| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 引言 | 第13-22页 |
| 1.1 鲍鱼概述 | 第13-17页 |
| 1.1.1 鲍鱼养殖现状 | 第13-14页 |
| 1.1.2 鲍鱼营养研究现状 | 第14-15页 |
| 1.1.3 鲍鱼的加工利用现状 | 第15-17页 |
| 1.1.3.1 鲍鱼肉的加工利用 | 第15-16页 |
| 1.1.3.2 鲍鱼下脚料综合加工利用 | 第16-17页 |
| 1.1.3.3 鲍鱼壳的利用 | 第17页 |
| 1.2 原产地鉴定研究进展 | 第17-18页 |
| 1.2.1 原产地鉴定指标分析技术 | 第17页 |
| 1.2.2 原产地鉴定数据分析工具 | 第17-18页 |
| 1.3 多糖的研究进展 | 第18-20页 |
| 1.3.1 多糖概述 | 第18页 |
| 1.3.2 多糖提取方法研究进展 | 第18-20页 |
| 1.3.2.1 热水浸提法 | 第18-19页 |
| 1.3.2.2 酸、碱提取法 | 第19页 |
| 1.3.2.3 仪器辅助提取法 | 第19页 |
| 1.3.2.4 酶法提取 | 第19-20页 |
| 1.3.2.5 其他提取法 | 第20页 |
| 1.3.3 多糖的生物学活性 | 第20页 |
| 1.4 本论文研究目的与意义 | 第20-21页 |
| 1.5 本论文主要研究内容 | 第21-22页 |
| 第二章 鲍鱼营养成分分析与品质评价 | 第22-31页 |
| 2.1 引言 | 第22页 |
| 2.2 材料与试剂 | 第22-23页 |
| 2.2.1 材料 | 第22页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第22-23页 |
| 2.3 仪器与设备 | 第23页 |
| 2.4 实验方法 | 第23-24页 |
| 2.4.1 常规营养成分的测定 | 第23页 |
| 2.4.2 氨基酸分析 | 第23页 |
| 2.4.3 脂肪酸分析 | 第23-24页 |
| 2.5 数据处理 | 第24页 |
| 2.6 结果与分析 | 第24-30页 |
| 2.6.1 品种对鲍鱼营养成分的影响 | 第24-26页 |
| 2.6.2 养殖模式对鲍鱼营养成分的影响 | 第26-28页 |
| 2.6.3 产地对鲍鱼营养成分的影响 | 第28-30页 |
| 2.7 本章小结 | 第30-31页 |
| 第三章 不同产地鲍鱼差异分析与溯源模型的建立 | 第31-40页 |
| 3.1 引言 | 第31页 |
| 3.2 材料与试剂 | 第31页 |
| 3.2.1 材料 | 第31页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第31页 |
| 3.3 仪器与设备 | 第31-32页 |
| 3.4 实验方法 | 第32页 |
| 3.4.1 常量及微量元素含量的测定 | 第32页 |
| 3.4.2 数据处理分析 | 第32页 |
| 3.5 结果与分析 | 第32-39页 |
| 3.5.1 元素含量检测结果 | 第32-34页 |
| 3.5.2 数据的标准化处理 | 第34页 |
| 3.5.3 相关性分析 | 第34-35页 |
| 3.5.4 主成分分析 | 第35-37页 |
| 3.5.5 溯源模型的建立 | 第37-39页 |
| 3.6 本章小结 | 第39-40页 |
| 第四章 鲍鱼内脏粗多糖的提取 | 第40-50页 |
| 4.1 引言 | 第40页 |
| 4.2 材料与试剂 | 第40-41页 |
| 4.2.1 材料 | 第40页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第40-41页 |
| 4.3 仪器与设备 | 第41页 |
| 4.4 实验方法 | 第41-42页 |
| 4.4.1 鲍鱼内脏多糖提取工艺] | 第41页 |
| 4.4.2 酶的选择实验 | 第41页 |
| 4.4.3 胰蛋白酶的单因素实验 | 第41-42页 |
| 4.4.4 鲍鱼内脏多糖酶解工艺的响应面优化 | 第42页 |
| 4.5 测定方法 | 第42页 |
| 4.6 数据处理 | 第42页 |
| 4.7 结果与分析 | 第42-49页 |
| 4.7.1 最佳用酶筛选结果 | 第42-43页 |
| 4.7.2 单因素实验结果 | 第43-46页 |
| 4.7.2.1 料液比对多糖提取率的影响 | 第43-44页 |
| 4.7.2.2 pH对多糖提取率的影响 | 第44页 |
| 4.7.2.3 时间对多糖提取率的影响 | 第44-45页 |
| 4.7.2.4 温度对多糖提取率的影响 | 第45-46页 |
| 4.7.2.5 加酶量对多糖提取率的影响 | 第46页 |
| 4.7.3 响应面结果分析 | 第46-49页 |
| 4.7.3.1 响应面实验结果 | 第46-47页 |
| 4.7.3.2 回归方程及参数分析 | 第47-48页 |
| 4.7.3.3 响应面交互作用分析与优化 | 第48-49页 |
| 4.7.3.4 工艺优化及模型验证 | 第49页 |
| 4.8 本章小结 | 第49-50页 |
| 第五章 鲍鱼内脏多糖抗氧化活性评价 | 第50-59页 |
| 5.1 引言 | 第50页 |
| 5.2 材料与试剂 | 第50-51页 |
| 5.2.1 材料 | 第50页 |
| 5.2.2 主要试剂 | 第50-51页 |
| 5.3 仪器与设备 | 第51页 |
| 5.4 实验方法 | 第51-53页 |
| 5.4.1 鲍鱼内脏多糖分离纯化 | 第51-52页 |
| 5.4.1.1 脱蛋白 | 第51页 |
| 5.4.1.2 透析 | 第51页 |
| 5.4.1.3 冻融 | 第51-52页 |
| 5.4.1.4 葡萄糖凝胶SephadexG-100柱层析 | 第52页 |
| 5.4.2 DPPH自由基清除率的测定 | 第52页 |
| 5.4.3 ·OH自由基清除率的测定 | 第52-53页 |
| 5.4.4 还原力的测定 | 第53页 |
| 5.5 结果与讨论 | 第53-58页 |
| 5.5.1 初步纯化的鲍鱼内脏多糖(AVP)的抗氧化活性 | 第53-57页 |
| 5.5.1.1 AVP的DPPH自由基清除能力 | 第53-55页 |
| 5.5.1.2 AVP的·OH自由基清除能力 | 第55-56页 |
| 5.5.1.3 AVP的还原能力 | 第56-57页 |
| 5.5.2 AVP1、AVP2的抗氧化活性 | 第57-58页 |
| 5.5.2.1 葡萄糖凝胶SephadexG-100柱层析结果 | 第57页 |
| 5.5.2.2 AVP1、AVP2的抗氧化活性 | 第57-58页 |
| 5.6 本章小结 | 第58-59页 |
| 第六章 结论与展望 | 第59-61页 |
| 6.1 结论 | 第59-60页 |
| 6.2 展望 | 第60-61页 |
| 创新点 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
| 基金项目 | 第69-70页 |
| 攻读硕士期间论文成果及参加会议 | 第70页 |
