摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-8页 |
第一章 绪论 | 第14-36页 |
1.1 茶多酚的简介 | 第14-18页 |
1.1.1 茶多酚的理化性质 | 第15页 |
1.1.2 茶多酚的功能 | 第15-16页 |
1.1.3 茶多酚的检测方法 | 第16-18页 |
1.2 碳量子点的简介 | 第18-19页 |
1.3 CQDs的合成 | 第19-27页 |
1.3.1 Top-down方法 | 第20-23页 |
1.3.2 Bottom-up方法 | 第23-27页 |
1.4 CQDs的应用 | 第27-31页 |
1.4.1 生物成像 | 第28-29页 |
1.4.2 光催化 | 第29-30页 |
1.4.3 分析检测(传感器) | 第30-31页 |
1.5 本文立题依据、目的、意义及研究内容 | 第31-36页 |
1.5.1 立题依据、目的及意义 | 第31-34页 |
1.5.2 主要研究内容 | 第34-35页 |
1.5.3 技术路线 | 第35-36页 |
第二章 高通量微波消解/萃取法合成碳量子点的研究 | 第36-47页 |
2.1 引言 | 第36页 |
2.2 材料与设备 | 第36-37页 |
2.2.1 材料与试剂 | 第36-37页 |
2.2.2 仪器与设备 | 第37页 |
2.3 实验方法 | 第37-39页 |
2.3.1 高通量微波消解/萃取法制备碳量子点 | 第37-38页 |
2.3.1.1 不同结构碳源合成碳量子点 | 第37页 |
2.3.1.2 不同碳氮源摩尔比例合成碳量子点 | 第37页 |
2.3.1.3 不同反应温度合成碳量子点 | 第37-38页 |
2.3.1.4 不同反应功率合成碳量子点 | 第38页 |
2.3.1.5 不同反应时间合成碳量子点 | 第38页 |
2.3.2 传统水热反应釜法制备碳量子点 | 第38页 |
2.3.3 碳量子点荧光表征及相对量子产率计算方法 | 第38-39页 |
2.3.4 数据分析 | 第39页 |
2.4 结果与讨论 | 第39-45页 |
2.4.1 碳源结构对碳量子点发光性能的影响 | 第39-40页 |
2.4.2 碳氮源摩尔比例对碳量子点发光性能的影响 | 第40-41页 |
2.4.3 反应温度对碳量子点发光性能的影响 | 第41-42页 |
2.4.4 反应功率对碳量子点发光性能的影响 | 第42-43页 |
2.4.5 反应时间对碳量子点发光性能的影响 | 第43-44页 |
2.4.6 本研究新型微波法与传统水热法的比较 | 第44-45页 |
2.5 本章小结 | 第45-47页 |
第三章 高通量微波消解/萃取法合成碳量子点的性质研究 | 第47-55页 |
3.1 引言 | 第47页 |
3.2 材料与设备 | 第47-48页 |
3.2.1 材料与试剂 | 第47页 |
3.2.2 仪器与设备 | 第47-48页 |
3.3 试验方法 | 第48-49页 |
3.3.1 碳量子点的制备 | 第48页 |
3.3.2 紫外-可见光吸收光谱表征方法 | 第48页 |
3.3.3 荧光光谱表征方法 | 第48页 |
3.3.4 透射电子显微镜(TEM)表征方法 | 第48页 |
3.3.5 傅里叶近红外光谱(FTIR)表征方法 | 第48页 |
3.3.6 pH对碳量子点发光性能的影响 | 第48页 |
3.3.7 不同储藏条件对碳量子点发光性能的影响 | 第48-49页 |
3.3.8 碳量子点的重复性实验 | 第49页 |
3.4 结果与讨论 | 第49-54页 |
3.4.1 碳量子点的紫外-可见光吸收和荧光性能 | 第49-50页 |
3.4.2 碳量子点的微观结构 | 第50-51页 |
3.4.3 pH对碳量子点发光性能的影响 | 第51-52页 |
3.4.4 不同储藏条件对碳量子点发光性能的影响 | 第52-53页 |
3.4.5 碳量子点的重复性 | 第53-54页 |
3.5 本章小结 | 第54-55页 |
第四章 碳量子点荧光探针的淬灭快速感知EGCG及其促氧化作用的研究 | 第55-66页 |
4.1 引言 | 第55页 |
4.2 材料与设备 | 第55-56页 |
4.2.1 材料与试剂 | 第55-56页 |
4.2.2 仪器与设备 | 第56页 |
4.3 试验方法 | 第56-57页 |
4.3.1 反应时间对CQDs/Cu~(2+)荧光探针淬灭的影响 | 第56页 |
4.3.2 反应温度对CQDs/Cu~(2+)荧光探针的淬灭的影响 | 第56页 |
4.3.3 不同浓度EGCG对CQDs荧光探针淬灭的影响 | 第56页 |
4.3.4 不同浓度EGCG对CQDs/Cu~(2+)荧光探针淬灭的影响 | 第56页 |
4.3.5 EGCG和Cu~(2+)间的摩尔浓度比对碳量子点荧光探针淬灭的影响 | 第56-57页 |
4.3.6 DMSO或EDTA-2Na对碳量子点荧光的保护作用 | 第57页 |
4.4 结果与讨论 | 第57-65页 |
4.4.1 不同浓度EGCG对CQDs荧光探针淬灭的影响 | 第57-58页 |
4.4.2 EGCG对CQDs/Cu~(2+)荧光探针的淬灭作用 | 第58-59页 |
4.4.3 时间、温度对EGCG淬灭CQDs/Cu~(2+)荧光探针的影响 | 第59-60页 |
4.4.4 不同浓度EGCG对CQDs/Cu~(2+)荧光探针淬灭的影响 | 第60-61页 |
4.4.5 EGCG和Cu~(2+)间的摩尔浓度比对碳量子点荧光探针淬灭的影响 | 第61-63页 |
4.4.6 EGCG对CQDs/Cu~(2+)荧光探针淬灭的机理 | 第63-65页 |
4.5 本章小结 | 第65-66页 |
第五章 碳量子点荧光探针的淬灭快速检测茶叶中的茶多酚 | 第66-75页 |
5.1 引言 | 第66页 |
5.2 材料与设备 | 第66-67页 |
5.2.1 材料与试剂 | 第66-67页 |
5.2.2 仪器与设备 | 第67页 |
5.3 试验方法 | 第67-68页 |
5.3.1 CQDs荧光探针对TP的检测 | 第67页 |
5.3.2 CQDs/Cu~(2+)荧光探针对TP的检测 | 第67页 |
5.3.3 茶叶样品的处理 | 第67页 |
5.3.4 荧光分光光度法 | 第67-68页 |
5.3.5 茶叶样品中茶多酚国标检测法 | 第68页 |
5.4 结果与讨论 | 第68-74页 |
5.4.1 茶多酚的检测 | 第68-71页 |
5.4.2 检测的稳定性 | 第71-72页 |
5.4.3 检测茶多酚的选择性 | 第72-73页 |
5.4.4 茶叶样品中TP的加标回收实验 | 第73-74页 |
5.5 本章小结 | 第74-75页 |
结论与展望 | 第75-77页 |
一、结论 | 第75-76页 |
二、本论文主要创新点 | 第76页 |
三、展望 | 第76-77页 |
参考文献 | 第77-85页 |
攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第85-86页 |
致谢 | 第86-87页 |
附录 | 第87页 |