| 摘要 | 第1-11页 |
| 英文摘要 | 第11-13页 |
| 1 引言 | 第13-27页 |
| ·植物线虫病的发生与防治 | 第13-14页 |
| ·植物线虫病概述 | 第13页 |
| ·植物线虫病的危害 | 第13页 |
| ·植物线虫病的防治措施 | 第13-14页 |
| ·农药概述 | 第14-16页 |
| ·农药及其发展史 | 第14-15页 |
| ·化学农药残留的危害 | 第15-16页 |
| ·农药残留的检测技术 | 第16-18页 |
| ·农药残留的传统检测技术 | 第16-17页 |
| ·农药残留的新型检测技术 | 第17-18页 |
| ·生物传感器概述 | 第18-21页 |
| ·生物传感器的概念 | 第18页 |
| ·生物传感器的分类 | 第18-19页 |
| ·压电式生物传感器 | 第19页 |
| ·压电效应 | 第19-20页 |
| ·石英晶体微天平 | 第20页 |
| ·生物传感器的发展前景 | 第20-21页 |
| ·生物传感器-固定酶的方法 | 第21-24页 |
| ·吸附法 | 第21页 |
| ·物理包埋法 | 第21页 |
| ·共价键合法 | 第21-22页 |
| ·化学交联法 | 第22-23页 |
| ·自组装法技术 | 第23-24页 |
| ·纳米碳管发现与应用 | 第24-25页 |
| ·纳米碳管的概述 | 第24页 |
| ·纳米碳管的性能 | 第24-25页 |
| ·纳米碳管在传感器中的研究进展 | 第25页 |
| ·存在的问题 | 第25-26页 |
| ·研究的意义及内容 | 第26-27页 |
| ·研究的意义 | 第26页 |
| ·主要研究内容 | 第26-27页 |
| 2 材料与方法 | 第27-34页 |
| ·试验材料 | 第27-28页 |
| ·试剂 | 第27-28页 |
| ·试验仪器 | 第28页 |
| ·试验方法 | 第28-34页 |
| ·修饰电极识别杀线虫剂的过程 | 第28-29页 |
| ·羧基化纳米碳管制备 | 第29页 |
| ·电极表面组装PDDA 与PSS 的稳定性测定 | 第29-30页 |
| ·电子显微镜表征纳米碳管的分布 | 第30-31页 |
| ·电极表面组装(PDDA/PSS)_(3.5)/MWNTs-COOH 薄膜 | 第31页 |
| ·纳米碳管浓度的选择 | 第31页 |
| ·乙酰胆碱酯酶的固定 | 第31-32页 |
| ·pH 对电极表面酶固定量的影响 | 第32页 |
| ·组装电极的稳定性测试 | 第32页 |
| ·实际检测样品的制备 | 第32页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第32页 |
| ·QCM 与GC 法检测实际样品 | 第32-33页 |
| ·数据处理和分析 | 第33-34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-48页 |
| ·电极表面PDDA 与PSS 组装后的稳定性 | 第34-35页 |
| ·SEM 表征羧基化纳米碳管 | 第35-37页 |
| ·TEM 表征羧基化纳米碳管 | 第37-39页 |
| ·纳米碳管最佳浓度确定 | 第39-40页 |
| ·乙酰胆碱酯酶最佳浓度优化 | 第40页 |
| ·电极表面酶固定的最佳pH | 第40-41页 |
| ·不同电极表面对固定酶量的影响 | 第41-42页 |
| ·酶电极的稳定性 | 第42-43页 |
| ·QCM 检测标准样品建立标准曲线 | 第43-45页 |
| ·QCM 检测毒死蜱标准曲线的建立 | 第43-44页 |
| ·QCM 检测辛硫磷标准曲线的建立 | 第44-45页 |
| ·GC 与QCM 法检测实际样品 | 第45-48页 |
| ·毒死蜱 | 第45-46页 |
| ·辛硫磷 | 第46-48页 |
| 4 讨论 | 第48-51页 |
| ·修饰电极的优化组装 | 第48页 |
| ·乙酰胆碱酯酶的固定 | 第48-49页 |
| ·电极的稳定性 | 第49页 |
| ·杀线虫剂的检测 | 第49-51页 |
| 5 结论 | 第51-52页 |
| ·优化出乙酰胆碱酯酶的固定条件 | 第51页 |
| ·确定了修饰电极的有效期 | 第51页 |
| ·建立了毒死蜱和辛硫磷的标准曲线 | 第51页 |
| ·QCM 对有机磷农药检测具有较高的灵敏性 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-60页 |
| 攻读学位期间所发表的学术论文 | 第60页 |