18-19页 |
2.1.4 主要仪器 | 第19页 |
2.2 实验方法 | 第19-24页 |
2.2.1 淀粉的制备 | 第19-20页 |
2.2.2 实验动物的分组及干预 | 第20页 |
2.2.3 大鼠状态观察 | 第20页 |
2.2.4 组织取材及粪便样品的收集 | 第20页 |
2.2.5 结肠切片制作过程 | 第20-21页 |
2.2.6 氧化应激水平指标的测定 | 第21-22页 |
2.2.7 高通量测序及数据分析 | 第22-23页 |
2.2.8 脂质组学分析方法 | 第23页 |
2.2.9 短链脂肪酸分析方法 | 第23页 |
2.2.10 数据处理 | 第23-24页 |
3 结果与讨论 | 第24-42页 |
3.1 实验大鼠的状态观察 | 第24页 |
3.2 结肠组织病理学观察 | 第24-25页 |
3.3 不同干预方式对大鼠血清氧化应激水平的影响 | 第25-26页 |
3.4 改性淀粉对大鼠肠道菌群多样性的影响 | 第26-32页 |
3.4.1 OTU聚类及物种注释概况 | 第26-29页 |
3.4.2 基于OTU的Venn图 | 第29-30页 |
3.4.3 样品多样性分析(Alpha Diversity) | 第30-31页 |
3.4.4 多样品比较分析(Beta Diversity) | 第31-32页 |
3.5 改性淀粉对大鼠肠道菌群种类和结构的影响 | 第32-36页 |
3.5.1 基于门(Phylum)分类水平分析 | 第32-33页 |
3.5.2 基于纲(Class)分类水平分析 | 第33-34页 |
3.5.3 基于属(Genus)分类水平分析 | 第34-36页 |
3.6 不同功能微生物组间分布差异分析 | 第36-37页 |
3.6.1 产SCFA微生物组间分布差异分析 | 第36页 |
3.6.2 致病菌组间分布差异分析 | 第36-37页 |
3.7 血清中短链脂肪酸结果分析 | 第37-38页 |
3.8 粪便中脂质成分结果分析 | 第38-42页 |
3.8.1 不同处理后的改性淀粉对大鼠粪便中游离脂肪酸(FA)组成的影响 | 第38-40页 |
3.8.2 不同处理后的改性淀粉对大鼠粪便中脂质含量的影响 | 第40-42页 |
4 结论 | 第42-44页 |
4.1 全文总结 | 第42页 |
4.2 论文创新点 | 第42-43页 |
4.3 论文的不足之处 | 第43-44页 |
5 展望 | 第44-45页 |
6 参考文献 | 第45-52页 |
7 攻读硕士学位期间论文发表情况 | 第52-53页 |
8 致谢 | 第53页 |