| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-12页 |
| 第一章 综述 | 第12-24页 |
| ·海藻糖的存在形式和结构 | 第12页 |
| ·海藻糖的性质 | 第12-13页 |
| ·稳定性 | 第12-13页 |
| ·甜度 | 第13页 |
| ·吸水性 | 第13页 |
| ·抗腐蚀性 | 第13页 |
| ·防止蛋白质变性 | 第13页 |
| ·玻璃化相变温度高 | 第13页 |
| ·海藻糖的合成和代谢 | 第13-16页 |
| ·海藻糖在生物体内的合成 | 第13-15页 |
| ·通过海藻糖-6-磷酸合酶和海藻糖-6-磷酸磷酸酯酶合成海藻糖 | 第14页 |
| ·以葡萄糖为底物通过海藻糖合酶合成海藻糖 | 第14页 |
| ·以麦芽糖为底物通过海藻糖合酶合成海藻糖 | 第14-15页 |
| ·通过海藻糖磷酸化酶合成海藻糖 | 第15页 |
| ·通过糖基转移酶和淀粉酶合成海藻糖 | 第15页 |
| ·通过蔗糖磷酸化酶和海藻糖磷酸化酶合成海藻糖 | 第15页 |
| ·海藻糖的分解途径 | 第15-16页 |
| ·海藻糖的生物学特性 | 第16-17页 |
| ·海藻糖抗冷冻保护作用 | 第16页 |
| ·海藻糖抗高渗保护作用 | 第16-17页 |
| ·海藻糖抗热保护作用 | 第17页 |
| ·海藻糖保护作用机制 | 第17-19页 |
| ·“水替代”假说 | 第17-18页 |
| ·“玻璃态”假说 | 第18页 |
| ·优先排阻学说 | 第18页 |
| ·海藻糖与其它分子的协同作用 | 第18-19页 |
| ·海藻糖的制备方法 | 第19-20页 |
| ·化学合成法 | 第19页 |
| ·微生物抽提法 | 第19-20页 |
| ·发酵法 | 第20页 |
| ·酶转化法 | 第20页 |
| ·基因重组法 | 第20页 |
| ·海藻糖的应用 | 第20-23页 |
| ·在食品方面的应用 | 第20-22页 |
| ·防止淀粉老化 | 第21页 |
| ·防止蛋白质变性 | 第21页 |
| ·防蛀牙 | 第21页 |
| ·稳定组织细胞结构与保鲜效果 | 第21页 |
| ·补充能量的营养性 | 第21-22页 |
| ·在农业方面的应用 | 第22页 |
| ·在动物方面的应用 | 第22-23页 |
| ·在生物工程方面的应用 | 第23页 |
| ·在医药工业的应用 | 第23页 |
| ·本论文的主要研究内容 | 第23页 |
| ·本论文的创新之处 | 第23-24页 |
| 第二章 海藻糖积累培养基及培养条件的研究 | 第24-42页 |
| ·实验材料 | 第24-26页 |
| ·实验菌株 | 第24页 |
| ·培养基 | 第24页 |
| ·实验试剂 | 第24-25页 |
| ·实验仪器 | 第25-26页 |
| ·实验方法 | 第26-29页 |
| ·海藻糖的定量测定 | 第26-28页 |
| ·蒽酮-硫酸法 | 第26-27页 |
| ·高效液相色谱法（HPLC） | 第27-28页 |
| ·实验方法与设计 | 第28-29页 |
| ·种子培养 | 第28页 |
| ·摇瓶培养 | 第28页 |
| ·最适产海藻糖菌种的选择 | 第28页 |
| ·菌体生长曲线的测定 | 第28-29页 |
| ·实验设计 | 第29页 |
| ·结果与讨论 | 第29-41页 |
| ·蒽酮-硫酸法最适测定条件的确定 | 第29-30页 |
| ·最适煮沸时间的确定 | 第29页 |
| ·最适测定波长的确定 | 第29-30页 |
| ·不同菌种产海藻糖量 | 第30-31页 |
| ·酒精酵母发酵培养基的单因素实验 | 第31-34页 |
| ·不同碳源对海藻糖积累的影响 | 第31页 |
| ·蔗糖对海藻糖产量的影响 | 第31-32页 |
| ·不同氮源对海藻糖积累的影响 | 第32-33页 |
| ·酵母膏对海藻糖产量的影响 | 第33页 |
| ·盐对海藻糖产量的影响 | 第33-34页 |
| ·响应面法对海藻糖产生培养基的优化 | 第34-38页 |
| ·响应面法确定最适培养基组分 | 第34-36页 |
| ·验证性试验 | 第36-38页 |
| ·酒精酵母发酵条件的优化 | 第38-41页 |
| ·酒精酵母生长曲线的测定 | 第38页 |
| ·接种量对海藻糖的影响 | 第38-39页 |
| ·pH 对海藻糖产量的影响 | 第39-40页 |
| ·温度对海藻糖产量的影响 | 第40页 |
| ·装液量对海藻糖产量的影响 | 第40-41页 |
| ·小结 | 第41-42页 |
| 第三章 酒精酵母中海藻糖的提取 | 第42-47页 |
| ·实验材料 | 第42-43页 |
| ·实验菌株 | 第42页 |
| ·培养基 | 第42页 |
| ·主要实验试剂 | 第42-43页 |
| ·主要实验仪器 | 第43页 |
| ·实验方法 | 第43页 |
| ·提取方法比较 | 第43页 |
| ·微波场均一性考察 | 第43页 |
| ·微波预处理后水提与直接水提的比较 | 第43页 |
| ·海藻糖的提取 | 第43页 |
| ·结果与讨论 | 第43-46页 |
| ·海藻糖提取方法比较 | 第43-44页 |
| ·海藻糖提取实验 | 第44-46页 |
| ·海藻糖提取料液比的确定 | 第44页 |
| ·海藻糖提取时间的确定 | 第44-45页 |
| ·海藻糖提取温度的确定 | 第45页 |
| ·海藻糖提取的正交试验 | 第45-46页 |
| ·小结 | 第46-47页 |
| 第四章 海藻糖提取液的纯化与结晶 | 第47-58页 |
| ·实验材料 | 第47-48页 |
| ·实验菌株 | 第47页 |
| ·培养基 | 第47页 |
| ·主要实验试剂 | 第47-48页 |
| ·实验仪器 | 第48页 |
| ·实验方法 | 第48-51页 |
| ·海藻糖提取液的后处理---脱色 | 第48页 |
| ·蛋白质标准曲线的制定 | 第48-49页 |
| ·阴阳离子交换树脂进一步脱盐脱色 | 第49-51页 |
| ·离子交换树脂脱盐脱色的原理 | 第49-50页 |
| ·树脂的预处理 | 第50页 |
| ·离子交换柱的装填方法 | 第50-51页 |
| ·离子交换操作 | 第51页 |
| ·离子交换树脂的再生 | 第51页 |
| ·处理后提取液的高效液相测定 | 第51页 |
| ·海藻糖的结晶 | 第51页 |
| ·结果与讨论 | 第51-57页 |
| ·海藻糖提取液脱色实验 | 第51-55页 |
| ·提取溶液脱色 pH 的确定 | 第51-52页 |
| ·脱色时间的确定 | 第52-53页 |
| ·脱色活性炭用量的确定 | 第53页 |
| ·脱色温度的确定 | 第53-54页 |
| ·脱色正交试验结果分析 | 第54-55页 |
| ·提取液中蛋白质含量测定 | 第55页 |
| ·离子交换脱色和除盐 | 第55-56页 |
| ·海藻糖的结晶 | 第56-57页 |
| ·小结 | 第57-58页 |
| 第五章 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 致谢 | 第63页 |