| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第9-18页 |
| 1.1 黑木耳及刺五加概述 | 第9-10页 |
| 1.1.1 黑木耳概述 | 第9页 |
| 1.1.2 刺五加概述 | 第9-10页 |
| 1.2 黑木耳多糖的发酵生产及特殊培养基对真菌发酵的影响 | 第10-12页 |
| 1.2.1 黑木耳多糖的发酵生产 | 第10页 |
| 1.2.2 特殊培养基对真菌发酵的影响 | 第10-12页 |
| 1.3 真菌及黑木耳多糖的提取及构效研究 | 第12-15页 |
| 1.3.1 黑木耳多糖的提取和分离纯化 | 第12-13页 |
| 1.3.2 黑木耳多糖分子结构 | 第13页 |
| 1.3.3 黑木耳多糖生物学活性 | 第13-15页 |
| 1.4 真菌多糖的合成与调控 | 第15-16页 |
| 1.4.1 真菌多糖的合成 | 第15页 |
| 1.4.2 真菌胞外多糖合成的调控 | 第15-16页 |
| 1.5 本课题的研究意义和内容 | 第16-18页 |
| 1.5.1 本课题的研究意义 | 第16-17页 |
| 1.5.2 本课题研究内容 | 第17-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-20页 |
| 2.1.1 实验菌株与细胞 | 第18页 |
| 2.1.2 材料与试剂 | 第18-19页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.4 主要培养基 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-33页 |
| 2.2.1 刺五加水提物对黑木耳菌HA-1发酵的影响 | 第20-23页 |
| 2.2.2 黑木耳菌HA-1胞外多糖的提取和分离纯化 | 第23页 |
| 2.2.3 黑木耳菌HA-1胞外多糖的结构分析 | 第23-25页 |
| 2.2.4 黑木耳菌HA-1胞外多糖的抗氧化性分析 | 第25-27页 |
| 2.2.5 黑木耳菌HA-1胞外多糖的细胞毒性及免疫活性分析 | 第27-31页 |
| 2.2.6 刺五加水提物对黑木耳菌HA-1多糖合成的影响机理 | 第31-33页 |
| 3 结果与讨论 | 第33-55页 |
| 3.1 不同浓度的刺五加水提物对黑木耳菌HA-1胞外多糖的影响 | 第33-40页 |
| 3.1.1 不同浓度的刺五加水提物对HA-1胞外多糖含量的影响 | 第33页 |
| 3.1.2 不同浓度的刺五加水提物对HA-1胞外多糖分子量分布的影响 | 第33-34页 |
| 3.1.3 不同浓度的刺五加水提物对HA-1胞外多糖单糖组成的影响 | 第34-36页 |
| 3.1.4 不同浓度的刺五加水提物对HA-1胞外多糖抗氧化性的影响 | 第36-40页 |
| 3.2 不同发酵时间对黑木耳菌HA-1胞外多糖的影响 | 第40-41页 |
| 3.2.1 发酵时间对HA-1发酵胞外多糖含量的影响 | 第40页 |
| 3.2.2 发酵时间对HA-1发酵胞外多糖分子量分布的影响 | 第40-41页 |
| 3.2.3 发酵时间对HA-1发酵胞外多糖单糖组成的影响 | 第41页 |
| 3.3 胞外多糖的分离纯化结构分析 | 第41-47页 |
| 3.3.1 胞外多糖的分离纯化 | 第41-43页 |
| 3.3.2 多糖CEPSN-1和CEPSN-2的分子量表征 | 第43-44页 |
| 3.3.3 多糖CEPSN-1和CEPSN-2的单糖组成分析 | 第44页 |
| 3.3.4 多糖CEPSN-1和CEPSN-2的红外光谱分析 | 第44-45页 |
| 3.3.5 糖苷键连接方式 | 第45-47页 |
| 3.4 多糖CEPSN-1和CEPSN-2的免疫活性研究 | 第47-52页 |
| 3.4.1 细胞毒性测试结果 | 第47-48页 |
| 3.4.2 多糖CEPSN-1和CEPSN-2对RAW264.7细胞NO释放量的影响 | 第48-49页 |
| 3.4.3 多糖CEPSN-1和CEPSN-2对RAW264.7细胞的细胞因子释放量影响 | 第49-52页 |
| 3.5 刺五加水提物对胞外多糖的影响机理 | 第52-55页 |
| 3.5.1 发酵菌丝体总RNA提取 | 第52页 |
| 3.5.2 RT-PCR测定结果 | 第52-55页 |
| 4 结论 | 第55-56页 |
| 5 展望 | 第56-57页 |
| 6 参考文献 | 第57-64页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第64-65页 |
| 8 致谢 | 第65-66页 |
