| 摘要 | 第2-5页 |
| ABSTRACT | 第5-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-29页 |
| 1.1 茶多糖的提取 | 第12-14页 |
| 1.1.1 物理处理提取法 | 第12-13页 |
| 1.1.2 化学处理提取法 | 第13页 |
| 1.1.3 生物处理提取法 | 第13页 |
| 1.1.4 综合法提取 | 第13-14页 |
| 1.2 茶多糖的分离纯化 | 第14-16页 |
| 1.2.1 脱色 | 第14页 |
| 1.2.2 脱蛋白 | 第14-15页 |
| 1.2.3 沉淀分级法分离 | 第15页 |
| 1.2.4 膜分离 | 第15-16页 |
| 1.2.5 柱层析纯化 | 第16页 |
| 1.3 茶多糖的基本理化特性 | 第16-18页 |
| 1.4 茶多糖的主要生物学活性 | 第18-20页 |
| 1.4.1 降血糖 | 第18-19页 |
| 1.4.2 免疫调节功能 | 第19页 |
| 1.4.3 降血脂 | 第19页 |
| 1.4.4 抗氧化 | 第19-20页 |
| 1.5 本研究的目的、意义和主要研究内容 | 第20-23页 |
| 1.5.1 研究的目的、意义 | 第20-22页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第22-23页 |
| 参考文献 | 第23-29页 |
| 第二章 复合酶法提制的绿茶多糖理化特性及细胞活性 | 第29-59页 |
| 2.1 前言 | 第29-30页 |
| 2.2 实验方法 | 第30-37页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第30-31页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第31-32页 |
| 2.2.3 茶多糖的复合酶法纯化制备 | 第32页 |
| 2.2.4 化学成分分析 | 第32-34页 |
| 2.2.5 紫外可见光吸收及色差分析 | 第34页 |
| 2.2.6 酸碱溶液环境下的Zeta电位及pH稳定性 | 第34页 |
| 2.2.7 CTPC-E和TPC-E的分子量及其分布 | 第34-35页 |
| 2.2.8 CTPC-E和TPC-E的吸湿特性 | 第35页 |
| 2.2.9 CTPC-E和TPC-E的圆二色光谱与红外光谱 | 第35页 |
| 2.2.10 热稳定性 | 第35-36页 |
| 2.2.11 CTPC-E和TPC-E对刀豆素Con A和脂多糖LPS诱导淋巴细胞转化的调节作用 | 第36-37页 |
| 2.2.12 CTPC-E和TPC-E对HepG2细胞增殖的影响 | 第37页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第37-56页 |
| 2.3.1 酶提茶多糖的纯化制备 | 第37-38页 |
| 2.3.2 化学成分 | 第38-41页 |
| 2.3.3 CTPC-E和TPC-E的紫外-可见光扫描光谱解析 | 第41-43页 |
| 2.3.4 酸碱溶液环境下的Zeta电位及pH稳定性 | 第43-44页 |
| 2.3.5 CTPC-E和TPC-E的分子量及其分布 | 第44-46页 |
| 2.3.6 圆二色(Circular dichroism,CD)光谱与红外光谱分析 | 第46-48页 |
| 2.3.7 TPC-E的热稳定性 | 第48-53页 |
| 2.3.8 CTPC-E和TPC-E吸湿性 | 第53-55页 |
| 2.3.9 CTPC-E和TPC-E对刀豆素Con A和脂多糖LPS诱导淋巴细胞转化的调节作用 | 第55页 |
| 2.3.10 CTPC-E和TPC-E对HepG2细胞增殖的影响 | 第55-56页 |
| 2.4 本章小结 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-59页 |
| 第三章 水提茶多糖和碱提茶多糖的理化特性 | 第59-79页 |
| 3.1 前言 | 第59-60页 |
| 3.2 实验方法 | 第60-65页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第60-61页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第61页 |
| 3.2.3 TPC-W和TPC-A的制备 | 第61-62页 |
| 3.2.4 化学成分分析 | 第62-63页 |
| 3.2.5 紫外可见光吸收及色差分析 | 第63-64页 |
| 3.2.6 酸碱溶液环境下的Zeta电位及pH稳定性 | 第64页 |
| 3.2.7 TPC-W和TPC-A的分子量及其分布 | 第64页 |
| 3.2.8 TPC-W和TPC-A的圆二色与红外光谱分析 | 第64页 |
| 3.2.9 TPC-W和TPC-A的吸湿特性 | 第64-65页 |
| 3.2.10 TPC-W和TPC-A对HepG2细胞增殖的影响 | 第65页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第65-77页 |
| 3.3.1 化学成分 | 第65-68页 |
| 3.3.2 TPC-W和TPC-A的紫外-可见光扫描光谱解析 | 第68-70页 |
| 3.3.3 酸碱溶液环境下的Zeta电位及pH稳定性 | 第70-72页 |
| 3.3.4 TPC-W和TPC-A的分子量及其分布 | 第72页 |
| 3.3.5 TPC-W和TPC-A的圆二色光谱与红外光谱 | 第72-74页 |
| 3.3.6 TPC-W和TPC-A的吸湿特性 | 第74-76页 |
| 3.3.7 TPC-W和TPC-A对HepG2细胞增殖的影响 | 第76-77页 |
| 3.4 本章小结 | 第77页 |
| 参考文献 | 第77-79页 |
| 第四章 茶鲜叶多糖的理化特性及改善糖耐量作用 | 第79-98页 |
| 4.1 前言 | 第79-80页 |
| 4.2 实验方法 | 第80-87页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第80-81页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第81页 |
| 4.2.3 茶树鲜叶多糖(TPC-L)制备 | 第81-82页 |
| 4.2.4 化学成分 | 第82-84页 |
| 4.2.5 紫外可见光吸收及色差分析 | 第84页 |
| 4.2.6 酸碱溶液环境下的Zeta电位及pH稳定性 | 第84页 |
| 4.2.7 TPC-L的分子量及其分布 | 第84页 |
| 4.2.8 TPC-L的吸湿特性 | 第84页 |
| 4.2.9 TPC-L的圆二色与红外光谱分析 | 第84-85页 |
| 4.2.10 TPC-L对HepG2细胞增殖的影响 | 第85页 |
| 4.2.11 TPC-L对正常小鼠改善糖耐量的作用 | 第85-87页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第87-96页 |
| 4.3.1 TPC-L的化学成分 | 第87-89页 |
| 4.3.2 TPC-L的紫外-可见光扫描光谱解析 | 第89-90页 |
| 4.3.3 酸碱溶液环境下的Zeta电位及pH稳定性 | 第90页 |
| 4.3.4 TPC-L的分子量及其分布 | 第90-91页 |
| 4.3.5 TPC-L的吸湿特性 | 第91页 |
| 4.3.6 TPC-L的红外光谱与圆二色光谱特性 | 第91-93页 |
| 4.3.7 TPC-L对HepG2细胞增殖的抑制作用 | 第93页 |
| 4.3.8 TPC-L对正常小鼠糖耐量改善作用 | 第93-96页 |
| 4.4 本章小结 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-98页 |
| 第五章 茶多糖对Ⅰ型糖尿病预防作用的实验研究 | 第98-111页 |
| 5.1 前言 | 第98页 |
| 5.2 实验方法 | 第98-101页 |
| 5.2.1 主要材料与实验条件 | 第98-99页 |
| 5.2.3 主要试剂与仪器 | 第99页 |
| 5.2.4 分组与给药处理 | 第99-100页 |
| 5.2.5 试验方法 | 第100页 |
| 5.2.6 观察指标 | 第100-101页 |
| 5.2.7 数据处理 | 第101页 |
| 5.3 结果与分析 | 第101-108页 |
| 5.3.1 TPC-W和TPC-A对NOD小鼠体重的影响 | 第101-102页 |
| 5.3.2 TPC-W和TPC-A对NOD小鼠血糖的影响 | 第102-104页 |
| 5.3.3 TPC-W和TPC-A对NOD小鼠发病的影响 | 第104-106页 |
| 5.3.4 TPC-W和TPC-A对NOD小鼠血清中谷氨酸脱羧酶(GAD)抗体的影响 | 第106-107页 |
| 5.3.5 TPC-W和TPC-A对NOD小鼠脏器指数的影响 | 第107-108页 |
| 5.4 结论 | 第108-109页 |
| 参考文献 | 第109-111页 |
| 第六章 总结、创新点及研究展望 | 第111-119页 |
| 6.1 研究总结 | 第111-117页 |
| 6.1.1 化学组成 | 第111-113页 |
| 6.1.2 电荷特性 | 第113-114页 |
| 6.1.3 光学特性 | 第114-117页 |
| 6.1.4 生物学活性 | 第117页 |
| 6.2 主要创新点及特色 | 第117-118页 |
| 6.3 研究展望 | 第118-119页 |
| 博士在读期间发表的本研究相关论著及获奖成果 | 第119-120页 |
| 致谢 | 第120-121页 |
