| 摘要 | 第1-12页 |
| Abstract | 第12-15页 |
| 英文缩略语表 | 第15-16页 |
| 第一章 前言 | 第16-28页 |
| 1 海洋胶原蛋白肽的概况和生物活性 | 第16-21页 |
| ·海洋胶原蛋白肽的研究现状 | 第16-17页 |
| ·胶原蛋白的结构特征 | 第17-18页 |
| ·海洋胶原蛋白肽的制备方法 | 第18页 |
| ·海洋胶原蛋白肽的生物活性 | 第18-21页 |
| ·抗氧化活性 | 第18-19页 |
| ·降血压、抗ACE活性 | 第19-20页 |
| ·抗菌活性 | 第20页 |
| ·其它活性 | 第20-21页 |
| 2 皮肤伤口愈合的生物机制及试验模型 | 第21-25页 |
| ·皮肤伤口愈合的生物机制 | 第21-22页 |
| ·皮肤伤口愈合试验模型 | 第22-25页 |
| ·皮肤伤口体外模型 | 第23页 |
| ·皮肤伤口体内模型 | 第23-25页 |
| 3 胶原及其衍生物促进伤口愈合的研究进展 | 第25-26页 |
| 4 本课题立题背景和意义、主要研究内容及试验方案 | 第26-28页 |
| ·立题背景和意义 | 第26页 |
| ·主要研究内容 | 第26-27页 |
| ·试验方案 | 第27-28页 |
| 第二章 海鲈鱼胶原蛋白肽的酶法制备工艺优化 | 第28-43页 |
| 1 材料与方法 | 第28-32页 |
| ·试验材料与设备 | 第28-29页 |
| ·试验材料 | 第28页 |
| ·主要仪器设备 | 第28-29页 |
| ·试验方法 | 第29-31页 |
| ·鱼加工副产物基本组成成分测定 | 第29-30页 |
| ·海鲈鱼胶原蛋白肽制备工艺 | 第30-31页 |
| ·工艺流程 | 第30页 |
| ·海鲈鱼加工副产物胶原蛋白的制备 | 第30页 |
| ·碱性蛋白酶水解条件对胶原蛋白肽提取率的影响试验 | 第30-31页 |
| ·胶原蛋白肽的酶法制备工艺优化试验 | 第31页 |
| ·海鲈鱼胶原蛋白肽分子量分布测定 | 第31页 |
| ·统计方法 | 第31-32页 |
| 2 结果与分析 | 第32-42页 |
| ·碱性蛋白酶水解条件对胶原蛋白肽提取率的影响 | 第32-34页 |
| ·温度 | 第32页 |
| ·pH值 | 第32-33页 |
| ·时间 | 第33-34页 |
| ·酶与底物浓度比E/S | 第34页 |
| ·海鲈鱼胶原蛋白肽的酶法制备工艺优化 | 第34-40页 |
| ·不同条件的胶原蛋白肽提取率及其响应面方差分析 | 第34-36页 |
| ·胶原蛋白肽的酶解条件的拟合模型建立与验证 | 第36-37页 |
| ·胶原蛋白酶解条件的组合分析 | 第37-40页 |
| ·海鲈鱼胶原蛋白肽的分子量分布 | 第40-42页 |
| 3 讨论 | 第42-43页 |
| ·不同的酶法制备工艺对胶原蛋白肽提取率的影响 | 第42页 |
| ·不同的酶法制备工艺对胶原蛋白肽分子量分布的影响 | 第42-43页 |
| 第三章 海鲈鱼胶原蛋白肽对小鼠皮肤伤口的愈合作用研究 | 第43-61页 |
| 1 材料与方法 | 第43-46页 |
| ·试验材料与设备 | 第43-44页 |
| ·试验材料 | 第43页 |
| ·主要仪器设备 | 第43页 |
| ·试验动物 | 第43-44页 |
| ·海鲈鱼胶原蛋白肽配置 | 第44页 |
| ·试验方法 | 第44-46页 |
| ·试验流程图 | 第44页 |
| ·小鼠皮肤伤口模型的建立 | 第44页 |
| ·试验动物分组 | 第44-45页 |
| ·小鼠皮肤伤口愈合率的测定 | 第45页 |
| ·小鼠皮肤伤口组织常规病理结构变化分析 | 第45页 |
| ·小鼠皮肤伤口组织中胶原的含量测定及组织化学病理分析 | 第45页 |
| ·羟脯氨酸含量测定 | 第45页 |
| ·胶原纤维染色病理分析 | 第45页 |
| ·小鼠皮肤伤口组织中血管生成的免疫组织化学病理分析 | 第45-46页 |
| ·统计方法 | 第46页 |
| 2 结果与分析 | 第46-59页 |
| ·海鲈鱼胶原蛋白肽对小鼠皮肤伤口愈合率的影响 | 第46-48页 |
| ·海鲈鱼胶原蛋白肽对小鼠皮肤伤口组织常规病理变化的影响 | 第48-52页 |
| ·海鲈鱼胶原蛋白肽对小鼠皮肤伤口组织中胶原沉积的影响 | 第52-56页 |
| ·对小鼠皮肤伤口组织中羟脯氨酸含量的影响 | 第52-53页 |
| ·对小鼠皮肤伤口组织中胶原含量的影响 | 第53-56页 |
| ·海鲈鱼胶原蛋白肽对小鼠皮肤伤口组织中血管生成的影响 | 第56-59页 |
| ·对小鼠皮肤伤口组织中IGF-1表达的影响 | 第56-57页 |
| ·对小鼠皮肤伤口组织中FGF-2表达的影响 | 第57-59页 |
| 3 讨论 | 第59-61页 |
| 第四章 海鲈鱼胶原蛋白肽及其组分对NIH/3T3细胞增殖和迁移的影响 | 第61-80页 |
| 1 材料与方法 | 第61-68页 |
| ·试验材料与设备 | 第61-62页 |
| ·细胞株 | 第61页 |
| ·主要仪器 | 第61-62页 |
| ·主要试剂和配制试剂 | 第62页 |
| ·试验方法 | 第62-68页 |
| ·试验设计 | 第62-65页 |
| ·NIH/3T3细胞培养基本操作 | 第65页 |
| ·NIH/3T3细胞生长标准曲线的绘制 | 第65-66页 |
| ·NIH/3T3细胞生长曲线的绘制 | 第66-67页 |
| ·NIH/3T3细胞的药物毒性试验 | 第67页 |
| ·NIH/3T3细胞增殖率的测定 | 第67页 |
| ·NIH/3T3细胞迁移试验 | 第67-68页 |
| ·统计方法 | 第68页 |
| 2 结果与分析 | 第68-78页 |
| ·NIH/3T3细胞的生长曲线 | 第68-69页 |
| ·不同蛋白酶制备的胶原蛋白肽对NIH/3T3细胞增殖的影响 | 第69-73页 |
| ·不同蛋白酶制备的胶原蛋白肽对NIH/3T3细胞的毒性作用 | 第69-71页 |
| ·不同蛋白酶制备的胶原蛋白肽对NIH/3T3细胞增殖的影响 | 第71-73页 |
| ·碱性蛋白酶制备的胶原蛋白肽组分对NIH/3T3细胞增殖的影响 | 第73-76页 |
| ·胶原蛋白肽组分SBCPl对NIH/3T3细胞迁移的影响 | 第76-78页 |
| 3 讨论 | 第78-80页 |
| ·不同蛋白酶对其制备的胶原蛋白肽生物活性的影响 | 第78页 |
| ·分子量大小对胶原蛋白肽生物活性的影响 | 第78-80页 |
| 第五章 海鲈鱼胶原蛋白肽组分的理化、功能特性及氨基酸组成分析 | 第80-94页 |
| 1 材料与方法 | 第80-84页 |
| ·试验材料与设备 | 第80-81页 |
| ·试验材料 | 第80页 |
| ·主要仪器 | 第80-81页 |
| ·海鲈鱼胶原蛋白肽组分 | 第81页 |
| ·试验方法 | 第81-84页 |
| ·紫外吸收光谱分析 | 第81页 |
| ·水合性质测定 | 第81-82页 |
| ·溶解性测定 | 第82页 |
| ·吸油性测定 | 第82页 |
| ·乳化活性和乳化稳定性测定 | 第82-83页 |
| ·起泡性及起泡稳定性测定 | 第83-84页 |
| ·氨基酸组成分析 | 第84页 |
| ·统计方法 | 第84页 |
| 2 结果与分析 | 第84-92页 |
| ·紫外图谱特征 | 第84-85页 |
| ·水合性质 | 第85-86页 |
| ·溶解性 | 第86-87页 |
| ·吸油性 | 第87-88页 |
| ·乳化性和乳化稳定性 | 第88-90页 |
| ·起泡性和起泡稳定性 | 第90-91页 |
| ·氨基酸组成 | 第91-92页 |
| 3 讨论 | 第92-94页 |
| ·分子量大小对胶原蛋白肽的理化、功能特性的影响 | 第92-93页 |
| ·胶原蛋白肽的氨基酸组成与其生物活性的相关性分析 | 第93-94页 |
| 第六章 结论 | 第94-96页 |
| 1 结论 | 第94-95页 |
| ·海鲈鱼胶原蛋白肽的酶法制备工艺优化 | 第94页 |
| ·海鲈鱼胶原蛋白肽对小鼠皮肤伤口愈合的作用研究 | 第94页 |
| ·海鲈鱼胶原蛋白肽及其组分对NIH/3T3细胞增殖和迁移的影响 | 第94-95页 |
| ·海鲈鱼胶原蛋白肽组分的理化、功能特性及氨基酸组成分析 | 第95页 |
| 2 创新点 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-105页 |
| 致谢 | 第105页 |
