摘要 | 第1-10页 |
ABSTRACT | 第10-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-24页 |
1 植物多糖提取分离纯化的研究现状 | 第12-15页 |
·植物多糖的提取 | 第12-13页 |
·植物多糖的分离纯化 | 第13-15页 |
2 植物多糖结构的研究现状 | 第15-19页 |
·多糖的结构 | 第15-16页 |
·多糖一级结构的测定方法 | 第16-19页 |
3 植物多糖生物活性的研究现状 | 第19-22页 |
·多糖的免疫调节、抗肿瘤功能 | 第19-20页 |
·多糖的降血脂、降血糖功能 | 第20页 |
·多糖的抗突变、抗病毒功能 | 第20-21页 |
·多糖的清除自由基、抗氧化功能 | 第21页 |
·植物多糖对双歧杆菌的增殖作用 | 第21-22页 |
4 莲子的营养保健及研究现状 | 第22-23页 |
5 本项目研究的目的与意义 | 第23-24页 |
第二章 莲子可溶性多糖提取工艺的研究 | 第24-31页 |
1 材料与仪器 | 第24-25页 |
·材料与试剂 | 第24页 |
·主要仪器 | 第24-25页 |
2 方法 | 第25-26页 |
·莲子多糖的提取方法 | 第25页 |
·多糖含量测定方法 | 第25页 |
·单因素实验 | 第25页 |
·正交实验 | 第25页 |
·超声波强化提取莲子多糖的研究 | 第25页 |
·微波在莲子多糖提取中的应用 | 第25-26页 |
·数据分析 | 第26页 |
3 结果与分析 | 第26-30页 |
·多糖的测定 | 第26页 |
·料液比对莲子多糖提取率的影响 | 第26页 |
·浸提温度对莲子多糖提取率的影响 | 第26页 |
·浸提时间对莲子多糖提取率的影响 | 第26-27页 |
·浸提pH值对莲子多糖提取率的影响 | 第27页 |
·莲子多糖提取工艺优化的研究 | 第27-29页 |
·超声波强化提取莲子多糖的研究 | 第29页 |
·微波在莲子多糖提取中的应用 | 第29-30页 |
4 讨论 | 第30-31页 |
第三章 莲子多糖结构性质的研究 | 第31-45页 |
1 材料与仪器 | 第31-32页 |
·材料与试剂 | 第31页 |
·主要仪器 | 第31-32页 |
2 方法 | 第32-36页 |
·莲子多糖提取工艺流程 | 第32页 |
·莲子多糖的分离纯化 | 第32-33页 |
·莲子多糖的纯度鉴定 | 第33页 |
·莲子多糖理化性质的测定 | 第33-34页 |
·莲子多糖结构的研究 | 第34-36页 |
3 结果与分析 | 第36-44页 |
·莲子多糖的分离纯化 | 第36-37页 |
·莲子多糖的纯度鉴定结果 | 第37-38页 |
·莲子多糖的理化性质 | 第38页 |
·莲子多糖结构的研究 | 第38-44页 |
4 讨论 | 第44-45页 |
第四章 莲子多糖抗氧化活性的研究 | 第45-50页 |
1 材料与仪器 | 第45-46页 |
·材料与试剂 | 第45页 |
·主要仪器 | 第45-46页 |
2 方法 | 第46-47页 |
·清除羟自由基能力的测定 | 第46页 |
·清除超氧阴离子自由基能力的测定 | 第46-47页 |
3 结果与讨论 | 第47-48页 |
·莲子多糖对羟自由基的清除作用 | 第47页 |
·莲子多糖对超氧阴离子自由基的清除作用 | 第47-48页 |
·茶多酚与莲子多糖抗氧化活性的比较 | 第48页 |
4 结论 | 第48-50页 |
第五章 莲子多糖对青春型双歧杆菌增殖效应的研究 | 第50-57页 |
1 材料与仪器 | 第50-51页 |
·材料与试剂 | 第50页 |
·主要仪器 | 第50-51页 |
2 方法 | 第51-52页 |
·培养基制备方法 | 第51页 |
·无菌0.9%生理盐水配制方法 | 第51页 |
·菌种活化方法 | 第51页 |
·菌悬液制备方法 | 第51页 |
·莲子多糖对双歧杆菌的增殖效应 | 第51-52页 |
3 结果与分析 | 第52-56页 |
·莲子多糖对双歧杆菌增殖效应的影响 | 第52-53页 |
·不同浓度的莲子多糖对双歧杆菌增殖效应的影响 | 第53-54页 |
·莲子多糖酸水解物对双歧杆菌增殖效应的影响 | 第54页 |
·莲子多糖对双歧杆菌生长曲线、对数期生长速率与世代时间的影响 | 第54-56页 |
4 结论 | 第56-57页 |
结论 | 第57-59页 |
参考文献 | 第59-64页 |
致谢 | 第64页 |