| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 第一章 绪论 | 第15-25页 |
| 1.1 背景 | 第15-16页 |
| 1.2 生物标志物 | 第16页 |
| 1.3 转录水平 | 第16-21页 |
| 1.3.1 β_2 受体激动剂作用机理 | 第16-17页 |
| 1.3.2 mRNA | 第17-18页 |
| 1.3.3 miRNA | 第18-19页 |
| 1.3.4 lncRNA | 第19-20页 |
| 1.3.5 Urine marker | 第20-21页 |
| 1.4 代谢水平 | 第21-23页 |
| 1.4.1 光谱和色谱技术 | 第21-22页 |
| 1.4.2 核磁共振（NMR）技术 | 第22页 |
| 1.4.3 高分辨率色谱-质谱联用技术 | 第22-23页 |
| 1.5 统计学分析 | 第23页 |
| 1.6 研究意义和主要内容 | 第23-25页 |
| 第二章 基于靶向转录组学检测β_2 受体激动剂方法的建立 | 第25-37页 |
| 2.1 前言 | 第25页 |
| 2.2 材料和方法 | 第25-27页 |
| 2.2.1 动物实验和样品采集 | 第25页 |
| 2.2.2 RNA提取 | 第25页 |
| 2.2.3 RNA反转录 | 第25-26页 |
| 2.2.4 目的基因的选择 | 第26页 |
| 2.2.5 引物设计与合成 | 第26-27页 |
| 2.2.6 荧光定量PCR | 第27页 |
| 2.2.7 数据处理 | 第27页 |
| 2.2.8 残留量测定 | 第27页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第27-36页 |
| 2.3.1 RNA完整性 | 第27-28页 |
| 2.3.2 qRT-PCR结果 | 第28-32页 |
| 2.3.3 样品残留结果及相关性分析 | 第32-36页 |
| 2.4 本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 结合非靶向转录组学检测β_2 受体激动剂方法的建立及优化 | 第37-48页 |
| 3.1 前言 | 第37页 |
| 3.2 材料和方法 | 第37-38页 |
| 3.2.1 动物实验和样品采集 | 第37页 |
| 3.2.2 RNA提取 | 第37页 |
| 3.2.3 RNA反转录 | 第37页 |
| 3.2.4 目的基因的选择 | 第37页 |
| 3.2.5 引物设计与合成 | 第37-38页 |
| 3.2.6 荧光定量PCR | 第38页 |
| 3.2.7 数据处理 | 第38页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第38-47页 |
| 3.3.1 RNA完整性 | 第38页 |
| 3.3.2 RNA测序质量评估 | 第38-39页 |
| 3.3.3 差异基因注释 | 第39页 |
| 3.3.4 目的基因选择 | 第39页 |
| 3.3.5 qRT-PCR结果 | 第39-41页 |
| 3.3.6 结合两种方法所选基因结果分析 | 第41-44页 |
| 3.3.7 基于VIP值筛选目的基因 | 第44-47页 |
| 3.4 本章小结 | 第47-48页 |
| 第四章 方法应用及验证 | 第48-53页 |
| 4.1 前言 | 第48页 |
| 4.2 材料和方法 | 第48-49页 |
| 4.2.1 样品采集 | 第48页 |
| 4.2.2 RNA提取 | 第48页 |
| 4.2.3 RNA反转录 | 第48页 |
| 4.2.4 目的基因的选择 | 第48页 |
| 4.2.5 引物设计与合成 | 第48页 |
| 4.2.6 荧光定量PCR | 第48页 |
| 4.2.7 数据处理 | 第48-49页 |
| 4.2.8 仪器验证 | 第49页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第49-52页 |
| 4.3.1 RNA完整性 | 第49页 |
| 4.3.2 qRT-PCR结果 | 第49-51页 |
| 4.3.3 仪器验证结果 | 第51-52页 |
| 4.4 本章小结 | 第52-53页 |
| 第五章 全文结论 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-62页 |
| 附录 | 第62-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 作者简历 | 第73页 |