| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 绪论 | 第8-19页 |
| 1.1 海参概述 | 第8-9页 |
| 1.1.1 海参产业的发展 | 第8-9页 |
| 1.2 水产品自溶研现状 | 第9-10页 |
| 1.2.1 水产品自溶 | 第9页 |
| 1.2.2 海参的自溶现象 | 第9-10页 |
| 1.3 流式细胞术的研究进展 | 第10-12页 |
| 1.3.1 流式细胞仪简介 | 第10页 |
| 1.3.2 流式细胞术及其应用 | 第10-11页 |
| 1.3.3 流式细胞仪测定细胞凋亡的方法 | 第11-12页 |
| 1.4 激光共聚焦技术的研究进展 | 第12-13页 |
| 1.4.1 激光共聚焦扫描显微镜的原理 | 第13页 |
| 1.4.2 激光共聚焦扫描显微镜检测钙离子浓度的应用 | 第13页 |
| 1.5 海参的体液免疫机制 | 第13-16页 |
| 1.5.1 体腔液细胞功能 | 第14-15页 |
| 1.5.2 海参体腔细胞的形态学研究进展 | 第15-16页 |
| 1.5.3 海参体腔细胞的应激表达 | 第16页 |
| 1.6 细胞凋亡 | 第16-18页 |
| 1.6.1 细胞凋亡与钙离子信号 | 第17页 |
| 1.6.2 细胞凋亡与内质网损伤 | 第17-18页 |
| 1.7 本课题研究的内容及意义 | 第18-19页 |
| 第二章 材料与方法 | 第19-29页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-23页 |
| 2.1.1 材料 | 第19页 |
| 2.1.2 主要实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.3 主要实验试剂 | 第20-22页 |
| 2.1.4 试剂配置 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-29页 |
| 2.2.1 海参体腔细胞的提取 | 第23页 |
| 2.2.2 海参体腔细胞光镜观察 | 第23页 |
| 2.2.3 海参体腔细胞透射电镜观察 | 第23页 |
| 2.2.4 流式细胞分群实验 | 第23页 |
| 2.2.5 海参体腔细胞死亡率与温度的关系 | 第23-24页 |
| 2.2.6 海参自溶紫外诱导模型 | 第24-25页 |
| 2.2.7 海参自溶过程中细胞凋亡率的变化 | 第25页 |
| 2.2.8 海参自溶过程中内质网形态的变化 | 第25-26页 |
| 2.2.9 海参自溶过程中细胞中钙离子浓度变化 | 第26页 |
| 2.2.10 海参自溶过程中Ca~(2+)-ATP酶活力的变化 | 第26-29页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第29-55页 |
| 3.1 海参体腔细胞免疫 | 第29-42页 |
| 3.1.1 海参体腔细胞的形态 | 第29-33页 |
| 3.1.2 温度对海参体腔细胞死亡率的影响 | 第33-35页 |
| 3.1.3 紫外诱导海参自溶 | 第35-36页 |
| 3.1.4 海参自溶过程中体腔细胞的凋亡 | 第36-42页 |
| 3.2 海参体腔细胞凋亡过程中内质网形态的变化 | 第42-44页 |
| 3.3 海参体腔细胞凋亡过程中钙离子信号 | 第44-52页 |
| 3.3.1 钙离子探针附在条件的确定 | 第44-46页 |
| 3.3.2 激光共聚焦扫描显微镜实时监测细胞内钙离子浓度变化 | 第46-49页 |
| 3.3.3 流式细胞仪检测细胞内钙离子浓度 | 第49-52页 |
| 3.4 与钙离子信号相关的酶活力变化 | 第52-55页 |
| 第四章 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 附录 | 第64页 |
