| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第15-27页 |
| 1.1 引言 | 第15页 |
| 1.2 植物多糖的研究进展 | 第15-19页 |
| 1.2.1 植物多糖的提取 | 第15-16页 |
| 1.2.2 植物多糖的分离纯化 | 第16-17页 |
| 1.2.3 植物多糖的结构分析 | 第17-18页 |
| 1.2.4 植物多糖的生理活性 | 第18-19页 |
| 1.3 辣木叶多糖的研究进展 | 第19-22页 |
| 1.3.1 关于辣木 | 第19页 |
| 1.3.2 辣木叶多糖的提取 | 第19-20页 |
| 1.3.3 辣木叶多糖的分离纯化 | 第20-21页 |
| 1.3.4 辣木叶多糖的结构分析 | 第21页 |
| 1.3.5 辣木叶多糖的生理活性 | 第21-22页 |
| 1.4 肠道微生物与免疫 | 第22-23页 |
| 1.5 多糖对肠道微生物的影响 | 第23-25页 |
| 1.6 本课题的研究意义及主要内容 | 第25-27页 |
| 1.6.1 研究背景和目的 | 第25页 |
| 1.6.2 主要研究内容 | 第25-27页 |
| 第二章 不同品种辣木叶多糖的结构和抗氧化活性研究 | 第27-40页 |
| 2.1 前言 | 第27页 |
| 2.2 实验材料与试剂 | 第27-28页 |
| 2.3 实验仪器与设备 | 第28页 |
| 2.4 实验方法 | 第28-32页 |
| 2.4.1 辣木叶预处理 | 第28-29页 |
| 2.4.2 辣木叶多糖的制备 | 第29页 |
| 2.4.3 总糖含量的测定 | 第29-30页 |
| 2.4.4 蛋白质含量的测定 | 第30页 |
| 2.4.5 分子量的测定 | 第30-31页 |
| 2.4.6 红外光谱的测定 | 第31页 |
| 2.4.7 三螺旋结构的测定 | 第31页 |
| 2.4.8 抗氧化活性实验 | 第31-32页 |
| 2.4.9 数据分析 | 第32页 |
| 2.5 结果与讨论 | 第32-38页 |
| 2.5.1 三种辣木叶多糖的得率和理化性质 | 第32-33页 |
| 2.5.2 分子量大小 | 第33-34页 |
| 2.5.3 三种辣木叶多糖的红外图谱 | 第34-35页 |
| 2.5.4 螺旋性结构 | 第35-36页 |
| 2.5.5 三种辣木叶多糖的抗氧化活性 | 第36-38页 |
| 2.6 本章小结 | 第38-40页 |
| 第三章 辣木叶多糖的分离纯化、结构鉴定及免疫活性研究 | 第40-62页 |
| 3.1 前言 | 第40页 |
| 3.2 实验材料与试剂 | 第40-41页 |
| 3.3 实验仪器与设备 | 第41-42页 |
| 3.4 实验方法 | 第42-47页 |
| 3.4.1 辣木粗多糖的制备 | 第42页 |
| 3.4.2 辣木叶多糖的分离纯化 | 第42页 |
| 3.4.3 总糖含量测定 | 第42页 |
| 3.4.4 分子量测定 | 第42页 |
| 3.4.5 红外光谱 | 第42页 |
| 3.4.6 单糖组成及糖醛酸 | 第42-43页 |
| 3.4.7 高碘酸氧化和Smith降解 | 第43-44页 |
| 3.4.8 甲基化 | 第44-45页 |
| 3.4.9 核磁共振测定 | 第45页 |
| 3.4.10 免疫调节活性测定 | 第45-47页 |
| 3.4.11 数据分析 | 第47页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第47-60页 |
| 3.5.1 洗脱曲线图 | 第47-48页 |
| 3.5.2 分子量分析 | 第48-49页 |
| 3.5.3 单糖组成 | 第49-50页 |
| 3.5.4 红外分析 | 第50页 |
| 3.5.5 高碘酸氧化和Smith降解 | 第50-52页 |
| 3.5.6 甲基化 | 第52页 |
| 3.5.7 核磁共振结果 | 第52-60页 |
| 3.6 本章小结 | 第60-62页 |
| 第四章 MOP-2体外模拟消化和酵解特征研究 | 第62-84页 |
| 4.1 前言 | 第62页 |
| 4.2 实验材料与试剂 | 第62-63页 |
| 4.3 实验仪器与设备 | 第63-64页 |
| 4.4 实验方法 | 第64-69页 |
| 4.4.1 MOP-2的制备 | 第64页 |
| 4.4.2 体外消化液的配置 | 第64页 |
| 4.4.3 模拟唾液对MOP-2的影响 | 第64-65页 |
| 4.4.4 模拟胃液对MOP-2的影响 | 第65页 |
| 4.4.5 模拟小肠液对MOP-2的影响 | 第65页 |
| 4.4.6 消化产物分子量的测定 | 第65页 |
| 4.4.7 消化产物总糖含量的测定 | 第65页 |
| 4.4.8 消化产物还原糖含量的测定 | 第65-66页 |
| 4.4.9 配置发酵培养基 | 第66页 |
| 4.4.10 获取人体肠道菌群 | 第66-67页 |
| 4.4.11 体外发酵 | 第67页 |
| 4.4.12 检测总糖和还原糖含量 | 第67页 |
| 4.4.13 测定酵解产物中SCFAs含量 | 第67-68页 |
| 4.4.14 DNA提取和焦磷酸测序 | 第68页 |
| 4.4.15 数据分析 | 第68-69页 |
| 4.5 实验结果与讨论 | 第69-83页 |
| 4.5.1 消化产物分子量的变化 | 第69-71页 |
| 4.5.2 消化液中还原糖含量的变化 | 第71-72页 |
| 4.5.3 酵解液中总糖和还原糖含量的变化 | 第72-73页 |
| 4.5.4 酵解产物中SCFA的含量变化 | 第73-77页 |
| 4.5.5 MOP-2对肠道微生物的影响 | 第77-83页 |
| 4.6 本章小结 | 第83-84页 |
| 结论与展望 | 第84-86页 |
| 1、结论 | 第84-85页 |
| 2、创新点 | 第85页 |
| 3、展望 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-98页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第98-99页 |
| 致谢 | 第99-100页 |
| 附件 | 第100页 |