| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 引言 | 第13-18页 |
| 1.1 羊栖菜简介 | 第13页 |
| 1.2 国内外研究现状 | 第13-17页 |
| 1.2.1 羊栖菜多糖提取分离纯化的研究进展 | 第13-14页 |
| 1.2.2 羊栖菜多糖活性分析 | 第14-17页 |
| 1.2.2.1 抗肿瘤 | 第15页 |
| 1.2.2.2 调节免疫 | 第15页 |
| 1.2.2.3 降血脂血糖 | 第15-16页 |
| 1.2.2.4 抗氧化 | 第16页 |
| 1.2.2.5 抗凝血 | 第16页 |
| 1.2.2.6 增强内皮细胞增殖及保护修复细胞氧化损伤 | 第16页 |
| 1.2.2.7 促进生长发育 | 第16页 |
| 1.2.2.8 抗病毒 | 第16页 |
| 1.2.2.9 其它药理作用 | 第16-17页 |
| 1.3 研究内容及意义 | 第17-18页 |
| 第二章 不同分子量段羊栖菜多糖提取分离试验 | 第18-27页 |
| 2.1 材料与方法 | 第18-20页 |
| 2.1.1 材料与仪器 | 第18页 |
| 2.1.1.1 实验材料 | 第18页 |
| 2.1.1.2 主要试剂 | 第18页 |
| 2.1.1.3 仪器与设备 | 第18页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第18-20页 |
| 2.1.2.1 羊栖菜多糖提取工艺 | 第18-19页 |
| 2.1.2.2 羊栖菜多糖测定 | 第19页 |
| 2.1.2.3 单因素试验 | 第19页 |
| 2.1.2.4 响应面试验设计 | 第19-20页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第20-26页 |
| 2.2.1 微波功率对羊栖菜多糖得率的影响 | 第20页 |
| 2.2.2 微波时间对羊栖菜多糖得率的影响 | 第20-21页 |
| 2.2.3 液料比对羊栖菜多糖提取率的影响 | 第21页 |
| 2.2.4 水提温度对羊栖菜多糖得率的影响 | 第21-22页 |
| 2.2.5 水提时间对羊栖菜多糖得率的影响 | 第22-23页 |
| 2.2.6 响应面试验结果分析 | 第23-26页 |
| 2.3 结论 | 第26-27页 |
| 第三章 羊栖菜多糖体外抗氧化实验方法 | 第27-35页 |
| 3.1 材料与方法 | 第27-29页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第27页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第27页 |
| 3.1.3 不同分子量段羊栖菜多糖的提取与制备 | 第27页 |
| 3.1.4 多糖含量的测定 | 第27页 |
| 3.1.5 试剂的配制 | 第27页 |
| 3.1.6 多糖对羟基自由基（·OH）清除能力的测定 | 第27-28页 |
| 3.1.7 多糖对超氧阴离子（·O2-）清除能力的测定 | 第28-29页 |
| 3.1.8 多糖对DPPH·清除能力的测定 | 第29页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第29-33页 |
| 3.2.1 不同分子量多糖分布结果及多糖含量 | 第29-30页 |
| 3.2.2 多糖对羟自由基的清除作用 | 第30页 |
| 3.2.3 多糖对超氧阴离子的清除作用 | 第30-31页 |
| 3.2.4 多糖对DPPH·的清除作用 | 第31-32页 |
| 3.2.5 不同分子量段多糖抗氧化分析比较 | 第32-33页 |
| 3.3 结论 | 第33-35页 |
| 第四章 羊栖菜多糖对消旋山莨菪碱模型小鼠学习记忆的影响 | 第35-42页 |
| 4.1 材料与方法 | 第35-37页 |
| 4.1.1 动物 | 第35页 |
| 4.1.2 药品与试剂 | 第35页 |
| 4.1.3 仪器 | 第35-36页 |
| 4.1.4 不同分子量段羊栖菜多糖的提取与制备 | 第36页 |
| 4.1.5 动物筛选与分组 | 第36页 |
| 4.1.6 Morris水迷宫定位航行试验 | 第36页 |
| 4.1.7 反向实验和探索实验 | 第36页 |
| 4.1.8 血清T-AOC、SOD、MDA的测定 | 第36页 |
| 4.1.9 数据处理 | 第36-37页 |
| 4.2 结果与分析 | 第37-41页 |
| 4.2.1 多糖对小鼠空间学习记忆能力的影响 | 第37-38页 |
| 4.2.2 多糖对小鼠探索能力的影响 | 第38-40页 |
| 4.2.3 多糖对小鼠抗氧化能力的影响 | 第40-41页 |
| 4.3 结论 | 第41-42页 |
| 第五章 羊栖菜多糖对小鼠抗疲劳作用的研究 | 第42-48页 |
| 5.1 材料与方法 | 第42-43页 |
| 5.1.1 动物 | 第42页 |
| 5.1.2 药品与试剂 | 第42页 |
| 5.1.3 仪器 | 第42页 |
| 5.1.4 不同分子量段羊栖菜多糖的提取与制备 | 第42页 |
| 5.1.5 动物筛选与分组 | 第42-43页 |
| 5.1.6 小鼠负重游泳实验 | 第43页 |
| 5.1.7 小鼠血清SOD、MDA、肝糖原含量的测定 | 第43页 |
| 5.1.8 小鼠肌乳酸、血清尿素含量的测定 | 第43页 |
| 5.1.9 数据处理 | 第43页 |
| 5.2 结果与分析 | 第43-47页 |
| 5.2.1 多糖对小鼠体重的影响 | 第43-44页 |
| 5.2.2 多糖对小鼠负重游泳时间的影响 | 第44-45页 |
| 5.2.3 多糖对小鼠血清SOD、MDA、肝糖原含量的影响 | 第45-46页 |
| 5.2.4 多糖对小鼠肌乳酸及血清尿素含量的影响 | 第46-47页 |
| 5.3 结论 | 第47-48页 |
| 第六章 羊栖菜多糖的分离纯化及结构鉴定 | 第48-59页 |
| 6.1 实验材料 | 第48页 |
| 6.1.1 实验试剂 | 第48页 |
| 6.1.2 实验仪器与设备 | 第48页 |
| 6.1.3 层析柱及色谱柱 | 第48页 |
| 6.2 实验方法 | 第48-49页 |
| 6.2.1 羊栖菜多糖的分离纯化 | 第48-49页 |
| 6.2.1.1 羊栖菜多糖纤维素阴离子交换柱分离 | 第48-49页 |
| 6.2.1.2 Sephadex G-100 凝胶柱层析纯化 | 第49页 |
| 6.2.2 红外光谱分析 | 第49页 |
| 6.2.3 离子色谱法测单糖组分 | 第49页 |
| 6.2.4 核磁共振分析 | 第49页 |
| 6.3 结果与分析 | 第49-58页 |
| 6.3.1 分离纯化结果 | 第49-51页 |
| 6.3.1.1 DEAE-52 离子交换柱结果 | 第49-50页 |
| 6.3.1.2 Sephadex G-100 柱层析结果 | 第50-51页 |
| 6.3.2 红外光谱分析 | 第51-53页 |
| 6.3.3 单糖组成分析 | 第53-55页 |
| 6.3.4 NMR光谱分析 | 第55-58页 |
| 6.4 结论 | 第58-59页 |
| 第七章 结论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 致谢 | 第68页 |
