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裂壶藻油脂提取及其DHA的分离纯化的研究

摘要第4-6页
Abstract第6-8页
1 引言第12-22页
    1.1 绪论第12页
    1.2 微藻制备生物活性物质第12-16页
        1.2.1 多不饱和脂肪酸第12-13页
        1.2.2 微藻多糖第13-14页
        1.2.3 色素第14-15页
        1.2.4 活性肽第15-16页
    1.3 微藻制备生物柴油第16-17页
    1.4 微藻油脂提取方法第17-18页
    1.5 DHA的分离纯化方法第18-19页
    1.6 高速逆流色谱技术及其分离脂肪酸应用第19-20页
    1.7 裂壶藻的研究现状第20页
    1.8 研究目的和意义第20-21页
    1.9 本课题主要研究内容第21-22页
2 响应面优化水酶法提取裂壶藻油第22-39页
    2.1 前言第22页
    2.2 材料与仪器第22-23页
        2.2.1 材料与试剂第22-23页
        2.2.2 仪器与设备第23页
    2.3 研究方法第23-26页
        2.3.1 裂壶藻的培养及收集第23-24页
        2.3.2 油脂提取工艺第24页
        2.3.3 酶种类的筛选第24-25页
        2.3.4 单因素条件对提油率的影响第25页
        2.3.5 响应面对碱性蛋白酶提取条件的优化第25页
        2.3.6 结果计算第25页
        2.3.7 裂壶藻油脂肪酸组成的分析第25-26页
            2.3.7.1 脂肪酸的甲酯化第25-26页
            2.3.7.2 脂肪酸的GC-MS分析第26页
        2.3.8 数据处理第26页
    2.4 结果与分析第26-37页
        2.4.1 酶种类筛选结果的分析第26-27页
        2.4.2 单因素实验结果的分析第27-33页
            2.4.2.1 料液比对清油率的影响第27-28页
            2.4.2.2 中性蛋白酶添加量对清油得率的影响第28页
            2.4.2.3 中性蛋白酶酶解时间对清油得率的影响第28-29页
            2.4.2.4 中性蛋白酶酶解温度对清油得率的影响第29-30页
            2.4.2.5 碱性蛋白添加量对清油得率的影响第30-31页
            2.4.2.6 碱性蛋白酶酶解时间对清油得率的影响第31页
            2.4.2.7 碱性蛋白酶酶解pH对清油得率的影响第31-32页
            2.4.2.8 碱性蛋白酶酶解温度对清油得率的影响第32-33页
        2.4.3 响应面分析第33-36页
            2.4.3.1 响应面实验结果与分析第33-35页
            2.4.3.2 响应面分析及优化第35-36页
        2.4.4 裂壶藻油脂的脂肪酸组成分析第36-37页
    2.5 本章小结第37-39页
3 天然抗氧化剂对裂壶藻油脂的氧化稳定性影响的研究第39-49页
    3.1 前言第39页
    3.2 材料与设备第39-40页
        3.2.1 材料与试剂第39-40页
        3.2.2 仪器与设备第40页
    3.3 研究方法第40-42页
        3.3.1 油脂加速氧化实验第40页
        3.3.2 单一天然抗氧化剂对裂壶藻油氧化稳定性的影响第40-41页
        3.3.3 复配天然抗氧化剂对裂壶藻油氧化稳定性的影响第41页
        3.3.4 裂壶藻油实验过程中DHA变化的分析第41-42页
            3.3.4.1 脂肪酸的甲酯化第41-42页
            3.3.4.2 脂肪酸的GC-MS分析第42页
        3.3.5 POV值的测定第42页
        3.3.6 DHA量的测定和换算第42页
        3.3.7 数据处理第42页
    3.4 结果与讨论第42-48页
        3.4.1 空白对照组POV值的变化第42-43页
        3.4.2 单一天然抗氧化剂对裂壶藻油氧化稳定性的影响第43-47页
            3.4.2.1 没食子酸对裂壶藻油脂氧化稳定性的影响第43-44页
            3.4.2.2 维生素E对裂壶藻油脂氧化稳定性的影响第44页
            3.4.2.3 茶多酚对裂壶藻油脂氧化稳定性的影响第44-45页
            3.4.2.4 植酸对裂壶藻油脂氧化稳定性的影响第45-46页
            3.4.2.5 迷迭香酸对裂壶藻油脂氧化稳定性的影响第46-47页
        3.4.3 复配天然抗氧化剂对裂壶藻油脂氧化稳定性的影响第47-48页
    3.5 本章小结第48-49页
4 高速逆流色谱分离纯化裂壶藻油脂中的DHA第49-65页
    4.1 前言第49页
    4.2 材料与设备第49-50页
        4.2.1 材料与试剂第49-50页
        4.2.2 仪器与设备第50页
    4.3 研究方法第50-53页
        4.3.1 裂壶藻油脂的皂化第50-51页
        4.3.2 HSCCC溶剂体系的选择第51页
        4.3.3 HSCCC分离纯化DHA第51页
        4.3.4 单因素条件对DHA纯度的影响第51页
        4.3.5 HSCCC分离条件的响应面分析第51-52页
        4.3.6 HPLC检测分析第52页
        4.3.7 脂肪酸的GC-MS分析第52页
        4.3.8 回收率的测定第52-53页
        4.3.9 数据处理第53页
    4.4 结果与分析第53-64页
        4.4.1 裂壶藻油脂的皂化及粗品检测第53-54页
        4.4.2 HSCCC溶剂体系的选择第54页
        4.4.3 单因素结果及分析第54-57页
            4.4.3.1 温度对DHA纯度的影响第54-55页
            4.4.3.2 流速对DHA纯度的影响第55-56页
            4.4.3.3 转速对DHA纯度的影响第56页
            4.4.3.4 进样量对DHA纯度的影响第56-57页
        4.4.4 响应面分析第57-61页
            4.4.4.1 响应面实验结果第57-58页
            4.4.4.2 回归方程及参数分析第58-59页
            4.4.4.3 响应面优化及分析第59-61页
        4.4.5 HSCCC分离纯化DHA第61-63页
            4.4.5.1 第一步HSCCC分离纯化DHA第61-62页
            4.4.5.2 第二步HSCCC分离纯化DHA第62-63页
        4.4.6 分离获得DHA的GC-MS分析第63-64页
    4.5 本章小结第64-65页
5 结论与展望第65-67页
    5.1 结论第65-66页
    5.2 展望第66-67页
创新点第67-68页
参考文献第68-78页
致谢第78-79页
攻读硕士期间论文成果第79-80页
基金项目支持第80页

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