| 摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 第一章 前言 | 第14-22页 |
| 1.1 蜂王浆活性组分的药理作用 | 第14-18页 |
| 1.1.1 蜂王浆全组分药理作用研究进展 | 第14-15页 |
| 1.1.2 蜂王浆蛋白药理作用研究进展 | 第15-18页 |
| 1.1.3 10-羟基-2-癸烯酸药理作用研究进展 | 第18页 |
| 1.2 蜂王浆中蛋白分离提取方法 | 第18-19页 |
| 1.3 伤口愈合 | 第19-21页 |
| 1.3.1 伤口愈合的机制 | 第19页 |
| 1.3.2 伤口愈合试验模型 | 第19-20页 |
| 1.3.3 蜂王浆及其组分促进伤口愈合的研究进展 | 第20-21页 |
| 1.4 研究意义 | 第21-22页 |
| 第二章 蜂王浆对人角质形成上皮细胞生长的影响 | 第22-28页 |
| 2.1 主要材料、试剂及仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.1 主要材料与试剂 | 第22页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-24页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第23页 |
| 2.2.2 MTT比色法检测细胞生长 | 第23-24页 |
| 2.2.3 细胞划痕实验 | 第24页 |
| 2.2.4 数据统计 | 第24页 |
| 2.3 实验结果与分析 | 第24-26页 |
| 2.3.1 MTT比色法检测细胞增殖 | 第24-26页 |
| 2.3.2 蜂王浆对HaCaT细胞划痕的影响 | 第26页 |
| 2.4 讨论 | 第26-28页 |
| 第三章 蜂王浆主蛋白的提取分离 | 第28-34页 |
| 3.1 主要材料、试剂及仪器 | 第28-29页 |
| 3.1.1 主要材料与试剂 | 第28页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第28页 |
| 3.1.3 实验试剂配制 | 第28-29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-30页 |
| 3.2.1 蜂王浆中MRJP1的提取分离 | 第29页 |
| 3.2.2 蜂王浆中水溶性蛋白的提取 | 第29页 |
| 3.2.3 蜂王浆中水溶性蛋白的分离与纯化 | 第29-30页 |
| 3.2.4 SDS-PAGE鉴定 | 第30页 |
| 3.3 实验结果与分析 | 第30-33页 |
| 3.3.1 AKTA~(TM)pure蛋白质分离纯化系统分离蜂王浆水溶性蛋白结果 | 第30-31页 |
| 3.3.2 SDS-PAGE胶鉴定结果 | 第31-33页 |
| 3.4 讨论 | 第33-34页 |
| 第四章 蜂王浆蛋白质组分对人永生化角质形成细胞生长的影响 | 第34-39页 |
| 4.1 主要材料、试剂及仪器 | 第34-35页 |
| 4.1.1 主要材料与试剂 | 第34页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第34-35页 |
| 4.2 实验方法 | 第35页 |
| 4.2.1 细胞培养 | 第35页 |
| 4.2.2 MTT比色法检测细胞生长 | 第35页 |
| 4.2.3 细胞划痕实验 | 第35页 |
| 4.2.4 数据统计 | 第35页 |
| 4.3 实验结果与分析 | 第35-38页 |
| 4.3.1 MTT 比色法检测HaCaT细胞生长 | 第35-37页 |
| 4.3.2 蛋白纯化系统收集峰2在HaCaT细胞划痕实验中的作用 | 第37-38页 |
| 4.4 讨论 | 第38-39页 |
| 第五章 蜂王浆蛋白质组分促进人角质形成上皮细胞生长的作用机制研究 | 第39-47页 |
| 5.1 主要材料、试剂及仪器 | 第39页 |
| 5.1.1 主要材料与试剂 | 第39页 |
| 5.1.2 实验仪器 | 第39页 |
| 5.2 实验方法 | 第39-40页 |
| 5.2.1 流式细胞仪检测细胞周期 | 第39-40页 |
| 5.2.2 蛋白质组定量测序 | 第40页 |
| 5.2.3 数据统计 | 第40页 |
| 5.3 实验结果与分析 | 第40-46页 |
| 5.3.1 细胞周期结果与分析 | 第40-43页 |
| 5.3.2 蛋白质组定量测序结果与分析 | 第43-46页 |
| 5.4 讨论 | 第46-47页 |
| 第六章 总结与展望 | 第47-49页 |
| 6.1 主要研究结果总结 | 第47页 |
| 6.2 展望 | 第47-49页 |
| 参考文献 | 第49-53页 |
| 附录 | 第53-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
