摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第11-21页 |
1.1 研究背景 | 第11-12页 |
1.1.1 大豆、玉米及副产物的研究背景 | 第11-12页 |
1.1.2 生物活性肽的研究背景 | 第12页 |
1.2 研究进展 | 第12-18页 |
1.2.1 大豆肽、玉米肽及其复合肽的研究进展 | 第12-14页 |
1.2.2 生物活性肽的制备方法 | 第14页 |
1.2.3 生物活性肽的纯化方法 | 第14-17页 |
1.2.4 生物活性肽清除自由基的研究 | 第17-18页 |
1.2.5 生物活性肽的结构初探 | 第18页 |
1.3 本文研究目的和意义 | 第18-19页 |
1.4 本文研究内容 | 第19页 |
1.5 本文技术路线图 | 第19-21页 |
第2章 枯草芽孢杆菌的培养液优化 | 第21-33页 |
2.1 材料与方法 | 第21-24页 |
2.1.1 试验材料 | 第21-22页 |
2.1.2 试验方法 | 第22-23页 |
2.1.3 试验设计及数据处理 | 第23-24页 |
2.2 结果与分析 | 第24-31页 |
2.2.1 L-酪氨酸的标准曲线绘制 | 第24页 |
2.2.2 不同种子培养液的比较 | 第24-25页 |
2.2.3 磷酸盐的选择 | 第25页 |
2.2.4 枯草芽孢杆菌的酶活力曲线绘制 | 第25-26页 |
2.2.5 Plackett-Burman 及最陡爬坡试验 | 第26-28页 |
2.2.6 响应面优化试验结果及验证 | 第28-30页 |
2.2.7 验证试验 | 第30-31页 |
2.3 本章小结 | 第31-33页 |
第3章 大豆玉米复合肽液态发酵工艺优化 | 第33-49页 |
3.1 材料与方法 | 第33-36页 |
3.1.1 材料与试剂 | 第33页 |
3.1.2 仪器与设备 | 第33页 |
3.1.3 种子菌悬液的制备 | 第33-34页 |
3.1.4 试验方法 | 第34页 |
3.1.5 试验方案 | 第34-35页 |
3.1.6 基质辅助激光解析串联飞行时间质谱的测定 | 第35-36页 |
3.2 结果与分析 | 第36-47页 |
3.2.1 杆菌肽的标准曲线 | 第36页 |
3.2.2 单因素试验结果 | 第36-39页 |
3.2.3 响应面法优化与分析 | 第39-45页 |
3.2.4 验证试验 | 第45页 |
3.2.5 大豆肽、玉米肽、大豆玉米复合肽比较 | 第45-46页 |
3.2.6 基质辅助激光解析串联飞行时间质谱的分析 | 第46-47页 |
3.3 本章小结 | 第47-49页 |
第4章 大豆玉米复合肽的分离纯化及分子量初探 | 第49-65页 |
4.1 材料和方法 | 第49-54页 |
4.1.1 材料与试剂 | 第49页 |
4.1.2 仪器和设备 | 第49-50页 |
4.1.3 分离纯化的试验方法 | 第50-51页 |
4.1.4 分离纯化的试验方案 | 第51-52页 |
4.1.5 分离纯化试验设计 | 第52页 |
4.1.6 Tricine-SDS-PAGE 电泳试验设计 | 第52-54页 |
4.2 结果与分析 | 第54-63页 |
4.2.1 考马斯亮蓝 G250 的标准曲线 | 第54页 |
4.2.2 静态吸附与解吸条件对大孔吸附树脂的影响 | 第54-58页 |
4.2.3 动态解吸条件对大孔吸附树脂的影响 | 第58-61页 |
4.2.4 Tricine-SDS-PAGE 电泳 | 第61-63页 |
4.3 本章小结 | 第63-65页 |
第5章 大豆玉米复合肽的活性研究 | 第65-75页 |
5.1 材料与方法 | 第65-68页 |
5.1.1 材料与试剂 | 第65页 |
5.1.2 仪器和设备 | 第65页 |
5.1.3 试验方法 | 第65-67页 |
5.1.4 试验方案 | 第67-68页 |
5.2 结果与分析 | 第68-74页 |
5.2.1 不同浓度抗坏血酸溶液的抗氧化活性 | 第68页 |
5.2.2 大豆玉米复合肽的抗氧化活性研究 | 第68-71页 |
5.2.3 大豆玉米复合肽对亚硝酸盐清除效果的工艺优化 | 第71-74页 |
5.3 本章小结 | 第74-75页 |
第6章 结论 | 第75-77页 |
参考文献 | 第77-87页 |
附录 | 第87-89页 |
作者简介及科研成果 | 第89-91页 |
致谢 | 第91页 |