| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-22页 |
| 1.1 选题的目的和意义 | 第13页 |
| 1.2 猪血的产量及应用现状 | 第13-15页 |
| 1.2.1 猪血的营养成分 | 第13-14页 |
| 1.2.2 猪血的开发现状 | 第14-15页 |
| 1.3 猪血蛋白源功能性肽的研究现状 | 第15-18页 |
| 1.3.1 功能性肽的生理功能及应用 | 第15-18页 |
| 1.3.1.1 猪血蛋白源抗氧化肽 | 第15-16页 |
| 1.3.1.2 猪血蛋白源血压抑制肽(angiotensin-Ⅰ-converting enzyme,ACE)和降血脂肽 | 第16页 |
| 1.3.1.3 猪血蛋白源抗菌肽 | 第16-17页 |
| 1.3.1.4 猪血蛋白源其他功能性肽 | 第17-18页 |
| 1.4 猪血蛋白源功能性肽制备研究现状 | 第18-20页 |
| 1.4.1 猪血蛋白水解条件的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.4.2 多肽提纯技术研究进展 | 第19-20页 |
| 1.4.3 多肽鉴定技术的研究进展 | 第20页 |
| 1.5 研究内容 | 第20-22页 |
| 第二章 超声波辅助酶解制备猪血源抗氧化肽技术研究 | 第22-35页 |
| 2.1 材料与方法 | 第22-25页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第23页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.1.3.1 蛋白酶活力的测定 | 第23页 |
| 2.1.3.2 不同蛋白酶酶解液DPPH自由基清除率和水解度的比较 | 第23-24页 |
| 2.1.3.3 猪血血红蛋白制备 | 第24页 |
| 2.1.3.4 超声波对胰蛋白酶溶解度和活力的影响 | 第24页 |
| 2.1.3.5 常规酶解和超声波辅助酶解的比较 | 第24页 |
| 2.1.3.6 超声波辅助酶解工艺 | 第24页 |
| 2.1.3.7 水解度的测定 | 第24-25页 |
| 2.1.3.8 DPPH自由基清除率的测定 | 第25页 |
| 2.1.4 SDS-PAGE凝胶电泳 | 第25页 |
| 2.1.5 数据分析 | 第25页 |
| 2.2 结果与分析 | 第25-33页 |
| 2.2.1 不同蛋白酶酶活力测定结果 | 第25-26页 |
| 2.2.2 L-酪氨酸标准曲线 | 第26页 |
| 2.2.3 蛋白酶酶解液对DPPH自由基清除率影响 | 第26-27页 |
| 2.2.4 超声波对胰蛋白酶酶活性的影响 | 第27-28页 |
| 2.2.5 超声波辅助酶解对酶解效率的影响 | 第28-29页 |
| 2.2.6 超声波处理条件对DPPH自由基清除率和水解度的影响 | 第29-32页 |
| 2.2.6.1 超声波处理时间对DPPH自由基清除率和水解度的影响 | 第29-30页 |
| 2.2.6.2 超声波频率对DPPH自由基清除率和水解度的影响 | 第30-31页 |
| 2.2.6.3 超声波功率对DPPH自由基清除率和水解度的影响 | 第31页 |
| 2.2.6.4 酶添加量对DPPH自由基清除率和水解度的影响 | 第31-32页 |
| 2.2.7 超声波辅助酶解猪血源抗氧化肽工艺条件的优化 | 第32-33页 |
| 2.3 本章小结 | 第33-35页 |
| 第三章 猪血源抗氧化肽分离纯化及抗氧化性能评定 | 第35-46页 |
| 3.1 材料与方法 | 第35-38页 |
| 3.1.1 原料与试剂 | 第35页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第35-36页 |
| 3.1.3 试验方法 | 第36-38页 |
| 3.1.3.1 猪血源抗氧化肽胰蛋白酶提物制备 | 第36页 |
| 3.1.3.2 猪血源抗氧化肽凝胶色谱分离纯化 | 第36-37页 |
| 3.1.3.3 猪血源抗氧化肽反向高效液相色谱分离 | 第37页 |
| 3.1.3.4 猪血源抗氧化肽半制备高效液相色谱分离及收集 | 第37页 |
| 3.1.3.5 猪血源抗氧化肽Thermo Quantum Altra质谱分析 | 第37页 |
| 3.1.3.6 各组分抗氧化能力评定 | 第37-38页 |
| 3.2 结果与分析 | 第38-44页 |
| 3.2.1 猪血源抗氧化肽Seohadex G-25分离及抗氧化性能评定 | 第38-39页 |
| 3.2.2 峰Ⅳ的反向高效液相分离结果 | 第39-40页 |
| 3.2.3 抗氧化组分A1的低分辨率质谱研究 | 第40页 |
| 3.2.4 各组分抗氧化物活性研究 | 第40-44页 |
| 3.2.4.1 各组分DPPH自由基清除率IC_(50)比较 | 第40-41页 |
| 3.2.4.2 各组分还原力比较 | 第41-42页 |
| 3.2.4.3 各组分ABTS自由基清除率比较 | 第42-43页 |
| 3.2.4.4 猪血源抗氧化肽对动植物油脂诱导氧化比较 | 第43-44页 |
| 3.3 本章小结 | 第44-46页 |
| 第四章 猪血源抗氧化肽稳定性研究 | 第46-57页 |
| 4.1 材料与方法 | 第46-48页 |
| 4.1.1 原料与试剂 | 第46页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第46页 |
| 4.1.3 试验方法 | 第46-48页 |
| 4.1.3.1 pH值对猪血票源抗氧化肽稳定性的影响 | 第46-47页 |
| 4.1.3.2 温度对猪血源抗氧化肽稳定性的影响 | 第47页 |
| 4.1.3.3 食盐对猪血源个抗氧化肽稳定性的影响 | 第47页 |
| 4.1.3.4 蔗糖对猪血源抗氧化肽稳定性的影响 | 第47页 |
| 4.1.3.5 柠檬酸对猪血源抗氧化肽稳定性的影响 | 第47页 |
| 4.1.3.6 胃肠道蛋白酶对猪血源抗氧化肽活性的影响 | 第47-48页 |
| 4.2 结果与分析 | 第48-55页 |
| 4.2.1 pH值对猪血源抗氧化肽稳定性的影响 | 第48-49页 |
| 4.2.2 温度对猪血源抗氧化肽稳定性的影响 | 第49-50页 |
| 4.2.3 食盐浓度对猪血源抗氧化肽稳定性的影响 | 第50-51页 |
| 4.2.4 蔗糖浓度对猪血源抗氧化肽稳定性的影响 | 第51-53页 |
| 4.2.5 柠檬酸浓度对猪血源抗氧化肽稳定性的影响 | 第53-54页 |
| 4.2.6 模拟胃肠液对猪血源抗氧化肽稳定性的影响 | 第54-55页 |
| 4.3 本章小结 | 第55-57页 |
| 第五章 全文总结、创新点及建议 | 第57-59页 |
| 5.1 全文主要结论 | 第57-58页 |
| 5.2 本文主要创新点 | 第58页 |
| 5.3 不足和建议 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 作者简介 | 第64页 |
