| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第15-27页 |
| 1.1 引言 | 第15页 |
| 1.2 多糖的研究进展 | 第15-21页 |
| 1.2.1 多糖的提取方法研究 | 第15-16页 |
| 1.2.2 多糖的分离纯化研究 | 第16-17页 |
| 1.2.3 多糖的结构鉴定研究 | 第17-18页 |
| 1.2.4 多糖的活性研究 | 第18-20页 |
| 1.2.4.1 免疫活性 | 第18-19页 |
| 1.2.4.2 抗肿瘤活性 | 第19页 |
| 1.2.4.3 抗氧化活性 | 第19-20页 |
| 1.2.4.4 其他 | 第20页 |
| 1.2.5 多糖的改性研究 | 第20-21页 |
| 1.2.6 多糖的应用研究 | 第21页 |
| 1.3 猴头菇的研究进展 | 第21-25页 |
| 1.3.1 猴头菇的概述 | 第21页 |
| 1.3.2 猴头菇的营养价值 | 第21-22页 |
| 1.3.3 猴头菇多糖的提取和分离纯化研究 | 第22页 |
| 1.3.4 猴头菇多糖的结构研究 | 第22-23页 |
| 1.3.5 猴头菇多糖的活性研究 | 第23-24页 |
| 1.3.5.1 免疫调节 | 第23页 |
| 1.3.5.2 护胃 | 第23页 |
| 1.3.5.3 抗肿瘤 | 第23-24页 |
| 1.3.5.4 其他 | 第24页 |
| 1.3.6 猴头菇多糖的改性研究 | 第24-25页 |
| 1.4 透明质酸酶的研究进展 | 第25页 |
| 1.5 本文研究意义及内容 | 第25-27页 |
| 1.5.1 研究目的及意义 | 第25-26页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第26-27页 |
| 第二章 利用响应面法优化猴头菇多糖的提取工艺研究 | 第27-42页 |
| 2.1 前言 | 第27页 |
| 2.2 材料试剂与设备 | 第27-28页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第27页 |
| 2.2.2 实验主要试剂 | 第27-28页 |
| 2.2.3 实验主要仪器设备 | 第28页 |
| 2.3 实验方法 | 第28-31页 |
| 2.3.1 猴头菇多糖的提取工艺 | 第28-29页 |
| 2.3.2 猴头菇多糖的超声提取单因素实验 | 第29页 |
| 2.3.2.1 超声功率的单因素实验 | 第29页 |
| 2.3.2.2 料液比的单因素实验 | 第29页 |
| 2.3.2.3 超声时间的单因素实验 | 第29页 |
| 2.3.2.4 超声温度的单因素实验 | 第29页 |
| 2.3.3 猴头菇多糖的响应面法优化超声辅助提取法 | 第29页 |
| 2.3.4 猴头菇多糖热水浸提正交实验 | 第29-30页 |
| 2.3.5 响应面优化的超声辅助提取法与热水浸提法的比较 | 第30页 |
| 2.3.6 猴头菇多糖含量的测定 | 第30-31页 |
| 2.3.6.1 总糖含量的测定 | 第30页 |
| 2.3.6.2 还原糖含量的测定 | 第30-31页 |
| 2.3.6.3 猴头菇多糖得率的计算 | 第31页 |
| 2.3.7 数据统计分析 | 第31页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第31-40页 |
| 2.4.1 超声提取猴头菇多糖的单因素实验 | 第31-33页 |
| 2.4.2 响应面法优化猴头菇多糖的超声提取条件 | 第33-38页 |
| 2.4.2.1 响应面法优化猴头菇多糖提取工艺的结果 | 第33-36页 |
| 2.4.2.2 响应曲面的分析 | 第36-38页 |
| 2.4.3 热水浸提的正交实验 | 第38-40页 |
| 2.4.4 优化后的超声辅助提取法与热水浸提法的比较 | 第40页 |
| 2.5 本章小结 | 第40-42页 |
| 第三章 猴头菇多糖的分离纯化研究 | 第42-60页 |
| 3.1 前言 | 第42-43页 |
| 3.2 实验试剂与设备 | 第43-44页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第43页 |
| 3.2.2 实验主要试剂 | 第43-44页 |
| 3.2.3 实验主要仪器设备 | 第44页 |
| 3.3 实验方法 | 第44-48页 |
| 3.3.1 壳聚糖法脱蛋白工艺的研究 | 第44-45页 |
| 3.3.1.1 料液比对壳聚糖法脱蛋白的影响 | 第44-45页 |
| 3.3.1.2 pH值对壳聚糖法脱蛋白的影响 | 第45页 |
| 3.3.1.3 静置时间对壳聚糖法脱蛋白的影响 | 第45页 |
| 3.3.2 Sevage法脱蛋白 | 第45页 |
| 3.3.3 蛋白质去除率、多糖损失率及壳聚糖残留率的测定 | 第45-46页 |
| 3.3.3.1 蛋白质去除率的测定 | 第45-46页 |
| 3.3.3.2 多糖损失率的测定 | 第46页 |
| 3.3.3.3 壳聚糖残留率的测定 | 第46页 |
| 3.3.4 猴头菇粗多糖的制备 | 第46-47页 |
| 3.3.5 猴头菇粗多糖的DEAE Sepharose Fast Flow柱层析分离纯化 | 第47页 |
| 3.3.6 猴头菇多糖纯度分析 | 第47-48页 |
| 3.3.6.1 Sephadex G-75 柱层析 | 第47页 |
| 3.3.6.2 紫外扫描分析 | 第47页 |
| 3.3.6.3 碘-碘化钾反应 | 第47-48页 |
| 3.3.6.4 高效凝胶渗透色谱分析 | 第48页 |
| 3.3.7 数据统计分析 | 第48页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第48-58页 |
| 3.4.1 壳聚糖法脱蛋白 | 第48-52页 |
| 3.4.1.1 料液比对壳聚糖法脱蛋白的影响 | 第48-49页 |
| 3.4.1.2 pH值对壳聚糖法脱蛋白的影响 | 第49-50页 |
| 3.4.1.3 静置时间对壳聚糖法脱蛋白的影响 | 第50-51页 |
| 3.4.1.4 壳聚糖法脱蛋白最佳方案的确定 | 第51-52页 |
| 3.4.2 Sevage法脱蛋白 | 第52-53页 |
| 3.4.3 壳聚糖法与Sevage法脱蛋白的比较 | 第53-54页 |
| 3.4.4 猴头菇粗多糖的DEAE Sepharose Fast Flow柱层析分离纯化 | 第54-55页 |
| 3.4.5 猴头菇多糖的纯度分析 | 第55-58页 |
| 3.4.5.1 Sephadex G-75 柱层析洗脱曲线 | 第55页 |
| 3.4.5.2 紫外扫描分析 | 第55-56页 |
| 3.4.5.3 碘-碘化钾反应 | 第56-57页 |
| 3.4.5.4 高效凝胶渗透色谱分析（HPGPC） | 第57-58页 |
| 3.5 本章小结 | 第58-60页 |
| 第四章 猴头菇多糖的结构表征研究 | 第60-84页 |
| 4.1 前言 | 第60页 |
| 4.2 材料与设备 | 第60-62页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第60-61页 |
| 4.2.2 实验主要试剂 | 第61页 |
| 4.2.3 实验主要仪器设备 | 第61-62页 |
| 4.3 实验方法 | 第62-65页 |
| 4.3.1 红外光谱分析（FT-IR） | 第62页 |
| 4.3.2 单糖组成分析 | 第62-63页 |
| 4.3.2.1 多糖样品的水解 | 第62页 |
| 4.3.2.2 样品的衍生化 | 第62-63页 |
| 4.3.2.3 气相色谱仪的检测条件（GC） | 第63页 |
| 4.3.3 高碘酸氧化和Smith降解分析 | 第63-64页 |
| 4.3.3.1 高碘酸钠标准曲线的绘制 | 第63页 |
| 4.3.3.2 样品的高碘酸氧化 | 第63-64页 |
| 4.3.3.3 Smith降解 | 第64页 |
| 4.3.3.4 样品的水解及衍生化 | 第64页 |
| 4.3.3.5 气相色谱仪的检测条件 | 第64页 |
| 4.3.4 核磁共振分析（NMR） | 第64页 |
| 4.3.5 X射线衍射分析（XRD） | 第64页 |
| 4.3.6 热重分析（TGA） | 第64-65页 |
| 4.3.7 刚果红分析 | 第65页 |
| 4.3.8 数据统计分析 | 第65页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第65-82页 |
| 4.4.1 红外分析 | 第65-66页 |
| 4.4.2 单糖组成分析 | 第66-69页 |
| 4.4.3 高碘酸氧化分析 | 第69-71页 |
| 4.4.4 Smith降解分析 | 第71-73页 |
| 4.4.5 核磁共振分析（NMR） | 第73-79页 |
| 4.4.5.1 HEP-Ⅰ的核磁共振分析 | 第73-75页 |
| 4.4.5.2 HEP-Ⅱ的核磁共振分析 | 第75-78页 |
| 4.4.5.3 HEP-Ⅰ与HEP-Ⅱ的结构比较 | 第78-79页 |
| 4.4.6 X射线衍射分析（XRD） | 第79-80页 |
| 4.4.7 热重分析（TGA） | 第80-81页 |
| 4.4.8 刚果红分析 | 第81-82页 |
| 4.5 本章小结 | 第82-84页 |
| 第五章 猴头菇多糖对透明质酸酶活性的抑制作用研究 | 第84-98页 |
| 5.1 前言 | 第84页 |
| 5.2 实验试剂与设备 | 第84-85页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第84-85页 |
| 5.2.2 实验试剂 | 第85页 |
| 5.2.3 实验主要仪器设备 | 第85页 |
| 5.3 实验方法 | 第85-87页 |
| 5.3.1 猴头菇多糖对透明质酸酶抑制活性的测定 | 第85-86页 |
| 5.3.2 猴头菇多糖对透明质酸酶的抑制类型判断 | 第86页 |
| 5.3.3 猴头菇多糖抑制透明质酸酶活性的圆二色光谱分析 | 第86-87页 |
| 5.3.4 透明质酸酶的二级结构变化分析 | 第87页 |
| 5.3.5 猴头菇多糖抑制透明质酸酶活性的荧光光谱分析 | 第87页 |
| 5.3.6 数据统计分析 | 第87页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第87-97页 |
| 5.4.1 猴头菇多糖对透明质酸酶的抑制作用 | 第87-89页 |
| 5.4.2 猴头菇多糖对透明质酸酶的抑制类型判断 | 第89-91页 |
| 5.4.2.1 HEP-Ⅰ对透明质酸酶的抑制类型 | 第89-90页 |
| 5.4.2.2 HEP-Ⅱ对透明质酸酶的抑制类型 | 第90页 |
| 5.4.2.3 HEP-Ⅰ和HEP-Ⅱ对透明质酸酶的抑制类型的比较 | 第90-91页 |
| 5.4.3 猴头菇多糖抑制下透明质酸酶活性的圆二色光谱分析（CD） | 第91-93页 |
| 5.4.3.1 HEP-Ⅰ与透明质酸酶相互作用的圆二色光谱 | 第91-92页 |
| 5.4.3.2 HEP-Ⅱ与透明质酸酶相互作用的圆二色光谱 | 第92-93页 |
| 5.4.3.3 HEP-Ⅰ和HEP-Ⅱ与透明质酸酶相互作用的圆二色光谱比较 | 第93页 |
| 5.4.4 猴头菇多糖对透明质酸酶二级结构的影响 | 第93-95页 |
| 5.4.5 猴头菇多糖抑制透明质酸酶活性的荧光光谱分析 | 第95-97页 |
| 5.4.5.1 HEP-Ⅰ与透明质酸酶相互作用的荧光光谱 | 第95-96页 |
| 5.4.5.2 HEP-Ⅱ与透明质酸酶相互作用的荧光光谱 | 第96页 |
| 5.4.5.3 HEP-Ⅰ和HEP-Ⅱ与透明质酸酶相互作用的荧光光谱比较 | 第96-97页 |
| 5.5 本章小结 | 第97-98页 |
| 结论与展望 | 第98-102页 |
| 一、结论 | 第98-99页 |
| 二、论文创新点 | 第99-100页 |
| 三、展望 | 第100-102页 |
| 参考文献 | 第102-113页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第113-114页 |
| 致谢 | 第114-115页 |
| 附件 | 第115页 |
