| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第1章 绪论 | 第14-34页 |
| 1.1 生物传感器 | 第14-19页 |
| 1.1.1 生物传感器的原理 | 第14页 |
| 1.1.2 生物传感器的分类和特点 | 第14-15页 |
| 1.1.3 光学生物传感器 | 第15-19页 |
| 1.2 纳米材料及其在生物传感器方面的应用 | 第19-29页 |
| 1.2.1 石墨烯 | 第19-22页 |
| 1.2.2 过渡金属二硫化物纳米材料 | 第22-24页 |
| 1.2.3 基于其它纳米材料的生物传感器 | 第24-29页 |
| 1.3 核酸分子信号放大技术 | 第29-32页 |
| 1.3.1 酶辅助的核酸信号放大技术 | 第29-31页 |
| 1.3.2 无酶参与的核酸信号放大技术 | 第31-32页 |
| 1.4 本研究论文的工作内容 | 第32-34页 |
| 第2章 基于氧化石墨烯和杂交链式反应用于碱基切除修复酶活性分析 | 第34-47页 |
| 2.1 前言 | 第34-35页 |
| 2.2 实验部分 | 第35-37页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第35-36页 |
| 2.2.2 UDG酶活性的荧光定量分析及其抑制剂测定 | 第36-37页 |
| 2.2.3 琼脂糖凝胶电泳分析 | 第37页 |
| 2.2.4 细胞培养及样品制备 | 第37页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第37-46页 |
| 2.3.1 实验设计原理 | 第37-38页 |
| 2.3.2 实验原理的验证 | 第38-39页 |
| 2.3.3 实验条件优化 | 第39-42页 |
| 2.3.4 UDG活性分析的灵敏度和选择性 | 第42-43页 |
| 2.3.5 UDG酶抑制剂的测定 | 第43-45页 |
| 2.3.6 复杂体系中UDG的测定 | 第45-46页 |
| 2.4 小结 | 第46-47页 |
| 第3章 基于DNA构象变换和氧化石墨烯的生物传感器用于p H的检测 | 第47-56页 |
| 3.1 前言 | 第47-48页 |
| 3.2 实验部分 | 第48-49页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第48页 |
| 3.2.2 不同p H的荧光分析 | 第48页 |
| 3.2.3 圆二光谱测定 | 第48-49页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第49-55页 |
| 3.3.1 实验设计原理 | 第49页 |
| 3.3.2 pH对荧光探针的影响 | 第49-50页 |
| 3.3.3 三链DNA结构的表征 | 第50-51页 |
| 3.3.4 实验原理的验证 | 第51-52页 |
| 3.3.5 实验条件优化 | 第52-54页 |
| 3.3.6 分析方法的响应性能研究 | 第54-55页 |
| 3.3.7 离子干扰实验 | 第55页 |
| 3.4 小结 | 第55-56页 |
| 第4章 基于石墨烯-血红素复合纳米材料的非标比色平台用于核酸和小分子的检测 | 第56-71页 |
| 4.1 前言 | 第56-57页 |
| 4.2 实验部分 | 第57-59页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第57页 |
| 4.2.2 GHs的制备与表征 | 第57-58页 |
| 4.2.3 GHs的过氧化物酶活性动力学研究 | 第58页 |
| 4.2.4 GHs对ss DNA的响应 | 第58页 |
| 4.2.5 GHs对单双链DNA的区分 | 第58页 |
| 4.2.6 DNA的检测步骤 | 第58-59页 |
| 4.2.7 可卡因的检测步骤 | 第59页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第59-69页 |
| 4.3.1 GHs的表征 | 第59-61页 |
| 4.3.2 GHs的过氧化物酶活性 | 第61-63页 |
| 4.3.3 GHs对ss DNA的响应以及对单双链的区分 | 第63页 |
| 4.3.4 GHs用于DNA的检测 | 第63-65页 |
| 4.3.5 GHs用于DNA检测的选择性研究 | 第65-66页 |
| 4.3.6 GHs用于可卡因的检测 | 第66-67页 |
| 4.3.7 GHs用于可卡因检测的灵敏度 | 第67-68页 |
| 4.3.8 GHs用于可卡因检测的选择性研究 | 第68-69页 |
| 4.4 小结 | 第69-71页 |
| 第5章 基于甲氧檗因和poly(A)折叠的非标记荧光方法检测micro RNA | 第71-79页 |
| 5.1 前言 | 第71-72页 |
| 5.2 实验部分 | 第72-73页 |
| 5.2.1 试剂与仪器 | 第72-73页 |
| 5.2.2 Mi RNA的检测 | 第73页 |
| 5.2.3 琼脂糖凝胶电泳分析 | 第73页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第73-78页 |
| 5.3.1 实验设计原理 | 第73-74页 |
| 5.3.2 实验原理的验证 | 第74-75页 |
| 5.3.3 实验条件优化 | 第75-76页 |
| 5.3.4 分析方法的响应性能研究 | 第76-77页 |
| 5.3.5 分析方法的特异性研究 | 第77-78页 |
| 5.4 小结 | 第78-79页 |
| 第6章 基于二硫化钨和双链特异性核酸酶信号放大方法用于micro RNA的高灵敏检测 | 第79-92页 |
| 6.1 前言 | 第79-80页 |
| 6.2 实验部分 | 第80-82页 |
| 6.2.1 试剂与仪器 | 第80-81页 |
| 6.2.2 MiRNA的荧光定量分析 | 第81页 |
| 6.2.3 琼脂糖凝胶电泳分析 | 第81页 |
| 6.2.4 细胞的培养 | 第81页 |
| 6.2.5 荧光定量PCR检测mi RNA | 第81-82页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第82-91页 |
| 6.3.1 实验设计原理 | 第82-83页 |
| 6.3.2 WS_2纳米片与GO荧光淬灭效率对比 | 第83页 |
| 6.3.3 WS_2纳米片对不同长度的寡核苷酸结合力大小的考察 | 第83-84页 |
| 6.3.4 实验原理的验证 | 第84-87页 |
| 6.3.5 实验条件优化 | 第87页 |
| 6.3.6 分析方法的响应性能研究 | 第87-88页 |
| 6.3.7 分析方法的特异性研究 | 第88-89页 |
| 6.3.8 复杂体系中mi RNA的测定 | 第89-91页 |
| 6.4 小结 | 第91-92页 |
| 结论 | 第92-94页 |
| 参考文献 | 第94-112页 |
| 附录A 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第112-114页 |
| 致谢 | 第114页 |
