摘要 | 第9-10页 |
第一章 文献综述 | 第10-17页 |
1 苦荞简介 | 第10-12页 |
1.1 苦荞的营养成分 | 第10-12页 |
1.2 苦荞的生理活性成分 | 第12页 |
2 黄酮化合物 | 第12-15页 |
2.1 黄酮化合物提取方法 | 第12-14页 |
2.1.1 超声波辅助提取法 | 第12-13页 |
2.1.2 压力溶剂萃取法 | 第13页 |
2.1.3 微波提取法 | 第13页 |
2.1.4 超临界流体提取法 | 第13页 |
2.1.5 酶解法 | 第13-14页 |
2.2 黄酮化合物的纯化方法 | 第14页 |
2.3 黄酮化合物的生物活性 | 第14-15页 |
2.3.1 抗氧化活性 | 第14页 |
2.3.2 降血糖、降血脂、降血压作用 | 第14-15页 |
2.3.3 抗肿瘤活性 | 第15页 |
2.3.4 抗炎抑菌作用 | 第15页 |
2.3.5 免疫调节作用 | 第15页 |
2.3.6 其它 | 第15页 |
3 研究的目的与意义 | 第15-17页 |
第二章 苦荞叶总黄酮的提取工艺研究 | 第17-28页 |
1 材料与方法 | 第17-19页 |
1.1 材料 | 第17页 |
1.2 试剂 | 第17页 |
1.3 仪器与设备 | 第17-18页 |
1.4 试验方法 | 第18-19页 |
1.4.1 黄酮标准曲线的绘制 | 第18页 |
1.4.2 总黄酮得率的测定 | 第18页 |
1.4.3 超声波法提取苦荞叶中总黄酮的单因素试验 | 第18-19页 |
1.4.3.1 乙醇浓度对苦荞叶总黄酮得率的影响 | 第18页 |
1.4.3.2 提取温度对苦荞叶总黄酮得率的影响 | 第18-19页 |
1.4.3.3 料液比对苦荞叶总黄酮得率的影响 | 第19页 |
1.4.3.4 提取时间对苦荞叶总黄酮得率的影响 | 第19页 |
1.4.3.5 超声波功率对苦荞叶总黄酮得率的影响 | 第19页 |
1.4.4 Box-Behnken试验设计 | 第19页 |
2 结果与分析 | 第19-26页 |
2.1 芦丁标准曲线 | 第19-20页 |
2.2 超声波辅助提取苦荞叶总黄酮的单因素试验结果分析 | 第20-22页 |
2.2.1 乙醇浓度对苦荞叶总黄酮得率的影响 | 第20页 |
2.2.2 提取温度对苦荞叶总黄酮得率的影响 | 第20-21页 |
2.2.3 料液比对苦荞叶总黄酮得率的影响 | 第21页 |
2.2.4 提取时间对苦荞叶总黄酮得率的影响 | 第21-22页 |
2.2.5 超声波功率对苦荞叶总黄酮得率的影响 | 第22页 |
2.3 Box-Behnken试验结果分析 | 第22-26页 |
2.3.1 回归模型的建立与检验 | 第22-25页 |
2.3.2 两因素间的交互效应的分析 | 第25-26页 |
2.3.3 最佳工艺参数的确定及回归模型的验证 | 第26页 |
3 讨论 | 第26-27页 |
4 本章小节 | 第27-28页 |
第三章 苦荞叶总黄酮的纯化工艺研究 | 第28-37页 |
1 材料与方法 | 第28-31页 |
1.1 试剂 | 第28页 |
1.2 仪器与设备 | 第28-29页 |
1.3 试验方法 | 第29-31页 |
1.3.1 苦荞叶黄酮粗提液的制备 | 第29页 |
1.3.2 总黄酮含量的测定 | 第29页 |
1.3.3 树脂的预处理 | 第29页 |
1.3.4 树脂的再生 | 第29页 |
1.3.5 树脂的筛选 | 第29-30页 |
1.3.6 苦荞叶黄酮吸附工艺的优化 | 第30页 |
1.3.6.1 上样液pH对吸附率的影响 | 第30页 |
1.3.6.2 上样液浓度对吸附率的影响 | 第30页 |
1.3.6.3 上样流速对吸附率的影响 | 第30页 |
1.3.6.4 吸附容量的确定 | 第30页 |
1.3.7 苦荞叶黄酮解吸工艺的优化 | 第30页 |
1.3.7.1 洗脱液pH对解吸率的影响 | 第30页 |
1.3.7.2 洗脱液浓度对解吸率的影响 | 第30页 |
1.3.7.3 洗脱液流速对解吸率的影响 | 第30页 |
1.3.7.4 洗脱液用量的确定 | 第30页 |
1.3.8 苦荞叶黄酮纯度的测定 | 第30-31页 |
2 结果与分析 | 第31-36页 |
2.1 树脂的筛选 | 第31页 |
2.2 苦荞叶黄酮吸附工艺的优化 | 第31-33页 |
2.2.1 上样液pH对吸附率的影响 | 第31-32页 |
2.2.2 上样液浓度对吸附率的影响 | 第32页 |
2.2.3 上样流速对吸附率的影响 | 第32-33页 |
2.2.4 吸附容量的确定 | 第33页 |
2.3 苦荞叶黄酮解吸工艺的优化 | 第33-35页 |
2.3.1 洗脱液pH对解吸率的影响 | 第33-34页 |
2.3.2 洗脱液浓度对解吸率的影响 | 第34页 |
2.3.3 洗脱液流速对解吸率的影响 | 第34-35页 |
2.3.4 洗脱液用量的确定 | 第35页 |
2.4 AB-8最佳工艺的验证 | 第35-36页 |
3 讨论 | 第36页 |
4 本章小结 | 第36-37页 |
第四章 苦荞叶总黄酮抗氧化活性的研究 | 第37-43页 |
1 材料与方法 | 第37-39页 |
1.1 材料 | 第37页 |
1.2 试剂 | 第37-38页 |
1.3 仪器与设备 | 第38页 |
1.4 试验方法 | 第38-39页 |
1.4.1 还原力的测定 | 第38页 |
1.4.2 ·OH清除能力的测定 | 第38页 |
1.4.3 O_(2-)·清除能力的测定 | 第38-39页 |
1.4.4 DPPH·清除能力的测定 | 第39页 |
1.4.5 NO_(2-)的清除能力的测定 | 第39页 |
2 结果与分析 | 第39-42页 |
2.1 苦荞叶总黄酮的还原力 | 第39-40页 |
2.2 苦荞叶总黄酮对·OH的清除能力 | 第40页 |
2.3 苦荞叶总黄酮对O_2~-·的清除能力 | 第40-41页 |
2.4 苦荞叶总黄酮对DPPH·的清除能力 | 第41页 |
2.5 苦荞叶总黄酮对NO_2~-的清除能力 | 第41-42页 |
3 讨论 | 第42页 |
4 本章小结 | 第42-43页 |
第五章 苦荞叶黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠生理功能的影响 | 第43-65页 |
1 材料与方法 | 第43-47页 |
1.1 材料 | 第43页 |
1.2 试验动物 | 第43页 |
1.3 试剂 | 第43页 |
1.4 主要仪器及设备 | 第43-44页 |
1.5 方法 | 第44-47页 |
1.5.1 Ⅱ-型糖尿病小鼠模型的建立、分组及给药 | 第44页 |
1.5.2 待测样品的采集 | 第44页 |
1.5.3 脏器指数的测定 | 第44-45页 |
1.5.4 血糖指标的检测 | 第45页 |
1.5.4.1 空腹血糖的测定 | 第45页 |
1.5.4.2 血清胰岛素的测定 | 第45页 |
1.5.5 血脂指标的检测 | 第45页 |
1.5.6 抗氧化指标的检测 | 第45页 |
1.5.7 组织病理学检测 | 第45-47页 |
1.5.7.1 石蜡切片的准备 | 第45-46页 |
1.5.7.2 HE染色 | 第46-47页 |
1.5.7.3 胰岛细胞凋亡检测 | 第47页 |
1.5.8 统计分析 | 第47页 |
2 结果与分析 | 第47-61页 |
2.1 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠体重的影响 | 第47-48页 |
2.2 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠脏器指数的影响 | 第48-50页 |
2.3 苦荞叶黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠血糖的影响 | 第50-51页 |
2.3.1 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠空腹血糖的影响 | 第50-51页 |
2.3.2 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠血清胰岛素的影响 | 第51页 |
2.4 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠血脂的影响 | 第51-52页 |
2.5 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠抗氧化活性的影响 | 第52-58页 |
2.5.1 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠血清抗氧化活性的影响 | 第53-54页 |
2.5.2 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠肝组织抗氧化活性的影响 | 第54-55页 |
2.5.3 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠肾脏组织抗氧化活性的影响 | 第55-56页 |
2.5.4 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠脾脏组织抗氧化活性的影响 | 第56-58页 |
2.6 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠肝脏组织形态的影响 | 第58-59页 |
2.7 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠肾脏组织形态的影响 | 第59-60页 |
2.8 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠胰岛细胞凋亡的影响 | 第60-61页 |
3 讨论 | 第61-64页 |
3.1 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠体重的影响 | 第61页 |
3.2 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠血糖的影响 | 第61页 |
3.3 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠血脂的影响 | 第61-62页 |
3.4 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠抗氧化活性的影响 | 第62页 |
3.5 苦荞叶总黄酮对Ⅱ-型糖尿病小鼠肝脏、肾脏、脾脏及胰岛细胞的影响 | 第62-64页 |
4 本章小结 | 第64-65页 |
结论 | 第65-66页 |
参考文献 | 第66-70页 |
Abstract | 第70-71页 |
致谢 | 第72页 |