| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-7页 |
| 第1章 引言 | 第12-19页 |
| 1.1 前言 | 第12页 |
| 1.1.1 单增李斯特菌简介 | 第12页 |
| 1.1.2 金黄色葡萄球菌简介 | 第12页 |
| 1.2 磁分离技术简介 | 第12-13页 |
| 1.3 万古霉素简介 | 第13-15页 |
| 1.3.1 万古霉素对革兰氏阳性菌的特异性识别作用 | 第13-14页 |
| 1.3.2 万古霉素在磁性纳米粒子表面的修饰方式 | 第14-15页 |
| 1.4 基于万古霉素的磁分离在食源性致病菌检测中的应用 | 第15-17页 |
| 1.4.1 万古霉素-磁性纳米粒子结合化学发光法 | 第15-16页 |
| 1.4.2 万古霉素-磁性纳米粒子结合电致化学发光法 | 第16页 |
| 1.4.3 万古霉素-磁性纳米粒子结合ATP-生物发光法 | 第16页 |
| 1.4.4 万古霉素-磁性纳米粒子结合qPCR | 第16-17页 |
| 1.5 万古霉素修饰的其他载体在致病菌检测中的应用 | 第17页 |
| 1.6 研究内容 | 第17-18页 |
| 1.7 研究目的和意义 | 第18-19页 |
| 第2章 万古霉素修饰的聚乙二醇化磁珠结合PCR检测单增李斯特菌 | 第19-34页 |
| 2.1 前言 | 第19-21页 |
| 2.2 试剂与材料 | 第21-22页 |
| 2.2.1 主要实验材料 | 第21页 |
| 2.2.2 主要仪器设备 | 第21页 |
| 2.2.3 主要实验试剂的配制 | 第21-22页 |
| 2.3 实验方法 | 第22-26页 |
| 2.3.1 菌株的培养 | 第22页 |
| 2.3.2 Van-PMs的合成 | 第22-23页 |
| 2.3.3 材料表征 | 第23页 |
| 2.3.4 Van-PMs分离单增李斯特菌特异性验证 | 第23-24页 |
| 2.3.5 Van-PMs分离单增李斯特菌条件优化 | 第24-25页 |
| 2.3.6 Van-PMs结合PCR检测单增李斯特菌 | 第25-26页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第26-32页 |
| 2.4.1 材料表征 | 第26-28页 |
| 2.4.2 Van-PMs对单增李斯特菌的特异性验证 | 第28-29页 |
| 2.4.3 Van-PMs分离单增李斯特菌的条件优化 | 第29-31页 |
| 2.4.4 Van-PMs在最适条件对单增李斯特菌的分离 | 第31页 |
| 2.4.5 Van-PMs-PCR对PBS中单增李斯特菌的检测 | 第31-32页 |
| 2.4.6 Van-PMs-PCR对生菜样本中单增李斯特菌的检测 | 第32页 |
| 2.5 小结 | 第32-34页 |
| 第3章 万古霉素修饰的牛血清蛋白化磁珠结合流式细胞术检测金黄色葡萄球菌 | 第34-49页 |
| 3.1 前言 | 第34-37页 |
| 3.2 试剂与材料 | 第37-38页 |
| 3.2.1 主要实验材料 | 第37页 |
| 3.2.2 主要仪器设备 | 第37页 |
| 3.2.3 主要实验试剂的配制 | 第37-38页 |
| 3.3 实验方法 | 第38-41页 |
| 3.3.1 菌株的培养 | 第38页 |
| 3.3.2 Van-BSA-MBs的合成 | 第38页 |
| 3.3.3 材料表征 | 第38页 |
| 3.3.4 Van-BSA-MBs对金黄色葡萄球菌的特异性验证 | 第38-39页 |
| 3.3.5 Van-BSA-MBs分离金黄色葡萄球菌条件优化 | 第39-41页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第41-47页 |
| 3.4.1 材料表征 | 第41-43页 |
| 3.4.2 Van-BSA-MBs分离金黄色葡萄球菌的条件优化 | 第43-44页 |
| 3.4.3 Van-BSA-MBs结合FCM对金黄色葡萄球菌的特异性检测 | 第44-46页 |
| 3.4.4 Van-BSA-MBs结合FCM对金黄色葡萄球菌的检测 | 第46页 |
| 3.4.5 Van-BSA-MBs结合FCM检测三种食品样本中金黄色葡萄球菌.. | 第46-47页 |
| 3.5 小结 | 第47-49页 |
| 第4章 基于万古霉素-聚酰胺(胺)树状分子的磁性纳米平台结合m-qPCR同时检测单增李斯特菌和金黄色葡萄球菌 | 第49-68页 |
| 4.1 前言 | 第49-51页 |
| 4.2 试剂与材料 | 第51-52页 |
| 4.2.1 主要实验材料 | 第51页 |
| 4.2.2 主要仪器设备 | 第51页 |
| 4.2.3 主要实验试剂的配制 | 第51-52页 |
| 4.3 实验方法 | 第52-58页 |
| 4.3.1 菌株的培养 | 第52页 |
| 4.3.2 材料合成 | 第52-53页 |
| 4.3.3 材料表征 | 第53页 |
| 4.3.4 基于Van-树状分子的纳米平台磁分离的特异性验证 | 第53页 |
| 4.3.5 基于Van-树状分子的纳米平台磁分离条件的优化 | 第53-56页 |
| 4.3.6 m-qPCR | 第56-58页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第58-66页 |
| 4.4.1 材料表征 | 第58-61页 |
| 4.4.2 特异性检测 | 第61-62页 |
| 4.4.3 基于Van-PAMAM磁性纳米平台磁分离条件优化 | 第62-64页 |
| 4.4.4 最有条件下单增李斯特菌和金黄色葡萄球菌的磁捕获效率 | 第64-65页 |
| 4.4.5 m-qPCR检测 | 第65-66页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第66-68页 |
| 第5章 结论与展望 | 第68-70页 |
| 5.1 结论 | 第68-69页 |
| 5.1.1 万古霉素修饰的聚乙二醇化磁珠结合PCR检测生菜中的单增李斯特菌 | 第68页 |
| 5.1.2 万古霉素修饰的牛血清蛋白化磁珠结合流式细胞术检测金黄色葡萄球菌 | 第68页 |
| 5.1.3 基于万古霉素-聚酰胺(胺)树状分子的磁性纳米平台结合m-qPCR同时检测单增李斯特菌和金黄色葡萄球菌 | 第68-69页 |
| 5.2 展望 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-77页 |
| 附录A 试剂 | 第77-78页 |
| 附录B 实验菌株 | 第78-79页 |
| 附录C 仪器设备 | 第79-80页 |
| 附录D 彩图 | 第80-83页 |
| 个人简介 | 第83页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第83页 |
