| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-12页 |
| 第1章 绪论 | 第19-29页 |
| 1.1 引言 | 第19页 |
| 1.2 果胶的化学结构与理化性质 | 第19-20页 |
| 1.2.1 果胶的化学结构 | 第19-20页 |
| 1.2.2 果胶的理化性质 | 第20页 |
| 1.3 果胶的提取方法 | 第20-21页 |
| 1.4 果胶低聚糖 | 第21-25页 |
| 1.4.1 果胶低聚糖的定义 | 第21页 |
| 1.4.2 果胶低聚糖的来源 | 第21-23页 |
| 1.4.2.1 从天然植物中提取 | 第21页 |
| 1.4.2.2 化学合成和酶合成法 | 第21-22页 |
| 1.4.2.3 酶解法制备果胶低聚糖 | 第22页 |
| 1.4.2.4 化学降解法制备果胶低聚糖 | 第22页 |
| 1.4.2.5 物理法制备果胶低聚糖 | 第22-23页 |
| 1.4.3 果胶低聚糖分离纯化 | 第23-25页 |
| 1.4.3.1 分级醇沉法 | 第23页 |
| 1.4.3.2 微生物发酵法 | 第23-24页 |
| 1.4.3.3 色谱柱分离法 | 第24页 |
| 1.4.3.4 膜分离法 | 第24-25页 |
| 1.5 果胶及低聚糖的生理活性 | 第25-27页 |
| 1.5.1 作为植物的调节剂 | 第25页 |
| 1.5.2 阻止毒素吸附到肠壁细胞 | 第25-26页 |
| 1.5.3 抗癌活性 | 第26页 |
| 1.5.4 重金属吸附剂 | 第26-27页 |
| 1.5.5 抑菌活性 | 第27页 |
| 1.5.6 其他活性 | 第27页 |
| 1.6 论文选题背景和主要研究内容 | 第27-29页 |
| 第2章 柑橘皮高酯果胶的提取及条件优化 | 第29-44页 |
| 2.1 前言 | 第29页 |
| 2.2 实验材料 | 第29-30页 |
| 2.2.1 材料 | 第29页 |
| 2.2.2 仪器 | 第29-30页 |
| 2.3 实验方法 | 第30-32页 |
| 2.3.1 果胶提取工艺 | 第30页 |
| 2.3.2 柑橘皮高酯果胶提取单因素实验 | 第30页 |
| 2.3.3 响应面优化 | 第30-31页 |
| 2.3.4 蛋白质含量的测定 | 第31页 |
| 2.3.5 高酯果胶脱色脱蛋白 | 第31-32页 |
| 2.3.6 酯化度的测定 | 第32页 |
| 2.3.7 紫外光谱扫描 | 第32页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第32-42页 |
| 2.4.1 单因素实验结果 | 第32-35页 |
| 2.4.1.1 pH对柑橘皮粗果胶得率的影响 | 第32-33页 |
| 2.4.1.2 液固比对柑橘皮粗果胶得率的影响 | 第33-34页 |
| 2.4.1.3 浸提温度对柑橘皮粗果胶得率的影响 | 第34-35页 |
| 2.4.1.4 浸提时间对柑橘皮粗果胶得率的影响 | 第35页 |
| 2.4.2 响应面结果分析 | 第35-41页 |
| 2.4.2.1 Box-Behnken实验结果分析 | 第35-40页 |
| 2.4.2.2 响应面回归方程的建立 | 第40-41页 |
| 2.4.2.3 响应面方程优化 | 第41页 |
| 2.4.3 蛋白质含量标准曲线 | 第41-42页 |
| 2.4.4 高酯果胶脱色脱蛋白 | 第42页 |
| 2.4.5 酯化度的测定 | 第42页 |
| 2.4.6 紫外光谱分析 | 第42页 |
| 2.5 结论 | 第42-44页 |
| 第3章 碱法脱酯制备低酯果胶及优化 | 第44-52页 |
| 3.1 前言 | 第44页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第44-45页 |
| 3.2.1 试剂 | 第44页 |
| 3.2.2 仪器 | 第44-45页 |
| 3.3 实验方法 | 第45-46页 |
| 3.3.1 低酯果胶的制备工艺 | 第45页 |
| 3.3.2 酯化度的测定 | 第45页 |
| 3.3.3 碱法脱酯单因素实验 | 第45页 |
| 3.3.4 交实验 | 第45-46页 |
| 3.3.5 红外光谱分析 | 第46页 |
| 3.4 实验结果 | 第46-51页 |
| 3.4.1 单因素实验结果 | 第46-49页 |
| 3.4.1.1 反应时间对低酯果胶得率的影响 | 第46-47页 |
| 3.4.1.2 pH对低酯果胶得率的影响 | 第47-48页 |
| 3.4.1.3 反应温度对低酯果胶得率的影响 | 第48-49页 |
| 3.4.2 正交结果分析 | 第49-50页 |
| 3.4.3 红外光谱分析 | 第50-51页 |
| 3.5 结论 | 第51-52页 |
| 第4章 果胶低聚糖的制备及超滤分级 | 第52-61页 |
| 4.1 前言 | 第52页 |
| 4.2 实验材料 | 第52-53页 |
| 4.2.1 材料 | 第52页 |
| 4.2.2 仪器 | 第52-53页 |
| 4.3 实验方法 | 第53-56页 |
| 4.3.1 高酯果胶和低酯果胶的提取 | 第53页 |
| 4.3.2 果胶低聚糖的制备 | 第53页 |
| 4.3.3 超滤装置的清洗 | 第53-54页 |
| 4.3.4 超滤条件的确定 | 第54页 |
| 4.3.5 果胶低聚糖的超滤分级 | 第54页 |
| 4.3.6 果胶组分理化性质的测定 | 第54-56页 |
| 4.3.6.1 酯化度的测定 | 第54页 |
| 4.3.6.2 透光率的测定 | 第54-55页 |
| 4.3.6.3 水分含量的测定 | 第55页 |
| 4.3.6.4 灰分含量的测定 | 第55页 |
| 4.3.6.5 特性粘度的测定 | 第55-56页 |
| 4.3.6.6 红外光谱分析 | 第56页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第56-60页 |
| 4.4.1 压力对膜通量的影响 | 第56-57页 |
| 4.4.2 温度对膜通量的影响 | 第57-58页 |
| 4.4.3 果胶液浓度对膜通量的影响 | 第58页 |
| 4.4.4 果胶组分的基本理化性质 | 第58-59页 |
| 4.4.5 不同果胶组分的红外光谱分析 | 第59-60页 |
| 4.5 结论 | 第60-61页 |
| 第5章 果胶及低聚糖对双歧杆菌增殖作用的研究 | 第61-74页 |
| 5.1 前言 | 第61页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第61-62页 |
| 5.2.1 材料 | 第61页 |
| 5.2.2 仪器 | 第61-62页 |
| 5.3 实验方法 | 第62-64页 |
| 5.3.1 培养基的配制 | 第62页 |
| 5.3.2 菌种活化 | 第62页 |
| 5.3.3 双歧杆菌生长曲线的测定 | 第62页 |
| 5.3.4 双歧杆菌基质消耗曲线测定 | 第62-63页 |
| 5.3.5 溶菌酶实验 | 第63页 |
| 5.3.6 双歧杆菌对果胶组分的利用情况 | 第63-64页 |
| 5.3.7 发酵液pH值的测定 | 第64页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第64-73页 |
| 5.4.1 双歧杆菌生长曲线和pH变化曲线 | 第64-65页 |
| 5.4.2 葡萄糖标准曲线 | 第65-66页 |
| 5.4.3 双歧杆菌基质消耗曲线 | 第66-68页 |
| 5.4.4 溶菌酶对双歧杆菌生长的影响 | 第68-70页 |
| 5.4.5 三株双歧杆菌对果胶及低聚糖的利用情况 | 第70-71页 |
| 5.4.6 双歧杆菌发酵48h的PI值 | 第71-72页 |
| 5.4.7 双歧杆菌发酵液48h的pH | 第72-73页 |
| 5.5 结论 | 第73-74页 |
| 第6章 双歧杆菌体外发酵果胶组分产短链脂肪酸的测定 | 第74-84页 |
| 6.1 前言 | 第74页 |
| 6.2 材料与仪器 | 第74-75页 |
| 6.2.1 材料 | 第74页 |
| 6.2.2 仪器 | 第74-75页 |
| 6.3 实验方法 | 第75-76页 |
| 6.3.1 短链脂肪酸的测定 | 第75-76页 |
| 6.3.1.1 流动相的制备 | 第75页 |
| 6.3.1.2 色谱分析条件 | 第75页 |
| 6.3.1.3 标准品的配制 | 第75-76页 |
| 6.3.1.4 短链脂肪酸的标准曲线 | 第76页 |
| 6.3.1.5 样品的预处理 | 第76页 |
| 6.3.2 统计方法 | 第76页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第76-83页 |
| 6.4.1 短链脂肪酸标样HPLC图谱分析 | 第76-77页 |
| 6.4.2 发酵液样品色谱图 | 第77-78页 |
| 6.4.3 发酵样品短链脂肪酸的含量分析 | 第78-82页 |
| 6.4.3.1 两岐双歧杆菌SCFA含量分析 | 第78-79页 |
| 6.4.3.2 青春双歧杆菌SCFA含量分析 | 第79-80页 |
| 6.4.3.3 短双歧杆菌SCFA含量分析 | 第80-82页 |
| 6.4.4 发酵样品短链脂肪酸的摩尔比 | 第82-83页 |
| 6.5 结论 | 第83-84页 |
| 第7章 结论与展望 | 第84-86页 |
| 7.1 结论 | 第84-85页 |
| 7.2 展望 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-93页 |
| 攻读学位期间发表论文 | 第93-94页 |
| 致谢 | 第94页 |