| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第11-19页 |
| 1.1 简述 | 第11页 |
| 1.2 猕猴桃的研究现状 | 第11-13页 |
| 1.2.1 猕猴桃蛋白的研究现状 | 第11-12页 |
| 1.2.2 猕猴桃多糖的研究进展 | 第12页 |
| 1.2.3 猕猴桃其他营养成分的研究现状 | 第12页 |
| 1.2.4 猕猴桃的药用价值 | 第12-13页 |
| 1.3 猕猴桃综合利用的现状 | 第13-15页 |
| 1.3.1 猕猴桃果肉饮品加工现状 | 第14页 |
| 1.3.2 猕猴桃果脯及其他加工成品的利用现状 | 第14页 |
| 1.3.3 猕猴桃果渣的利用现状 | 第14-15页 |
| 1.4 生物活性肽的研究现状 | 第15-17页 |
| 1.4.1 概述 | 第15页 |
| 1.4.2 多肽的分类及研究现状 | 第15页 |
| 1.4.3 多肽的制备 | 第15-17页 |
| 1.5 多肽分离纯化的研究现状 | 第17页 |
| 1.6 本文的主要研究内容 | 第17-19页 |
| 1.6.1 猕猴桃鲜果中基本成分的检测 | 第17-18页 |
| 1.6.2 猕猴桃蛋白的提取工艺优化 | 第18页 |
| 1.6.3 酶解猕猴桃蛋白,获得多肽 | 第18页 |
| 1.6.4 猕猴桃多肽抗菌活性的研究 | 第18-19页 |
| 第二章 猕猴桃基本化学成分的初步检测 | 第19-23页 |
| 2.1 实验材料 | 第19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-21页 |
| 2.2.1 猕猴桃不同提取液的提取与制备 | 第19页 |
| 2.2.2 检测方法和步骤 | 第19-21页 |
| 2.3 实验结果 | 第21页 |
| 2.4 讨论 | 第21-22页 |
| 2.5 结论 | 第22-23页 |
| 第三章 猕猴桃蛋白的提取工艺研究 | 第23-33页 |
| 3.1 实验材料 | 第23页 |
| 3.2 实验方法及步骤 | 第23-24页 |
| 3.2.1 绘制标准曲线 | 第23页 |
| 3.2.2 猕猴桃蛋白的提取工艺流程 | 第23页 |
| 3.2.3 超声提取与水浴提取的选择 | 第23-24页 |
| 3.2.4 温度对猕猴桃蛋白提取的影响 | 第24页 |
| 3.2.5 pH对猕猴桃蛋白提取的影响 | 第24页 |
| 3.2.6 提取时间对猕猴桃蛋白提取的影响 | 第24页 |
| 3.2.7 水料比对猕猴桃蛋白提取的影响 | 第24页 |
| 3.2.8 超声提取功率对蛋白提取率的影响 | 第24页 |
| 3.3 正交实验的设计 | 第24-25页 |
| 3.4 结果与分析 | 第25-29页 |
| 3.4.1 绘制标准曲线 | 第25页 |
| 3.4.2 超声提取与水浴提取的选择 | 第25-26页 |
| 3.4.3 温度对猕猴桃蛋白提取率的影响 | 第26页 |
| 3.4.4 pH对猕猴桃蛋白提取的影响 | 第26-27页 |
| 3.4.5 提取时间对猕猴桃蛋白提取率的影响 | 第27页 |
| 3.4.6 水料比对猕猴桃蛋白提取率的影响 | 第27-28页 |
| 3.4.7 超声提取功率对蛋白提取率的影响 | 第28-29页 |
| 3.5 正交实验结果分析 | 第29-30页 |
| 3.6 验证实验 | 第30页 |
| 3.7 讨论 | 第30-31页 |
| 3.8 小结 | 第31-33页 |
| 第四章 猕猴桃多肽的制备和分离 | 第33-49页 |
| 4.1 猕猴桃多肽提取工艺的研究 | 第33-35页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第33页 |
| 4.1.2 多肽含量的测定方法 | 第33页 |
| 4.1.3 酶解蛋白时,酶的选择 | 第33页 |
| 4.1.4 酶解蛋白时,蛋白含量的选择 | 第33-34页 |
| 4.1.5 酶解温度对猕猴桃多肽含量的影响 | 第34页 |
| 4.1.6 蛋白酶的加酶量对猕猴桃多肽含量的影响 | 第34页 |
| 4.1.7 酶解液的pH值对猕猴桃多肽含量的影响 | 第34页 |
| 4.1.8 酶解时间对猕猴桃多肽含量的影响 | 第34页 |
| 4.1.9 正交实验的设计 | 第34-35页 |
| 4.2 结果与分析 | 第35-40页 |
| 4.2.1 标准曲线的绘制 | 第35页 |
| 4.2.2 酶的选择 | 第35-36页 |
| 4.2.3 蛋白含量的选择 | 第36-37页 |
| 4.2.4 酶解温度对猕猴桃多肽含量的影响 | 第37-38页 |
| 4.2.5 蛋白酶的加酶量对猕猴桃多肽含量的影响 | 第38页 |
| 4.2.6 酶解液的pH值对猕猴桃多肽含量的影响 | 第38-39页 |
| 4.2.7 酶解时间对猕猴桃多肽含量的影响 | 第39-40页 |
| 4.3 正交实验结果 | 第40-41页 |
| 4.4 验证实验 | 第41页 |
| 4.5 讨论及小结 | 第41-42页 |
| 4.6 多肽的分离工艺研究 | 第42-44页 |
| 4.6.1 实验材料 | 第42页 |
| 4.6.2 实验流程 | 第42-44页 |
| 4.6.3 验证实验 | 第44页 |
| 4.7 结果与分析 | 第44-47页 |
| 4.7.1 待测料液的温度对超滤膜超滤效率的影响 | 第44-45页 |
| 4.7.2 猕猴桃酶解液的超滤时间对超滤膜超滤效率的影响 | 第45-46页 |
| 4.7.3 膜过滤设备的压力大小对超滤膜效率的影响 | 第46页 |
| 4.7.4 不同料液pH值对超滤膜膜通量的影响 | 第46-47页 |
| 4.7.5 验证实验结果 | 第47页 |
| 4.8 讨论 | 第47-48页 |
| 4.9 小结 | 第48-49页 |
| 第五章 猕猴桃多肽抗菌活性的研究 | 第49-57页 |
| 5.1 实验材料 | 第49页 |
| 5.2 实验方法和步骤 | 第49-51页 |
| 5.2.1 实验菌种的制备 | 第49页 |
| 5.2.2 菌悬液的配制 | 第49页 |
| 5.2.3 抗菌供试液的配制 | 第49页 |
| 5.2.4 含待测抗菌成分的滤纸片的制作 | 第49-50页 |
| 5.2.5 测定抗菌供试液最低抑菌浓度 | 第50页 |
| 5.2.6 5000Da多肽供试液的抗菌实验步骤 | 第50-51页 |
| 5.2.7 10000Da多肽供试液的抗菌实验步骤 | 第51页 |
| 5.2.8 蛋白供试液的抗菌实验步骤 | 第51页 |
| 5.2.9 抑菌作用大小的判断方法—抑菌圈的大小 | 第51页 |
| 5.3 结果与分析 | 第51-55页 |
| 5.3.1 最佳抗菌多肽含量的选择 | 第51-52页 |
| 5.3.2 3种待测抗菌成分对大肠杆菌的抑菌结果 | 第52-53页 |
| 5.3.3 3种待测抗菌成分对枯草芽孢杆菌的抑菌结果 | 第53-54页 |
| 5.3.4 3种待测抗菌成分对金黄色葡萄球菌的抑菌结果 | 第54-55页 |
| 5.3.5 对真菌青霉菌和黑曲霉的抑菌结果 | 第55页 |
| 5.4 讨论 | 第55-56页 |
| 5.5 小结 | 第56-57页 |
| 结论 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-69页 |
| 攻读硕士期间的科研成果 | 第69-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
