| 摘要 | 第10-11页 |
| ABSTRACT | 第11页 |
| 缩略符号说明 | 第12-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-19页 |
| 1.1 蛹虫草概述 | 第13-14页 |
| 1.2 食用豆类概述 | 第14-17页 |
| 1.2.1 黑豆、黄豆、鹰嘴豆和绿豆的主要成分及营养价值 | 第14-15页 |
| 1.2.2 酚类物质的相关研究 | 第15-17页 |
| 1.2.3 豆类产品对血管紧张素转换酶抑制作用的研究 | 第17页 |
| 1.3 斑马鱼实验动物模型的优势 | 第17-18页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第18-19页 |
| 第二章 蛹虫草与豆类固态发酵的产物成分研究 | 第19-58页 |
| 2.1 引言 | 第19页 |
| 2.2 材料与方法 | 第19-26页 |
| 2.2.1 主要材料与仪器 | 第19-20页 |
| 2.2.2 菌种 | 第20页 |
| 2.2.3 固态发酵 | 第20-21页 |
| 2.2.4 总糖含量测定 | 第21页 |
| 2.2.5 菌丝生物量的测定 | 第21-22页 |
| 2.2.6 虫草素含量的测定 | 第22-23页 |
| 2.2.7 醇提物总酚和总黄酮的测定 | 第23-24页 |
| 2.2.8 乙酸乙酯二次萃取组分的总酚和总黄酮测定 | 第24-25页 |
| 2.2.9 高效液相色谱法测定单一酚类物质的含量 | 第25-26页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第26-56页 |
| 2.3.1 总糖含量 | 第26-27页 |
| 2.3.2 蛹虫草菌丝生物量 | 第27-29页 |
| 2.3.3 虫草素的含量 | 第29-33页 |
| 2.3.4 醇提物总酚和总黄酮的测定 | 第33-38页 |
| 2.3.5 乙酸乙酯二次萃取组分的总酚和总黄酮测定 | 第38-43页 |
| 2.3.6 高效液相色谱法测定单一酚类物质的含量 | 第43-56页 |
| 2.4 本章小结 | 第56-58页 |
| 第三章 蛹虫草-豆类固态发酵产物的抗氧化活性研究 | 第58-69页 |
| 3.1 引言 | 第58页 |
| 3.2 材料与方法 | 第58-60页 |
| 3.2.1 主要材料与仪器 | 第58-59页 |
| 3.2.2 抗氧化能力的测定 | 第59-60页 |
| 3.2.3 血管紧张素转化酶(ACE)抑制活性的测定 | 第60页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第60-68页 |
| 3.3.1 DPPH自由基清除力 | 第60-62页 |
| 3.3.2 ABTS自由基清除力 | 第62-64页 |
| 3.3.3 铁离子还原抗氧化力 | 第64-66页 |
| 3.3.4 血管紧张素转换酶抑制活性 | 第66-68页 |
| 3.4 本章小结 | 第68-69页 |
| 第四章 蛹虫草-黑豆固态发酵的生理活性研究 | 第69-76页 |
| 4.1 引言 | 第69页 |
| 4.2 材料与方法 | 第69-71页 |
| 4.2.1 主要材料和仪器 | 第69-70页 |
| 4.2.2 斑马鱼的饲养 | 第70页 |
| 4.2.3 发酵黑豆活性物质提取 | 第70页 |
| 4.2.4 斑马鱼幼鱼活性试验 | 第70页 |
| 4.2.5 斑马鱼幼鱼的表型观察 | 第70页 |
| 4.2.6 斑马鱼体内超氧化物歧化酶(SOD)活性 | 第70-71页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第71-74页 |
| 4.3.1 斑马鱼幼鱼的表型观察 | 第71-74页 |
| 4.3.2 斑马鱼体内超氧化物歧化酶(SOD)活性 | 第74页 |
| 4.4 本章小结 | 第74-76页 |
| 第五章 蛹虫草-黑豆固态发酵的培养基优化 | 第76-86页 |
| 5.1 引言 | 第76页 |
| 5.2 材料与方法 | 第76-77页 |
| 5.2.1 主要材料和仪器 | 第76页 |
| 5.2.2 培养基的优化 | 第76-77页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第77-85页 |
| 5.3.1 单因素实验的虫草素含量 | 第77-80页 |
| 5.3.2 单因素实验的总酚含量 | 第80-82页 |
| 5.3.3 单因素实验的总黄酮含量 | 第82-85页 |
| 5.4 本章小结 | 第85-86页 |
| 第六章 工作总结与展望 | 第86-88页 |
| 6.1 工作总结 | 第86-87页 |
| 6.2 展望 | 第87-88页 |
| 在读期间发表论文 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-95页 |
| 附录 | 第95-107页 |
| 致谢 | 第107-109页 |
| 附件 | 第109页 |
