摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
英文缩写词表 | 第8-13页 |
1 前言 | 第13-23页 |
1.1 日照绿茶 | 第13-15页 |
1.1.1 日照绿茶简介 | 第13页 |
1.1.2 日照绿茶中的多酚物质 | 第13-15页 |
1.2 茶多酚提取物生物活性研究进展 | 第15-16页 |
1.2.1 抗氧化活性 | 第15页 |
1.2.2 抗炎活性 | 第15-16页 |
1.2.3 抑菌活性 | 第16页 |
1.2.4 茶多酚的其他功效 | 第16页 |
1.3 茶多酚提取方式 | 第16-17页 |
1.3.1 溶剂提取法 | 第16-17页 |
1.3.2 超声波乙醇辅助提取法 | 第17页 |
1.3.3 微波提取法 | 第17页 |
1.3.4 生物酶提取法 | 第17页 |
1.4 茶多酚提取物抗氧化评价方式 | 第17-18页 |
1.4.1 化学抗氧化评价 | 第17-18页 |
1.4.2 细胞抗氧化评价 | 第18页 |
1.5 茶多酚功能评价常用的动物模型 | 第18-20页 |
1.5.1 肝损伤机制及动物模型 | 第18-20页 |
1.5.2 胃损伤机制及动物模型 | 第20页 |
1.6 立題目的及意义 | 第20-21页 |
1.7 研究内容与技术路线图 | 第21-23页 |
1.7.1 研究内容 | 第21-22页 |
1.7.2 技术路线图 | 第22-23页 |
2 乙醇提取法制备茶多酚提取物 | 第23-30页 |
2.1 材料与方法 | 第23-25页 |
2.1.1 试验仪器与材料 | 第23-24页 |
2.1.2 试验方法 | 第24-25页 |
2.2 结果与分析 | 第25-29页 |
2.2.1 茶多酚提取的单因素研究结果分析 | 第25-27页 |
2.2.2 茶多酚提取条件正交实验法优化结果分析 | 第27-29页 |
2.3 本章小结 | 第29-30页 |
3 酶法制备茶多酚提取物 | 第30-40页 |
3.1 材料与方法 | 第30-32页 |
3.1.1 试验仪器与材料 | 第30-31页 |
3.1.2 试验方法 | 第31-32页 |
3.2 结果与分析 | 第32-39页 |
3.2.1 茶多酚提取的单因素研究结果分析 | 第32-34页 |
3.2.2 酶法提取茶多酚响应面试验优化的结果分析 | 第34-39页 |
3.3 本章小结 | 第39-40页 |
4 超声波乙醇辅助提取法制备茶多酚提取物 | 第40-50页 |
4.1 材料与方法 | 第40-42页 |
4.1.1 试验仪器与材料 | 第40-41页 |
4.1.2 试验方法 | 第41-42页 |
4.2 结果与分析 | 第42-49页 |
4.2.1 茶多酚提取的单因素研究结果分析 | 第42-44页 |
4.2.2 超声乙醇辅助提取法提取茶多酚响应面试验优化结果分析 | 第44-49页 |
4.3 本章小结 | 第49-50页 |
5 茶多酚提取物体外抗氧化活性的研究 | 第50-57页 |
5.1 材料与方法 | 第50-54页 |
5.1.1 试验仪器与材料 | 第50-51页 |
5.1.2 试验方法 | 第51-54页 |
5.2 结果与分析 | 第54-56页 |
5.2.1 茶多酚DPPH·清除率的测定结果分析 | 第54页 |
5.2.2 茶多酚ABTS·清除率的测定结果分析 | 第54-55页 |
5.2.3 茶多酚OH·清除率的测定结果分析 | 第55-56页 |
5.2.4 茶多酚O_2~-·清除率的测定结果分析 | 第56页 |
5.3 本章小结 | 第56-57页 |
6 茶多酚提取物体内抗氧化效果的研究 | 第57-68页 |
6.1 材料与方法 | 第57-60页 |
6.1.1 试验仪器和材料 | 第57-58页 |
6.1.2 试验方法 | 第58-60页 |
6.2 结果与分析 | 第60-66页 |
6.2.1 茶多酚提取物对损伤大鼠肝脏SOD、GSH-Px、CAT活力的影响 | 第60-61页 |
6.2.2 茶多酚提取物对氧化损伤大鼠肝脏MDA含量的影响 | 第61-62页 |
6.2.3 茶多酚提取物对氧化损伤大鼠血清中炎症细胞因子的影响 | 第62-64页 |
6.2.4 大鼠血清自由基清除率分析 | 第64-66页 |
6.3 本章小结 | 第66-68页 |
7 结论 | 第68-70页 |
致谢 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-78页 |
攻读学位期间发表的硕士学位论文 | 第78-79页 |