| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第14-27页 |
| 1.1 引言 | 第14-15页 |
| 1.2 表面增强拉曼光谱技术的研究现状 | 第15-19页 |
| 1.2.1 表面增强拉曼光谱技术的增强原理 | 第15-17页 |
| 1.2.2 活性基底的类型 | 第17页 |
| 1.2.3 增强基底制备关键技术 | 第17-19页 |
| 1.3 表面增强拉曼光谱技术在食品中农药残留检测的应用 | 第19-20页 |
| 1.3.1 农药残留表面增强拉曼光谱定性判别 | 第20页 |
| 1.3.2 农药残留表面增强拉曼光谱定量分析 | 第20页 |
| 1.4 寡核苷酸适配体的概述 | 第20-23页 |
| 1.4.1 寡核苷酸适配体原理 | 第20-21页 |
| 1.4.2 寡核苷酸适配体筛选 | 第21页 |
| 1.4.3 寡核苷酸适配体与抗体相比的优势 | 第21-22页 |
| 1.4.4 寡核苷酸适配体与SERS联用技术在食品中的应用 | 第22-23页 |
| 1.5 本文研究目的、意义及研究内容 | 第23-27页 |
| 1.5.1 研究目的及意义 | 第23-24页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第24-26页 |
| 1.5.3 技术路线 | 第26-27页 |
| 第二章 基于适配体化复合型纳米基底制备及其表征 | 第27-44页 |
| 2.1 引言 | 第27页 |
| 2.2 材料与设备 | 第27-28页 |
| 2.2.1 试剂 | 第27页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第27-28页 |
| 2.3 实验方法 | 第28-30页 |
| 2.3.1 IP6-Fe_3O_4@SiO_2@Au金磁纳米颗粒的合成 | 第28-29页 |
| 2.3.2 Cys-SiO_2@ Au金壳纳米颗粒的合成 | 第29页 |
| 2.3.3 巯基化啶虫脒适配体偶联金磁纳米颗粒的捕获探针Ⅰ制备 | 第29-30页 |
| 2.3.4 巯基化修饰毒死蜱适配体偶联金壳纳米颗粒的捕获探针Ⅱ制备 | 第30页 |
| 2.3.5 红外光谱及紫外可见分光光度计表征 | 第30页 |
| 2.3.6 投射电子显微镜及粒径分析表征 | 第30页 |
| 2.3.7 罗丹明 6G增强因子计算 | 第30页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第30-42页 |
| 2.4.1 Fe_3O_4纳米核心的表征 | 第30-32页 |
| 2.4.2 IP_6-Fe_3O_4@SiO_2@Au纳米颗粒的表征 | 第32-33页 |
| 2.4.3 Fe_3O_4、Fe_3O_4@SiO_2、IP_6-Fe_3O_4@SiO_2@Au纳米粒子的对比 | 第33-34页 |
| 2.4.4 IP_6-Fe_3O_4@SiO_2@Au纳米颗粒的增强因子及使用寿命 | 第34-35页 |
| 2.4.5 巯基化啶虫脒适配体偶联金磁纳米颗粒的捕获探针Ⅰ的表征 | 第35-36页 |
| 2.4.6 SiO_2纳米核心的表征 | 第36-38页 |
| 2.4.7 Cys-SiO_2@Au纳米颗粒的表征 | 第38-39页 |
| 2.4.8 SiO_2和Cys-SiO_2@Au纳米粒子的对比 | 第39-40页 |
| 2.4.9 Cys-SiO_2@Au纳米颗粒的增强因子及使用寿命 | 第40-42页 |
| 2.4.10 巯基化毒死蜱适配体偶联金壳纳米颗粒的捕获探针Ⅱ的表征 | 第42页 |
| 2.5 本章小结 | 第42-44页 |
| 第三章 基于适配体化IP_6-Fe_3O_4@SiO_2@Au金磁纳米颗粒的SERS检测啶虫脒农残的条件探索 | 第44-63页 |
| 3.1 引言 | 第44页 |
| 3.2 材料与设备 | 第44页 |
| 3.2.1 试剂 | 第44页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第44页 |
| 3.3 实验方法 | 第44-48页 |
| 3.3.1 不同体积的捕获探针Ⅰ对啶虫脒SERS效果的影响 | 第44-45页 |
| 3.3.2 不同浓度的促凝剂对啶虫脒SERS效果的影响 | 第45页 |
| 3.3.3 不同孵育时间对啶虫脒SERS效果的影响 | 第45页 |
| 3.3.4 适配体化IP_6-Fe_3O_4@SiO_2@Au基底检测条件响应面优化实验 | 第45-46页 |
| 3.3.5 啶虫脒溶液的标准曲线绘制 | 第46页 |
| 3.3.6 啶虫脒SERS检测的特异性实验 | 第46-47页 |
| 3.3.7 基于SERS检测啶虫脒残留的加标回收实验 | 第47-48页 |
| 3.3.8 灯笼椒样品中啶虫脒残留的检测 | 第48页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第48-61页 |
| 3.4.1 啶虫脒原药的拉曼光谱及特征峰归属 | 第48页 |
| 3.4.2 捕获探针Ⅰ体积对啶虫脒SERS效果的影响 | 第48-49页 |
| 3.4.3 促凝剂浓度对啶虫脒SERS效果的影响 | 第49-50页 |
| 3.4.4 孵育时间对啶虫脒SERS效果的影响 | 第50-52页 |
| 3.4.5 适配体化IP_6-Fe_3O_4@SiO_2@Au基底检测条件响应面优化实验结果 | 第52-57页 |
| 3.4.6 最优SERS检测条件确定及验证 | 第57页 |
| 3.4.7 啶虫脒溶液的标准曲线绘制 | 第57-59页 |
| 3.4.8 啶虫脒SERS检测的特异性实验结果 | 第59-61页 |
| 3.4.9 基于SERS检测灯笼椒中啶虫脒残留的加标回收实验结果 | 第61页 |
| 3.5 本章小结 | 第61-63页 |
| 第四章 基于适配体化Cys-SiO_2@Au金壳纳米颗粒的SERS检测毒死蜱条件探索 | 第63-88页 |
| 4.1 引言 | 第63页 |
| 4.2 材料与设备 | 第63页 |
| 4.2.1 试剂 | 第63页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第63页 |
| 4.3 实验方法 | 第63-66页 |
| 4.3.1 不同振荡频率对毒死蜱SERS效果的影响 | 第63-64页 |
| 4.3.2 不同孵育温度对毒死蜱SERS效果的影响 | 第64页 |
| 4.3.3 不同陈化时间对毒死蜱SERS效果的影响 | 第64页 |
| 4.3.4 不同体系的pH对毒死蜱SERS效果的影响 | 第64-65页 |
| 4.3.5 基于SERS检测条件响应面优化实验 | 第65页 |
| 4.3.6 毒死蜱溶液的标准曲线绘制 | 第65页 |
| 4.3.7 毒死蜱SERS检测的特异性实验 | 第65-66页 |
| 4.3.8 基于SERS检测灯笼椒样品中毒死蜱残留的加标回收实验 | 第66页 |
| 4.3.9 灯笼椒样品中毒死蜱残留的国标检测 | 第66页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第66-86页 |
| 4.4.1 毒死蜱原药的拉曼光谱及特征峰归属 | 第66-67页 |
| 4.4.2 振荡频率对毒死蜱SERS效果的影响 | 第67-68页 |
| 4.4.3 孵育温度对毒死蜱SERS效果的影响 | 第68-69页 |
| 4.4.4 陈化时间对毒死蜱SERS效果的影响 | 第69-71页 |
| 4.4.5 体系的pH对毒死蜱SERS效果的影响 | 第71-73页 |
| 4.4.6 基于SERS检测条件响应面优化实验结果 | 第73-81页 |
| 4.4.7 最优SERS检测条件确定及验证 | 第81-82页 |
| 4.4.8 毒死蜱溶液的标准曲线绘制 | 第82-83页 |
| 4.4.9 毒死蜱SERS检测的特异性实验结果 | 第83-85页 |
| 4.4.10 基于SERS检测灯笼椒样品中毒死蜱残留加标回收实验结果 | 第85-86页 |
| 4.5 本章小结 | 第86-88页 |
| 结论与展望 | 第88-91页 |
| 参考文献 | 第91-97页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第97-99页 |
| 致谢 | 第99-100页 |
| 附件 | 第100页 |
