摘要 | 第4-5页 |
abstract | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第10-25页 |
1.1 影响丙烯酰胺形成的几个因素 | 第10-11页 |
1.1.1 pH | 第10页 |
1.1.2 加热温度和加热时间 | 第10-11页 |
1.1.3 含水量 | 第11页 |
1.2 丙烯酰胺的抑制方法 | 第11-17页 |
1.2.1 添加物对丙烯酰胺的抑制 | 第11-15页 |
1.2.1.1 抗氧化剂 | 第11-13页 |
1.2.1.2 植物提取物 | 第13-14页 |
1.2.1.3 天冬酰胺酶 | 第14页 |
1.2.1.4 氨基酸 | 第14-15页 |
1.2.1.5 金属离子 | 第15页 |
1.2.2 微生物发酵对丙烯酰胺的抑制 | 第15-17页 |
1.3 检测方法 | 第17-18页 |
1.3.1 液相色谱及液质联用 | 第17页 |
1.3.2 气相色谱及气质联用 | 第17-18页 |
1.4 新型检测方法 | 第18-23页 |
1.4.1 毛细管电泳法 | 第18页 |
1.4.2 酶联免疫吸附试验法(ELISA) | 第18-20页 |
1.4.3 超分子识别法 | 第20页 |
1.4.4 纳米生物传感法 | 第20-23页 |
1.4.4.1 电化学生物传感方法 | 第20-22页 |
1.4.4.2 荧光传感方法 | 第22-23页 |
1.5 本论文的构思与技术路线 | 第23-25页 |
第二章 果汁发酵物对丙烯酰胺形成的影响 | 第25-40页 |
2.1 试验材料与仪器 | 第25-26页 |
2.1.1 试验材料与试剂 | 第25页 |
2.1.2 试验设备与仪器 | 第25-26页 |
2.2 试验方法 | 第26-28页 |
2.2.1 果汁的干酪乳杆菌发酵 | 第26页 |
2.2.2 果汁中活菌数和理化指标的测定 | 第26-27页 |
2.2.2.1 活菌数的计数 | 第26-27页 |
2.2.2.2 总酸度的测定 | 第27页 |
2.2.2.3 还原糖含量的测定 | 第27页 |
2.2.2.4 总酚含量的测定 | 第27页 |
2.2.2.5 抗氧化性的测定 | 第27页 |
2.2.3 发酵果汁的干燥 | 第27页 |
2.2.4 葡萄糖-天冬酰胺模型的建立 | 第27页 |
2.2.5 饼干食物模型的建立 | 第27-28页 |
2.2.6 丙烯酰胺含量的检测 | 第28页 |
2.3 结果与讨论 | 第28-39页 |
2.3.1 干酪乳杆菌在果汁中生长最适pH值的考察 | 第28-29页 |
2.3.2 发酵过程果汁中干酪乳杆菌活菌数的变化 | 第29-30页 |
2.3.3 干酪乳杆菌对果汁的理化指标影响 | 第30-34页 |
2.3.4 果汁发酵物对葡萄糖-天冬酰胺模型中丙烯酰胺形成的影响 | 第34-37页 |
2.3.5 果汁发酵物对食物模型中丙烯酰胺形成的影响 | 第37-39页 |
2.4 本章小结 | 第39-40页 |
第三章 基于金纳米颗粒团聚比色法检测丙烯酰胺的新方法研究 | 第40-55页 |
3.1 试验材料与仪器 | 第41页 |
3.1.1 试验材料与试剂 | 第41页 |
3.1.2 试验设备与仪器 | 第41页 |
3.2 试验方法 | 第41-43页 |
3.2.1 AA-PEG-AuNPs复合物的制备 | 第41页 |
3.2.1.1 金纳米颗粒的制备 | 第41页 |
3.2.1.2 丙烯酰胺-聚二乙醇-巯基修饰金纳米颗粒 | 第41页 |
3.2.2 比色图片的采集 | 第41-42页 |
3.2.3 AA-PEG-AuNPs复合物的团聚 | 第42页 |
3.2.4 丙烯酰胺与AA-PEG-AuNPs复合物的团聚 | 第42页 |
3.2.5 试验条件的优化 | 第42页 |
3.2.6 丙烯酰胺的检测 | 第42-43页 |
3.2.6.1 比色检测(紫外分光光度计检测) | 第42-43页 |
3.2.6.2 其他方法检测 | 第43页 |
3.2.7 选择性试验 | 第43页 |
3.2.8 回收率试验 | 第43页 |
3.3 结果与讨论 | 第43-52页 |
3.3.1 原理示意图 | 第43-44页 |
3.3.2 优化条件 | 第44-47页 |
3.3.3 丙烯酰胺的标准曲线 | 第47-50页 |
3.3.4 选择性试验 | 第50-51页 |
3.3.5 回收率 | 第51-52页 |
3.3.6 与其他方法的比较 | 第52页 |
3.4 本章小结 | 第52-55页 |
参考文献 | 第55-70页 |
致谢 | 第70-72页 |
在校期间发表论文情况及作者简介 | 第72-73页 |