致谢 | 第4-5页 |
摘要 | 第5-6页 |
ABSTRACT | 第6页 |
缩略语(Abbreviations) | 第8-12页 |
1 绪论 | 第12-18页 |
1.1 引言 | 第12-13页 |
1.2 簕菜成分与活性研究 | 第13-15页 |
1.2.1 簕菜的成分研究 | 第13页 |
1.2.2 本课题组前期研究 | 第13-15页 |
1.3 簕菜产品的国内外开发情况 | 第15页 |
1.4 课题研究目的和意义 | 第15-16页 |
1.5 课题的研究内容 | 第16-18页 |
2 簕菜三萜提取物对LPS诱导的巨噬细胞炎症的抑制作用 | 第18-28页 |
2.1 引言 | 第18-19页 |
2.2 实验材料与仪器 | 第19-20页 |
2.2.1 实验材料 | 第19页 |
2.2.2 实验仪器 | 第19-20页 |
2.3 实验方法 | 第20-24页 |
2.3.1 细胞培养 | 第20页 |
2.3.2 LPS诱导巨噬细胞炎症模型 | 第20-21页 |
2.3.3 细胞免疫印迹检测 | 第21-24页 |
2.3.3.1 细胞全蛋白提取 | 第21页 |
2.3.3.2 细胞总量测定(BCA 法) | 第21-22页 |
2.3.3.3 SDS-PAGE电泳 | 第22-23页 |
2.3.3.4 封闭、抗体孵育及曝光 | 第23-24页 |
2.4 结果与讨论 | 第24-26页 |
2.4.1 IA和AA对LPS诱导RAW264.7细胞中NF-κB核转录因子表达的影响 | 第24-25页 |
2.4.2 对LPS诱导RAW264.7细胞中COX-2和iNOS炎症因子表达的影响 | 第25-26页 |
2.5 本章小结 | 第26-28页 |
3 簕菜三萜提取物对TPA诱导小鼠耳肿胀炎症的抑制作用 | 第28-42页 |
3.1 引言 | 第28页 |
3.2 实验材料与仪器 | 第28-30页 |
3.2.1 实验材料 | 第28-30页 |
3.2.2 主要仪器 | 第30页 |
3.3 实验方法 | 第30-35页 |
3.3.1 动物实验 | 第30-31页 |
3.3.2 小鼠耳片H&E染色 | 第31页 |
3.3.3 小鼠耳片免疫印迹检测 | 第31-34页 |
3.3.3.1 耳片组织蛋白提取及测定(BAC 法) | 第31-32页 |
3.3.3.2 SDS-PAGE电泳 | 第32-33页 |
3.3.3.3 封闭、抗体孵育及曝光 | 第33-34页 |
3.3.4 小鼠耳片免疫组化检测(SABC 法) | 第34-35页 |
3.4 结果与讨论 | 第35-40页 |
3.4.1 小鼠耳肿胀急性实验结果分析 | 第35-36页 |
3.4.2 IA和AA对TPA诱导小鼠耳肿胀组织病理学变化的影响 | 第36-37页 |
3.4.3 IA和AA对TPA诱导小鼠耳肿胀组织中p38-MAPK和NF-κB表达的影响 | 第37-38页 |
3.4.4 IA和AA对TPA诱导小鼠耳肿胀组织中iNOS和COX2表达的影响 | 第38-39页 |
3.4.5 IA和AA对TPA诱导小鼠耳肿胀组织中TNF-α和IL-1β表达的影响 | 第39-40页 |
3.5 本章小结 | 第40-42页 |
4 簕菜相关产品开发 | 第42-58页 |
4.1 引言 | 第42-43页 |
4.2 簕菜硬糖的制备 | 第43-51页 |
4.2.1 实验材料与仪器 | 第43页 |
4.2.2 加工方法 | 第43-44页 |
4.2.3 簕菜硬糖的最优配比研究 | 第44-45页 |
4.2.4 簕菜硬糖制作工艺研究 | 第45页 |
4.2.5 硬糖口感测评 | 第45-46页 |
4.2.6 硬糖抗氧化活性研究 | 第46页 |
4.2.7 结果与总结 | 第46-51页 |
4.3 簕菜颗粒剂的制备 | 第51-55页 |
4.3.1 实验材料和仪器 | 第51页 |
4.3.2 加工方法 | 第51-53页 |
4.3.3 口感及外观分析 | 第53页 |
4.3.4 簕菜颗粒剂抗氧化测试 | 第53-54页 |
4.3.5 结果与总结 | 第54-55页 |
4.4 簕菜青汁粉的制备 | 第55-57页 |
4.4.1 实验材料和仪器 | 第56页 |
4.4.2 加工方法 | 第56-57页 |
4.4.3 结果与总结 | 第57页 |
4.5 本章小结 | 第57-58页 |
总结 | 第58-59页 |
参考文献 | 第59-63页 |
作者简介 | 第63-64页 |