| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 引言 | 第11页 |
| 1.2 硒与人体的健康 | 第11-13页 |
| 1.2.1 缺硒可引发的疾病 | 第11-12页 |
| 1.2.2 硒产品的存在形式 | 第12-13页 |
| 1.3 硒多糖的研究进展 | 第13-16页 |
| 1.3.1 硒多糖的来源 | 第13-14页 |
| 1.3.2 硒多糖的结构 | 第14-15页 |
| 1.3.3 硒多糖的活性 | 第15-16页 |
| 1.4 富硒茶多糖的研究进展 | 第16-18页 |
| 1.5 富硒食品的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.6 本文的研究目的及意义、内容 | 第19-22页 |
| 1.6.1 本文的研究目的及意义 | 第19页 |
| 1.6.2 本文的主要研究内容 | 第19-21页 |
| 1.6.3 研究路线图 | 第21-22页 |
| 第二章 茶多糖提取工艺的研究 | 第22-39页 |
| 2.1 前言 | 第22页 |
| 2.2 材料与设备 | 第22-23页 |
| 2.2.1 实验原料 | 第22页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第22-23页 |
| 2.2.3 主要仪器设备 | 第23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-27页 |
| 2.3.1 原料预处理 | 第23页 |
| 2.3.2 不同沉淀剂对茶多糖提取的影响 | 第23页 |
| 2.3.3 不同乙醇浓度醇沉对茶多糖提取的影响 | 第23-24页 |
| 2.3.4 不同提取工艺对茶多糖提取的影响 | 第24页 |
| 2.3.5 茶多糖组分的测定 | 第24页 |
| 2.3.6 紫外光谱扫描 | 第24-25页 |
| 2.3.7 红外光谱扫描 | 第25页 |
| 2.3.8 离子色谱法测定单糖组成 | 第25页 |
| 2.3.9 扫描电镜观察 | 第25页 |
| 2.3.10 DPPH自由基清除活性 | 第25页 |
| 2.3.11 ABTS自由基清除实验 | 第25-26页 |
| 2.3.12 超氧离子自由基清除实验 | 第26页 |
| 2.3.13 α-葡萄糖苷酶抑制研究 | 第26-27页 |
| 2.3.14 统计处理 | 第27页 |
| 2.4 结果和讨论 | 第27-37页 |
| 2.4.1 不同沉淀剂选择对茶多糖的影响研究 | 第27-29页 |
| 2.4.2 不同乙醇浓度醇沉对茶多糖的影响研究 | 第29-32页 |
| 2.4.3 不同提取方法对茶多糖的影响研究 | 第32-37页 |
| 2.5 本章小结 | 第37-39页 |
| 第三章 富硒方式对茶多糖中硒-多糖结合形态及活性的影响 | 第39-52页 |
| 3.1 引言 | 第39页 |
| 3.2 材料和设备 | 第39-40页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第39页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第39-40页 |
| 3.2.3 主要实验仪器 | 第40页 |
| 3.3 实验方法 | 第40-43页 |
| 3.3.1 普通多糖、天然富硒茶多糖及人工富硒茶多糖制备 | 第40页 |
| 3.3.2 化学合成富硒茶多糖的制备 | 第40-41页 |
| 3.3.3 硒多糖各成分含量测定 | 第41页 |
| 3.3.4 硒多糖中硒含量测定 | 第41-42页 |
| 3.3.5 硒多糖紫外光谱定性分析 | 第42页 |
| 3.3.6 硒多糖红外光谱定性分析 | 第42页 |
| 3.3.7 硒多糖的拉曼光谱定性分析 | 第42页 |
| 3.3.8 硒多糖的DPPH清除自由基实验 | 第42页 |
| 3.3.9 硒多糖的α-葡萄糖苷酶活性抑制实验 | 第42-43页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第43-50页 |
| 3.4.1 多糖成分及硒含量测定 | 第43-44页 |
| 3.4.2 紫外光谱分析 | 第44-45页 |
| 3.4.3 红外光谱分析 | 第45-46页 |
| 3.4.4 拉曼光谱分析 | 第46-47页 |
| 3.4.5 硒多糖的DPPH清除自由基活性测定 | 第47-48页 |
| 3.4.6 硒多糖的α-葡萄糖苷酶抑制活性测定 | 第48-50页 |
| 3.5 本章小结 | 第50-52页 |
| 第四章 富硒方式对茶多糖结构的影响 | 第52-70页 |
| 4.1 前言 | 第52页 |
| 4.2 材料与设备 | 第52-53页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第52页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第52-53页 |
| 4.2.3 实验仪器 | 第53页 |
| 4.3 实验方法 | 第53-54页 |
| 4.3.1 单糖组成分析 | 第53页 |
| 4.3.2 刚果红及碘-碘化钾实验 | 第53页 |
| 4.3.3 XRD衍射分析 | 第53-54页 |
| 4.3.4 DSC分析 | 第54页 |
| 4.3.5 FESEM观察 | 第54页 |
| 4.3.6 核磁光谱分析 | 第54页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第54-68页 |
| 4.4.1 单糖组成分析 | 第54-56页 |
| 4.4.2 刚果红实验分析 | 第56-58页 |
| 4.4.3 碘-碘化钾实验 | 第58-59页 |
| 4.4.4 XRD衍射分析 | 第59-60页 |
| 4.4.5 DSC分析 | 第60-61页 |
| 4.4.6 扫描电镜结果 | 第61-62页 |
| 4.4.7 NMR结果 | 第62-68页 |
| 4.5 本章小结 | 第68-70页 |
| 结论与展望 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-79页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |