| 摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-12页 |
| 第1章 绪论 | 第13-25页 |
| 1.1 微生物多糖概述 | 第13-17页 |
| 1.1.1 微生物胞外多糖 | 第13页 |
| 1.1.2 微生物多糖的分类 | 第13页 |
| 1.1.3 微生物多糖的化学组成和结构 | 第13-14页 |
| 1.1.4 微生物多糖的性质与功能 | 第14-16页 |
| 1.1.5 微生物多糖的应用 | 第16-17页 |
| 1.2 多糖含量测定方法 | 第17-18页 |
| 1.3 多糖的提取、分离和纯化方法 | 第18-20页 |
| 1.3.1 多糖的提取方法 | 第18页 |
| 1.3.2 多糖的分离方法 | 第18-19页 |
| 1.3.3 多糖的纯化方法 | 第19-20页 |
| 1.4 多糖纯度和分子量的测定 | 第20页 |
| 1.5 多糖的结构研究 | 第20-22页 |
| 1.5.1 多糖的单糖组成分析 | 第20-21页 |
| 1.5.2 多糖红外光谱分析 | 第21页 |
| 1.5.3 多糖的核磁共振波谱分析 | 第21页 |
| 1.5.4 多糖的甲基化分析 | 第21-22页 |
| 1.5.5 多糖高级结构的研究 | 第22页 |
| 1.6 立题依据和研究内容 | 第22-25页 |
| 1.6.1 立题依据 | 第22页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第22-23页 |
| 1.6.3 技术路线 | 第23-25页 |
| 第2章 依氏交替假单胞菌HZ胞外多糖EPS-PⅡ的发酵工艺优化 | 第25-41页 |
| 2.1 材料 | 第25-26页 |
| 2.1.1 菌株 | 第25页 |
| 2.1.2 试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.3 仪器与设备 | 第26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-28页 |
| 2.2.1 种子液培养 | 第26页 |
| 2.2.2 摇瓶发酵培养 | 第26页 |
| 2.2.3 单因素试验方法 | 第26页 |
| 2.2.4 多糖含量测定方法 | 第26-27页 |
| 2.2.5 Plackett-Burman实验设计 | 第27页 |
| 2.2.6 Box-Behnken实验设计 | 第27-28页 |
| 2.2.7 数据统计分析 | 第28页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第28-40页 |
| 2.3.1 葡萄糖标准曲线（苯酚-硫酸法） | 第28页 |
| 2.3.2 单因素试验结果 | 第28-36页 |
| 2.3.3 Plackett-Burman实验结果 | 第36-37页 |
| 2.3.4 Box-Behnken实验结果 | 第37-40页 |
| 2.3.5 验证实验 | 第40页 |
| 2.4 本章小结 | 第40-41页 |
| 第3章 EPS-PⅡ多糖的提取、分离和纯化 | 第41-47页 |
| 3.1 材料 | 第41-42页 |
| 3.1.1 多糖发酵液 | 第41页 |
| 3.1.2 试剂 | 第41页 |
| 3.1.3 仪器与设备 | 第41-42页 |
| 3.2 实验方法 | 第42-43页 |
| 3.2.1 EPS-PⅡ粗多糖的提取 | 第42页 |
| 3.2.2 Sevage法脱除EPS-PⅡ粗多糖蛋白 | 第42页 |
| 3.2.3 DEAE-52 离子交换柱层析 | 第42-43页 |
| 3.2.4 Sephadex G-100 葡聚糖凝胶柱层析 | 第43页 |
| 3.2.5 选择性半透膜透析除盐 | 第43页 |
| 3.2.6 EPS-PⅡ多糖冷冻干燥 | 第43页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第43-45页 |
| 3.3.1 EPS-PⅡ多糖紫外扫描结果 | 第43-44页 |
| 3.3.2 DEAE -52 阴离子交换柱层析结果 | 第44页 |
| 3.3.3 Sephadex G-100 葡聚糖柱层析结果 | 第44-45页 |
| 3.4 本章小结 | 第45-47页 |
| 第4章 EPS-PⅡ分子量的测定和结构解析 | 第47-55页 |
| 4.1 材料 | 第47-48页 |
| 4.1.1 试剂 | 第47-48页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第48页 |
| 4.2 实验方法 | 第48-51页 |
| 4.2.1 EPS-PⅡ纯度和分子量的测定 | 第48-49页 |
| 4.2.2 EPS-PⅡ单糖组成的分析 | 第49页 |
| 4.2.3 EPS-PⅡ元素含量的分析 | 第49页 |
| 4.2.4 EPS-PⅡ的红外光谱分析 | 第49-50页 |
| 4.2.5 EPS-PⅡ的核磁共振波谱分析 | 第50页 |
| 4.2.6 EPS-PⅡ甲基化分析 | 第50-51页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第51-54页 |
| 4.3.1 EPS-PⅡ的纯度和分子量 | 第51-52页 |
| 4.3.2 EPS-PⅡ的单糖组成分析结果 | 第52页 |
| 4.3.3 EPS-PⅡ的元素分析结果 | 第52-53页 |
| 4.3.4 EPS-PⅡ的红外光谱分析结果 | 第53页 |
| 4.3.5 EPS-PⅡ的核磁共振波谱分析结果 | 第53页 |
| 4.3.6 EPS-PⅡ的甲基化分析结果 | 第53-54页 |
| 4.4 本章小结 | 第54-55页 |
| 第5章 EPS-PⅡ粗多糖功能的研究 | 第55-67页 |
| 5.1 材料 | 第55-56页 |
| 5.1.1 试剂 | 第55页 |
| 5.1.2 仪器与设备 | 第55-56页 |
| 5.2 实验方法 | 第56-58页 |
| 5.2.1 EPS-PⅡ吸湿保湿性实验 | 第56页 |
| 5.2.2 EPS-PⅡ抗氧化性实验 | 第56-57页 |
| 5.2.3 EPS-PⅡ对Cu~(2+)、Pb~(2+)的吸附实验 | 第57-58页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第58-65页 |
| 5.3.1 EPS-PⅡ的吸湿保湿实验结果 | 第58-60页 |
| 5.3.2 EPS-PⅡ抗氧化性实验结果 | 第60-61页 |
| 5.3.3 EPS-PⅡ对Cu~(2+)、Pb~(2+)的吸附实验结果 | 第61-65页 |
| 5.4 本章小结 | 第65-67页 |
| 第6章 结论与展望 | 第67-71页 |
| 6.1 结论 | 第67-68页 |
| 6.1.1 菌株发酵条件优化 | 第67页 |
| 6.1.2 EPS-PⅡ多糖分离纯化 | 第67页 |
| 6.1.3 EPS-PⅡ纯化多糖的结构解析 | 第67-68页 |
| 6.1.4 EPS-PⅡ粗多糖功能研究 | 第68页 |
| 6.1.5 EPS-PⅡ构效关系的初步分析 | 第68页 |
| 6.2 展望 | 第68-71页 |
| 附录 | 第71-75页 |
| 参考文献 | 第75-81页 |
| 致谢 | 第81-83页 |
| 在学期间主要科研成果 | 第83页 |
| 一、发表学术论文 | 第83页 |
| 二、其它科研成果 | 第83页 |
