| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩略词注释 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-18页 |
| 1.1 绿原酸生物功能研究进展 | 第11-12页 |
| 1.1.1 绿原酸的结构和理化性质 | 第11页 |
| 1.1.2 绿原酸的生理活性 | 第11-12页 |
| 1.1.2.1 抗氧化作用 | 第11页 |
| 1.1.2.2 抗菌作用 | 第11页 |
| 1.1.2.3 抗病毒作用 | 第11-12页 |
| 1.1.2.4 降糖、降脂、降血压作用 | 第12页 |
| 1.1.2.5 免疫调节作用 | 第12页 |
| 1.2 葛根黄酮生物功能研究进展 | 第12-14页 |
| 1.2.1 黄酮类化合物简介 | 第12-13页 |
| 1.2.2 黄酮类化合物的生理活性 | 第13-14页 |
| 1.2.2.1 抑菌作用 | 第13页 |
| 1.2.2.2 清除自由基、抗氧化、抗衰老作用 | 第13页 |
| 1.2.2.3 抗心血管疾病 | 第13-14页 |
| 1.2.2.4 免疫调节作用 | 第14页 |
| 1.2.3 葛根的简介 | 第14页 |
| 1.3 松针多糖生物功能研究进展 | 第14-15页 |
| 1.3.1 多糖化合物的简介 | 第14页 |
| 1.3.2 多糖化合物的生理活性 | 第14-15页 |
| 1.3.2.1 降血糖、降血脂作用 | 第14页 |
| 1.3.2.2 抗氧化作用 | 第14-15页 |
| 1.3.2.3 免疫调节作用 | 第15页 |
| 1.3.3 松针的简介 | 第15页 |
| 1.4 免疫调节 | 第15-16页 |
| 1.4.1 免疫系统 | 第15页 |
| 1.4.2 巨噬细胞 | 第15-16页 |
| 1.4.3 MAPK信号通路 | 第16页 |
| 1.5 课题来源及研究目的与意义 | 第16-18页 |
| 1.5.1 课题来源 | 第16页 |
| 1.5.2 研究目的与意义 | 第16-18页 |
| 第二章 绿原酸、葛根黄酮、松针多糖对小鼠腹腔巨噬细胞功能的研究 | 第18-31页 |
| 2.1 试验器材与仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第18页 |
| 2.1.2 试剂及材料 | 第18页 |
| 2.1.3 仪器设备 | 第18-19页 |
| 2.2 试验方法 | 第19-20页 |
| 2.2.1 试剂配制 | 第19页 |
| 2.2.2 小鼠腹腔巨噬细胞的分离 | 第19页 |
| 2.2.3 实验分组 | 第19页 |
| 2.2.4 CGA、RPI及松针多糖对小鼠腹腔巨噬细胞代谢活力的影响（MTT法） | 第19页 |
| 2.2.5 CGA、RPI及松针多糖对小鼠腹腔巨噬细胞吞噬能力的影响（中性红法） | 第19-20页 |
| 2.2.6 CGA、RPI及松针多糖对小鼠腹腔巨噬细胞产生NO的影响（Greiss法） | 第20页 |
| 2.2.7 CGA、RPI及松针多糖对小鼠腹腔巨噬细胞分泌IL-1β、TNF-α 和IL-10的影响 | 第20页 |
| 2.2.8 统计学分析 | 第20页 |
| 2.3 结果与分析 | 第20-28页 |
| 2.3.1 CGA、RPI及松针多糖对小鼠腹腔巨噬细胞代谢活力的影响 | 第20-21页 |
| 2.3.2 CGA、RPI及松针多糖对小鼠腹腔巨噬细胞吞噬能力的影响 | 第21-23页 |
| 2.3.3 CGA、RPI及松针多糖对小鼠腹腔巨噬细胞产生NO能力的影响 | 第23-24页 |
| 2.3.4 CGA、RPI及松针多糖对小鼠腹腔巨噬细胞产生IL-10的影响 | 第24-26页 |
| 2.3.5 CGA、RPI及松针多糖对小鼠腹腔巨噬细胞产生TNF-α 的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.6 CGA、RPI及松针多糖对小鼠腹腔巨噬细胞产生IL-1β 的影响 | 第27-28页 |
| 2.4 讨论 | 第28-30页 |
| 2.5 小结 | 第30-31页 |
| 第三章 绿原酸、葛根黄酮、松针多糖复合物组合的优化 | 第31-40页 |
| 3.1 试验器材与仪器 | 第31-32页 |
| 3.1.1 试验动物 | 第31页 |
| 3.1.2 试剂及材料 | 第31页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第31-32页 |
| 3.2 试验方法 | 第32页 |
| 3.2.1 试剂配制 | 第32页 |
| 3.2.2 小鼠腹腔巨噬细胞的分离 | 第32页 |
| 3.2.3 正交试验 | 第32页 |
| 3.2.4 实验分组 | 第32页 |
| 3.2.5 对小鼠腹腔巨噬细胞代谢活力的影响（MTT法） | 第32页 |
| 3.2.6 对小鼠腹腔巨噬细胞吞噬能力的影响（中性红法） | 第32页 |
| 3.2.7 对小鼠腹腔巨噬细胞产生NO的影响（Greiss法） | 第32页 |
| 3.2.8 对小鼠腹腔巨噬细胞分泌IL-1β 和IL-10的影响 | 第32页 |
| 3.2.9 统计学分析 | 第32页 |
| 3.3 结果与分析 | 第32-39页 |
| 3.3.1 对小鼠腹腔巨噬细胞代谢活力的影响（MTT法） | 第32-33页 |
| 3.3.2 对小鼠腹腔巨噬细胞吞噬能力的影响（中性红法） | 第33-34页 |
| 3.3.3 对小鼠腹腔巨噬细胞产生NO的影响（Greiss法） | 第34-36页 |
| 3.3.4 对小鼠腹腔巨噬细胞产生IL-1β 的影响 | 第36-37页 |
| 3.3.5 对小鼠腹腔巨噬细胞产生IL-10的影响 | 第37-39页 |
| 3.3.6 验证试验 | 第39页 |
| 3.4 讨论 | 第39页 |
| 3.5 小结 | 第39-40页 |
| 第四章 复合物对巨噬细胞细胞因子及I型干扰素分泌的影响 | 第40-48页 |
| 4.1 试验材料与仪器 | 第40-41页 |
| 4.1.1 试验动物 | 第40页 |
| 4.1.2 试剂及材料 | 第40-41页 |
| 4.1.3 主要仪器设备 | 第41页 |
| 4.2 试验方法 | 第41-43页 |
| 4.2.1 试剂配制 | 第41页 |
| 4.2.2 小鼠腹腔巨噬细胞分离 | 第41页 |
| 4.2.3 实验分组 | 第41页 |
| 4.2.4 细胞总RNA的提取、完整性检测及cDNA转录 | 第41页 |
| 4.2.5 实时定量PCR检测 | 第41-42页 |
| 4.2.6 RT-PCR体系 | 第42页 |
| 4.2.7 PCR反应条件 | 第42页 |
| 4.2.8 Ct和RQ值计算 | 第42-43页 |
| 4.3 结果与分析 | 第43-46页 |
| 4.3.1 腹腔巨噬细胞总RNA完整性 | 第43页 |
| 4.3.2 复合物对小鼠腹腔巨噬细胞IL-1β 表达的影响 | 第43页 |
| 4.3.3 复合物对小鼠腹腔巨噬细胞IL-6 表达的影响 | 第43-44页 |
| 4.3.4 复合物对小鼠腹腔巨噬细胞TNF-α 表达的影响 | 第44页 |
| 4.3.5 复合物对小鼠腹腔巨噬细胞iNOS表达的影响 | 第44-45页 |
| 4.3.6 复合物对小鼠腹腔巨噬细胞IL-10表达的影响 | 第45页 |
| 4.3.7 复合物对小鼠腹腔巨噬细胞IFN-4α 及IFN-β 表达的影响 | 第45-46页 |
| 4.4 讨论 | 第46-47页 |
| 4.5 小结 | 第47-48页 |
| 第五章 复合物对小鼠腹腔巨噬细胞MAPK信号通路的影响 | 第48-55页 |
| 5.1 试验材料与仪器 | 第48-49页 |
| 5.1.1 试验动物 | 第48页 |
| 5.1.2 试剂及材料 | 第48-49页 |
| 5.1.3 实验设备 | 第49页 |
| 5.2 试验方法 | 第49-50页 |
| 5.2.1 试剂配制 | 第49页 |
| 5.2.2 巨噬细胞总蛋白的提取 | 第49页 |
| 5.2.3 蛋白含量的测定 | 第49页 |
| 5.2.4 SDS-PAGE凝胶的制备 | 第49-50页 |
| 5.2.5 样品变性及电泳、电泳及完整性检验、转膜及检测、免疫检测 | 第50页 |
| 5.2.6 凝胶成像分析及数据分析 | 第50页 |
| 5.3 结果与分析 | 第50-53页 |
| 5.3.1 p38MAPK和p-p38MAPK蛋白凝胶成像图和定量分析 | 第50-51页 |
| 5.3.2 JNK和p-JNK蛋白凝胶成像图和定量分析 | 第51-52页 |
| 5.3.3 ERK和p-ERK蛋白凝胶成像图和定量分析 | 第52-53页 |
| 5.4 讨论 | 第53-54页 |
| 5.5 小结 | 第54-55页 |
| 结论与展望 | 第55-56页 |
| 1 结论 | 第55页 |
| 2 展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 作者简介 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
