| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 1 引言 | 第12-22页 |
| 1.1 绪论 | 第12页 |
| 1.2 微藻制备生物活性物质 | 第12-16页 |
| 1.2.1 多不饱和脂肪酸 | 第12-13页 |
| 1.2.2 微藻多糖 | 第13-14页 |
| 1.2.3 色素 | 第14-15页 |
| 1.2.4 活性肽 | 第15-16页 |
| 1.3 微藻制备生物柴油 | 第16-17页 |
| 1.4 微藻油脂提取方法 | 第17-18页 |
| 1.5 DHA的分离纯化方法 | 第18-19页 |
| 1.6 高速逆流色谱技术及其分离脂肪酸应用 | 第19-20页 |
| 1.7 裂壶藻的研究现状 | 第20页 |
| 1.8 研究目的和意义 | 第20-21页 |
| 1.9 本课题主要研究内容 | 第21-22页 |
| 2 响应面优化水酶法提取裂壶藻油 | 第22-39页 |
| 2.1 前言 | 第22页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第22-23页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第22-23页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第23页 |
| 2.3 研究方法 | 第23-26页 |
| 2.3.1 裂壶藻的培养及收集 | 第23-24页 |
| 2.3.2 油脂提取工艺 | 第24页 |
| 2.3.3 酶种类的筛选 | 第24-25页 |
| 2.3.4 单因素条件对提油率的影响 | 第25页 |
| 2.3.5 响应面对碱性蛋白酶提取条件的优化 | 第25页 |
| 2.3.6 结果计算 | 第25页 |
| 2.3.7 裂壶藻油脂肪酸组成的分析 | 第25-26页 |
| 2.3.7.1 脂肪酸的甲酯化 | 第25-26页 |
| 2.3.7.2 脂肪酸的GC-MS分析 | 第26页 |
| 2.3.8 数据处理 | 第26页 |
| 2.4 结果与分析 | 第26-37页 |
| 2.4.1 酶种类筛选结果的分析 | 第26-27页 |
| 2.4.2 单因素实验结果的分析 | 第27-33页 |
| 2.4.2.1 料液比对清油率的影响 | 第27-28页 |
| 2.4.2.2 中性蛋白酶添加量对清油得率的影响 | 第28页 |
| 2.4.2.3 中性蛋白酶酶解时间对清油得率的影响 | 第28-29页 |
| 2.4.2.4 中性蛋白酶酶解温度对清油得率的影响 | 第29-30页 |
| 2.4.2.5 碱性蛋白添加量对清油得率的影响 | 第30-31页 |
| 2.4.2.6 碱性蛋白酶酶解时间对清油得率的影响 | 第31页 |
| 2.4.2.7 碱性蛋白酶酶解pH对清油得率的影响 | 第31-32页 |
| 2.4.2.8 碱性蛋白酶酶解温度对清油得率的影响 | 第32-33页 |
| 2.4.3 响应面分析 | 第33-36页 |
| 2.4.3.1 响应面实验结果与分析 | 第33-35页 |
| 2.4.3.2 响应面分析及优化 | 第35-36页 |
| 2.4.4 裂壶藻油脂的脂肪酸组成分析 | 第36-37页 |
| 2.5 本章小结 | 第37-39页 |
| 3 天然抗氧化剂对裂壶藻油脂的氧化稳定性影响的研究 | 第39-49页 |
| 3.1 前言 | 第39页 |
| 3.2 材料与设备 | 第39-40页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第39-40页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第40页 |
| 3.3 研究方法 | 第40-42页 |
| 3.3.1 油脂加速氧化实验 | 第40页 |
| 3.3.2 单一天然抗氧化剂对裂壶藻油氧化稳定性的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.3 复配天然抗氧化剂对裂壶藻油氧化稳定性的影响 | 第41页 |
| 3.3.4 裂壶藻油实验过程中DHA变化的分析 | 第41-42页 |
| 3.3.4.1 脂肪酸的甲酯化 | 第41-42页 |
| 3.3.4.2 脂肪酸的GC-MS分析 | 第42页 |
| 3.3.5 POV值的测定 | 第42页 |
| 3.3.6 DHA量的测定和换算 | 第42页 |
| 3.3.7 数据处理 | 第42页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第42-48页 |
| 3.4.1 空白对照组POV值的变化 | 第42-43页 |
| 3.4.2 单一天然抗氧化剂对裂壶藻油氧化稳定性的影响 | 第43-47页 |
| 3.4.2.1 没食子酸对裂壶藻油脂氧化稳定性的影响 | 第43-44页 |
| 3.4.2.2 维生素E对裂壶藻油脂氧化稳定性的影响 | 第44页 |
| 3.4.2.3 茶多酚对裂壶藻油脂氧化稳定性的影响 | 第44-45页 |
| 3.4.2.4 植酸对裂壶藻油脂氧化稳定性的影响 | 第45-46页 |
| 3.4.2.5 迷迭香酸对裂壶藻油脂氧化稳定性的影响 | 第46-47页 |
| 3.4.3 复配天然抗氧化剂对裂壶藻油脂氧化稳定性的影响 | 第47-48页 |
| 3.5 本章小结 | 第48-49页 |
| 4 高速逆流色谱分离纯化裂壶藻油脂中的DHA | 第49-65页 |
| 4.1 前言 | 第49页 |
| 4.2 材料与设备 | 第49-50页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第49-50页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第50页 |
| 4.3 研究方法 | 第50-53页 |
| 4.3.1 裂壶藻油脂的皂化 | 第50-51页 |
| 4.3.2 HSCCC溶剂体系的选择 | 第51页 |
| 4.3.3 HSCCC分离纯化DHA | 第51页 |
| 4.3.4 单因素条件对DHA纯度的影响 | 第51页 |
| 4.3.5 HSCCC分离条件的响应面分析 | 第51-52页 |
| 4.3.6 HPLC检测分析 | 第52页 |
| 4.3.7 脂肪酸的GC-MS分析 | 第52页 |
| 4.3.8 回收率的测定 | 第52-53页 |
| 4.3.9 数据处理 | 第53页 |
| 4.4 结果与分析 | 第53-64页 |
| 4.4.1 裂壶藻油脂的皂化及粗品检测 | 第53-54页 |
| 4.4.2 HSCCC溶剂体系的选择 | 第54页 |
| 4.4.3 单因素结果及分析 | 第54-57页 |
| 4.4.3.1 温度对DHA纯度的影响 | 第54-55页 |
| 4.4.3.2 流速对DHA纯度的影响 | 第55-56页 |
| 4.4.3.3 转速对DHA纯度的影响 | 第56页 |
| 4.4.3.4 进样量对DHA纯度的影响 | 第56-57页 |
| 4.4.4 响应面分析 | 第57-61页 |
| 4.4.4.1 响应面实验结果 | 第57-58页 |
| 4.4.4.2 回归方程及参数分析 | 第58-59页 |
| 4.4.4.3 响应面优化及分析 | 第59-61页 |
| 4.4.5 HSCCC分离纯化DHA | 第61-63页 |
| 4.4.5.1 第一步HSCCC分离纯化DHA | 第61-62页 |
| 4.4.5.2 第二步HSCCC分离纯化DHA | 第62-63页 |
| 4.4.6 分离获得DHA的GC-MS分析 | 第63-64页 |
| 4.5 本章小结 | 第64-65页 |
| 5 结论与展望 | 第65-67页 |
| 5.1 结论 | 第65-66页 |
| 5.2 展望 | 第66-67页 |
| 创新点 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 攻读硕士期间论文成果 | 第79-80页 |
| 基金项目支持 | 第80页 |
